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    超極化激活環(huán)核苷酸門控陽離子通道亞型在大鼠脊髓背角淺層的特異性表達*

    2020-06-09 02:41:50黃姣艷程小娥馬龍先張達穎蔣昌宇濤3
    中國病理生理雜志 2020年5期

    黃姣艷, 程小娥, 馬龍先, 張達穎, 蔣昌宇, 柳 濤3,△

    (南昌大學第一附屬醫(yī)院 1麻醉科,2疼痛科,3醫(yī)學科研中心,江西南昌330006;4深圳市南山醫(yī)院韓濟生院士疼痛醫(yī)學工作站,廣東深圳518052)

    超級化激活環(huán)核苷酸門控陽離子通道(hyperpolarization-activated cyclic nucleotide-gated cation channels,HCN channels)有HCN1~4共4種亞型,主要表達在神經(jīng)細胞和心肌細胞的胞膜上,與癲癇、抑郁、疼痛以及心臟疾病的發(fā)生發(fā)展有著密切的關聯(lián)[1-4]。脊髓背角(spinal dorsal horn,SDH)是外周傷害性信息向中樞傳遞的初級門戶,該區(qū)域的HCN通道已被證實在慢性疼痛的發(fā)生發(fā)展中具有重要的作用。例如大鼠脊髓背角HCN2的表達在慢性炎性痛后顯著增加,而阻斷或抑制HCN通道可大幅減輕神經(jīng)病理性疼痛和炎性痛模型動物的痛行為[5-7]。SDH由淺至深分為Ⅰ~Ⅵ層,其中Ⅰ~Ⅱ?qū)訕?gòu)成脊髓背角淺層,對疼痛的傳遞與整合起著重要的調(diào)控作用。我們近期研究初步表明,HCN通道在脊髓背角淺層廣泛表達,且HCN4與興奮性軸突末梢標志物囊泡谷氨酸轉(zhuǎn)運體2(vesicular glutamate transporter 2,VGLUT2)顯著共染[8-9],但HCN通道在神經(jīng)元和膠質(zhì)細胞中的具體表達情況及在神經(jīng)元亞細胞結(jié)構(gòu)如樹突、軸突等部位的分布尚不清楚。因此,本研究應用免疫組織化學和激光共聚焦成像技術,觀察SDH中HCN通道的4種亞型在正常大鼠脊髓背角淺層的特異性分布情況,以期為進一步揭示SDH的HCN通道在痛信號通路中的作用提供參考資料。

    材料和方法

    1 動物

    3~5周齡清潔級 Sprague-Dawley(SD)大鼠 27只,體重80~100 g,雌雄不拘,來源于南昌大學動物中心[許可證號為SYXK(贛)2005-0001]。動物實驗嚴格遵循《南昌大學實驗動物管理辦法》和《南昌大學動物實驗倫理審查》的原則進行。實驗大鼠飼養(yǎng)于清潔籠具中,室內(nèi)光照保持12 h/12 h晝夜循環(huán),室溫控制在20~25℃,相對濕度在65%~70%之間,自由飲食。

    2 主要試劑及儀器

    抗HCN1~4抗體購自Alomone Labs;抗膠質(zhì)細胞原纖維酸性蛋白(glial fibrillary acidic protein,GFAP)抗體、抗降鈣素基因相關肽(calcitonin generelated peptide,CGRP)抗體和抗軸突神經(jīng)絲SMI-312抗體購于Abcam;抗神經(jīng)元核抗原(neuronal nuclei,NeuN)抗體和抗囊泡γ-氨基丁酸轉(zhuǎn)運體(vesicularγaminobutyric acid transporter,VGAT)抗體購于 Synaptic Systems;抗小膠質(zhì)細胞抗體(CD11b/c,OX-42)和抗VGLUT2抗體購自Millipore;抗異凝集素B4(isolectin B4,IB4)抗體購于Vector Labs;Alexa Fluor(AF)488、AF546、AF555和AF647標記的熒光Ⅱ抗均購于Molecular Probes;Cy5和rhodamine標記的熒光Ⅱ抗購于Jackson ImmunoResearch Labs;冰凍切片機(CM1950)購自Lecia。激光共聚焦顯微鏡(LSM700)及圖像分析軟件(ZEN 2010)購自 Carl Zeiss。

    3 主要方法

    3.1 免疫組織化學染色脊髓切片制備 給大鼠腹腔注射烏拉坦(1.5 g/kg)麻醉后開胸暴露心臟,用預冷的0.9%NaCl 100 mL行心臟灌流,再以4%多聚甲醛(pH 7.4,4℃)150 mL灌注固定,灌畢立即剪開大鼠背部皮膚,分離脊柱兩側(cè)肌肉、離斷兩側(cè)肋骨,取出連同脊髓的脊柱,并完全浸入4%多聚甲醛中。以腹側(cè)入路切除椎板,以腰骶膨大部為中心游離出脊髓(腰1~骶3),于顯微鏡下剝離脊髓表面硬脊膜、軟脊膜及附著神經(jīng)根。取出脊髓放入4%多聚甲醛中固定6 h,充分漂洗后置于30%蔗糖溶液3 d(4℃),取出脊髓,切去脊髓頭尾,留取L4~L5腰骶膨大部,OCT包埋劑包埋,用冰凍切片機連續(xù)橫向切片(片厚30 μm),放置于0.01 mol/L磷酸鹽緩沖液(phosphatebuffered saline,PBS)液中存放,按下述方法進行免疫熒光染色。

    3.2 免疫熒光組織化學染色方法 將上述脊髓橫切片在0.01 mol/L PBS液中充分漂洗后進行常規(guī)漂染:Ⅰ抗 HCN1~4(1∶200)分別與神經(jīng)元標志物NeuN(1∶200)、星形膠質(zhì)細胞標志物 GFAP(1∶2 000)、小膠質(zhì)細胞標志物OX-42(1∶200)、非肽能初級傳入軸突末梢標志物IB4(1∶100)、肽能初級傳入軸突末梢標志物CGRP(1∶100)、神經(jīng)元樹突標志物微管相關蛋白2(microtubule-associated protein 2,MAP2;1∶1 000)、神經(jīng)元軸突標志物 SMI-312(1∶1 000)和抑制性中間神經(jīng)元軸突末梢標志物VGAT(1∶1 000)進行共染,于4℃搖床上孵育3 d。挑出脊髓片用PBS漂洗3次,每次5 min,加入與Ⅰ抗種屬對應的Ⅱ抗 AF488(1∶500)、AF546(1∶400)、AF555(1∶400)、AF647(1∶400)、rhodamine(1∶1 000)和Cy5(1∶400)于4℃搖床上孵育過夜,取出脊髓片充分漂洗后封片。用激光共聚焦顯微鏡采集10倍(×10)、40倍(×40)及63倍(×63,油鏡)的圖像進行分析處理,根據(jù)實際情況調(diào)節(jié) Z值(0.5~1 μm)。HCN1~4抗體的特異性已在我們之前的研究中得到驗證[9]。

    3.3 熒光定量分析 采用ZEN 2010分析軟件自帶的熒光定量功能,測定HCN1~4在SDHⅠ~Ⅱ?qū)觾?nèi)側(cè)帶、中側(cè)帶和外側(cè)帶的平均熒光強度(mean fluorescence intensity,MFI),圖像均取自同一放大倍數(shù)(×10,zoom=1),從每只大鼠切取的脊髓片中隨機挑取2~3張,在兩側(cè)背角Ⅰ~Ⅱ?qū)觾?nèi)、中、外側(cè)帶各取150 pixel×150 pixel正方形方框并測量方框內(nèi)的MFI,再取同樣大小的方框置于空白處以測定背景MFI,用來標準化HCN1~4的MFI(兩者相減),取均值作為其MFI。采用上述同種方法,圖像取同一放大倍數(shù)(×10,zoom=0.5),定量分析HCN1~4在脊髓灰質(zhì)各層(Ⅰ~Ⅱ?qū)?、Ⅲ~Ⅳ層和Ⅴ~Ⅵ層)及白質(zhì)內(nèi)的MFI。

    3.4 共定位分析 采用ZEN 2010分析軟件自帶的共染定量分析功能,測定并分析HCN1~4分別與SDH Ⅰ~Ⅱ?qū)痈鳂酥疚颪euN、GFAP、OX-42、MAP2、SMI-312、CGRP、IB4和VGAT的共定位情況。圖像均取自同一放大倍數(shù)(×40,zoom=1),從每只大鼠切取的脊髓片中隨機挑取2~3張,統(tǒng)計每張脊髓片兩側(cè)背角內(nèi)、中、外側(cè)帶400 pixel×400 pixel正方形方框內(nèi)HCN1~4分別與各標志物的共定位系數(shù),并取其均值作為最終共定位系數(shù)。

    4 統(tǒng)計學處理

    所有計量資料以均數(shù)±標準誤(mean±SEM)表示。采用SPSS17.0統(tǒng)計軟件進行統(tǒng)計學分析,數(shù)據(jù)經(jīng)正態(tài)性和方差齊性檢驗后,兩組獨立樣本間的比較采用兩獨立樣本t檢驗,3組及以上樣本間比較采用單因素方差分析。以P<0.05為差異有統(tǒng)計學意義。

    結(jié) 果

    1 HCN通道在脊髓的大體分布

    采用免疫組化染色方法,觀察HCN1~4在脊髓中的分布模式,結(jié)果顯示HCN通道的4種亞型均在脊髓灰質(zhì)中表現(xiàn)出較強的熒光信號,而在白質(zhì)中熒光信號微弱,見圖1A~D。進一步熒光定量分析結(jié)果顯示HCN1~4在脊髓背角Ⅰ~Ⅱ?qū)觾?nèi)側(cè)帶、中側(cè)帶和外側(cè)帶的MFI無顯著差異(P>0.05),見圖1E。

    Figure 1.Distribution of HCN1~4 in the spinal cord.A~D:representative images of immunolabeling of HCN1,HCN2,HCN3 and HCN4 in the spinal cord(scale bar=200μm);A1~D3:the enlargements of the areas showing in the box in A~D(from top to bottom),respectively(scale bar=20 μm);E:the mean fluorescence intensity(MFI)of HCN1~4 in the lateral,central and medial dorsal horn.Mean±SEM.n=11.圖1 HCN通道亞型在脊髓的大體分布

    此外,HCN2~4主要集中分布在脊髓背角Ⅰ~Ⅱ?qū)?,其MFI與其它各層及白質(zhì)之間均有顯著性差異(P<0.01);而HCN1灰質(zhì)MFI雖與白質(zhì)的MFI相比有顯著差異(P<0.01),但其Ⅰ~Ⅱ?qū)覯FI與其它各層的MFI相比,無顯著差異(P>0.05),見表1。

    表1 HCN1~4在脊髓背角Ⅰ~Ⅵ層和白質(zhì)中分布的平均熒光強度Table 1.The MFIof HCN1~4 in laminaeⅠ~Ⅵ and white matter of the spinal cord(Mean±SEM)

    2 HCN通道在脊髓背角神經(jīng)元及膠質(zhì)細胞上的分布

    為明確HCN1~4蛋白表達的細胞類型,我們觀察了HCN1~4與NeuN和GFAP、OX-42的共染情況,見圖2及表2、3。有11.2%的GFAP、8.7%的OX-42和4.8%的NeuN與HCN1共染;31.7%的NeuN和5.8%的GFAP與HCN2共染,OX-42與HCN2共染少(3%);38.6%的NeuN與HCN3共染,而GFAP和OX-42與HCN3幾乎無共染(均<1%);7.2%的GFAP與HCN4共染,NeuN和OX-42與HCN4共染少(分別為1.5%和5%)。此外,NeuN與HCN1~4的共染占HCN1~4的百分比分別為12.6%、45.6%、64.7%和2.2%,GFAP與HCN1~4的共染占HCN1~4的百分比分別為5.2%、2.3%、0.4%和3%,OX-42與HCN1-4的共染占HCN1~4的百分比分別為3.5%、1.3%、0.4%和1.6%。

    3 HCN通道在脊髓背角初級傳入神經(jīng)末梢的分布

    通過檢測HCN通道在脊髓背角初級傳入神經(jīng)末梢的分布觀察到IB4與HCN4存在共染,而與HCN1~3幾乎不共染,見圖3A。CGRP與HCN2和HCN4存在共染,與HCN1和HCN3不共染,見圖3B。

    定量分析結(jié)果表明,IB4和CGRP與HCN通道各亞型共定位存在顯著差異(P<0.05),其中6.7%的IB4與HCN4共染,9.2%的CGRP與HCN2共染,IB4、CGRP與HCN1共染少(分別為1.1%和2.1%),而IB4和CGRP與HCN3均無共染(分別為0.3%和0.9%),見表2。此外,9.5%的HCN4與IB4共染,6.3%的HCN2與CGRP共染,見表3。

    4 HCN通道在脊髓背角中間神經(jīng)元樹突和軸突的分布

    HCN1、HCN4與MAP2存在共染,HCN2、HCN3與MAP2幾乎無共染;SMI-312與HCN1~4共染均不顯著,見圖4。

    定量分析結(jié)果顯示,6%和8.7%的MAP2分別與HCN1和HCN4共染,MAP2與HCN2和HCN3的共染系數(shù)分別為2.8%和0.5%;SMI-312與HCN1~4的共染系數(shù)分別為3.8%、1.2%、0.5和4.4%,見表2。此外,8.9%的HCN4與MAP2共染,而2%的HCN1與SMI-312共染,見表3。

    5 HCN通道在脊髓背角中間神經(jīng)元軸突末梢的分布

    為明確HCN1~4在抑制性軸突末梢的分布情況,我們將其與抑制性中間神經(jīng)元軸突末梢標志物VGAT共染,見圖5。

    定量分析結(jié)果顯示,15.9%的VGAT與HCN4共染,而VGAT與HCN1~3幾乎不共染(分別為2.3%、1.6%和0.5%);同時14.7%的HCN4共表達VGAT,見表2、3。

    討 論

    1 HCN通道在脊髓的大體分布

    背角淺層是傷害性信息由外周傳入高級中樞的第一個中繼站,Ⅰ層由投射神經(jīng)元和中間神經(jīng)元組成,Ⅱ?qū)拥腟G區(qū)則是“閘門控制理論”的核心組成部分,閘門的開放與關閉決定了疼痛信息能否繼續(xù)向上傳遞,在慢性疼痛的發(fā)生與發(fā)展過程中具有至關重要的作用[10-12]。因此,HCN通道在脊髓背角淺層的表達尤為被學者們關注。在成年雄性Wistar大鼠或C57BL/6小鼠中,HCN2主要位于脊髓背角的Ⅰ和Ⅱ外層(Ⅱo)[13-14],HCN4 則主要位于Ⅰ和Ⅱ內(nèi)層(Ⅱi)[15]。與上述結(jié)果一致,我們近年已發(fā)表的工作表明HCN亞型在脊髓背角Ⅰ~Ⅵ各層均有分布,且以Ⅰ~Ⅱ?qū)訛橹鳎?]。由于SG神經(jīng)元隨著放電模式的不同,在脊髓背角呈現(xiàn)不同的分布模式,如適應性放電神經(jīng)元主要分布在SG區(qū)的外側(cè)帶[16]。因此,有必要明確HCN1~4在脊髓背角淺層的內(nèi)、中、外側(cè)帶是否存在差異性表達。本研究結(jié)果顯示它們之間的分布無顯著差異,進一步的定量分析顯示,HCN2~4在脊髓背角的分布主要以Ⅰ~Ⅱ?qū)訛橹?。由于Ⅰ~Ⅱ?qū)优c痛信號的傳遞密切相關,因此HCN通道在該區(qū)域的高表達表明其在疼痛的調(diào)制中可能具有重要的作用。

    Figure 2.Specific localization of HCN isoforms in different cell types in spinal dorsal horn.A:representative images of co-immunostaining for HCN1~4(green)and NeuN(red)in superficial spinal dorsal horn;B:representative images of co-immunostaining for HCN1~4(green),GFAP(blue)and OX-42(red)in superficial spinal dorsal horn.圖2 HCN亞型在脊髓背角細胞中的特異性表達

    2 HCN通道在脊髓背角細胞水平上的分布

    Figure 3.Distribution of HCN isoforms in the primary afferent nerve endings of the spinal dorsal horn.Representative images of coimmunostaining for HCN1~4(green),IB4(blue)and CGRP(red)in superficial spinal dorsal horn were shown.圖3 HCN通道各亞型在脊髓背角初級傳入神經(jīng)末梢的分布

    脊髓背角主要由神經(jīng)元和膠質(zhì)細胞組成,后者主要包括星形膠質(zhì)細胞和小膠質(zhì)細胞?;罨哪z質(zhì)細胞通過釋放多種炎性細胞因子如腫瘤壞死因子α和白細胞介素1β等致神經(jīng)病理性疼痛膠質(zhì)細胞的激活是神經(jīng)痛發(fā)病的重要因素,葛根素[17]及小膠質(zhì)細胞抑制劑米諾環(huán)素[18]等可減少這些致痛物質(zhì)的生成以有效緩解疼痛。我們已發(fā)表的研究觀察到米諾環(huán)素可在數(shù)分鐘內(nèi)顯著降低SG神經(jīng)元的HCN通道介導的電流(Ih)的振幅從而降低其興奮性[19],證實了米諾環(huán)素鎮(zhèn)痛的神經(jīng)機制。那么米諾環(huán)素有無可能通過作用于膠質(zhì)細胞的HCN通道而發(fā)揮作用呢?在大鼠的大腦皮質(zhì)和海馬中,Honsa等[20]檢測到這兩個區(qū)域的星形膠質(zhì)細胞在生理情況下表達極少量的HCN1~3,在缺血刺激下,這些細胞的HCN1~3可顯著增加,而HCN4在生理和病理情況下均未發(fā)現(xiàn)有表達。但是,HCN通道在脊髓背角的膠質(zhì)細胞是否存在表達尚不明確。本研究首次揭示正常情況下脊髓背角的星形膠質(zhì)細胞表達HCN1、HCN2和HCN4通道,而HCN3與星形膠質(zhì)細胞無共定位。由于病理性疼痛狀態(tài)下星形膠質(zhì)細胞顯著激活,HCN通道的表達有可能如上述缺血刺激亦大幅上升,從而加重疼痛。另一方面,雖然脊髓背角HCN1與小膠質(zhì)細胞標志物OX-42存在少量共染,但其余3種亞型與OX-42均幾乎無共定位,表明小膠質(zhì)細胞的HCN通道對疼痛的作用有限。此外,多個電生理研究均已在背角淺層神經(jīng)元上記錄到Ⅰh[19,21],本研究觀察到NeuN共染較多的亞型為HCN2和HCN3。研究表明,脊髓背角淺層的神經(jīng)元多為中間神經(jīng)元[22],84.1%小清蛋白陽性神經(jīng)元和53.9%的PKCγ陽性神經(jīng)元被檢測有HCN4表達[15],此外,HCN4還被檢測到表達在不含鈣結(jié)合蛋白的Pax2陽性的背角Ⅱ?qū)由窠?jīng)元中[23]。目前HCN通道在SDH中間神經(jīng)元的定位尚不完全清楚,進一步研究HCN通道在脊髓背角中間神經(jīng)元亞群中的分布,對闡明HCN通道在神經(jīng)病理性疼痛和炎性痛中的作用具有至關重要的作用。

    Figure 4.Distribution of HCN isoforms in dendrites and axons of interneurons in spinal dorsal horn.A:representative images of coimmunostaining for HCN1~4(green)and MAP2(red)in superficial spinal dorsal horn;B:representative images of co-immunostaining for HCN1~4(green)and SMI-312(red)in superficial spinal dorsal horn.圖4 HCN通道亞型在脊髓背角神經(jīng)元樹突和軸突中的分布

    Figure 5.Distribution of HCN isoforms at axonal terminal of inhibitory interneurons in spinal dorsal horn.Representative images of co-immunostaining for HCN1~4(green)and VGAT(red)in superficial spinal dorsal horn were shown.圖5 HCN通道亞型在脊髓背角抑制性中間神經(jīng)元軸突末梢的分布

    3 HCN通道在脊髓背角神經(jīng)元亞細胞水平上的分布

    脊髓背角接收來自初級傳入軸突的輸入信號,其遞質(zhì)主要有肽能(P物質(zhì)和CGRP)和非肽能(IB4)兩種。IB4陽性的傳入神經(jīng)纖維不參與正常的機械傷害感受,但能被炎癥刺激致敏并在介導機械性炎癥超敏反應中起關鍵作用[24]。而CGRP標記陽性的肽能初級傳入神經(jīng)元也與炎癥性疼痛相關[3]。以往研究表明,HCN2主要與CGRP和SP共染,而與IB4幾乎無共染[13-14,25]。與該結(jié)果類似,我們亦觀察到HCN2主要與CGRP共染,與IB4無共染,同時我們首次發(fā)現(xiàn)HCN4與IB4存在共定位,揭示了HCN通道各亞型在傷害性初級傳入神經(jīng)末梢中有其獨特的表達模式,其中HCN2和HCN4是分布在傷害性初級傳入末梢的主要類型。本課題組在近年的一項研究中已證實HCN1~4亞型在興奮性突觸末端有表達,且以HCN4為主[8]。本研究進一步發(fā)現(xiàn)HCN1~4與VGAT均有共定位,HCN4的共定位明顯高于其他亞型。以上結(jié)果提示,在結(jié)構(gòu)功能和表達上,HCN4與中間神經(jīng)元軸突末梢存在緊密且復雜的聯(lián)系。樹突和軸突是神經(jīng)元接收和傳出信息的兩個主要結(jié)構(gòu),Jiang等[26]檢測到慢性壓迫模型誘導的神經(jīng)病理性痛模型大鼠中,受損坐骨神經(jīng)的HCN1和HCN2顯著增加,表明周圍神經(jīng)的軸突上存在HCN表達。本研究首次發(fā)現(xiàn)背角淺層的HCN1和HCN4與樹突標志物少量共染,與軸突標志物幾乎不共染,可能與背角Ⅱ?qū)拥慕馄蕵?gòu)成有關,即脊髓薄片的Ⅱ?qū)釉诠鈱W顯微鏡下表現(xiàn)為半透明狀,主要原因是此層的軸突較少。在SMI-312表達稍多的Ⅲ層,HCN1和HCN4均與其存在不同程度的共染。以上結(jié)果表明HCN1和HCN4在背角淺層神經(jīng)元接收信息的過程中發(fā)揮一定的作用。

    表2 HCN1~4與免疫標志物共染部分占免疫標志物的百分比Table 2.Percentage of marker-IRprofiles immunoreactive for HCN1~4(%.Mean±SEM)

    表3 HCN1~4與免疫標志物共染部分占HCN1~4的百分比Table 3.Percentage of HCN1~4-IRprofiles immunoreactive for the markers(%.Mean±SEM)

    綜上所述,本研究揭示了HCN通道各亞型在大鼠脊髓背角細胞和亞細胞結(jié)構(gòu)上的定位特點,為闡明HCN通道在脊髓水平的生理和病理作用提供了參考資料,有助于深入研究HCN通道在脊髓背角的調(diào)控機制。

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