周小虎,李 理
(華南理工大學(xué)食品科學(xué)與工程學(xué)院,廣東廣州 510641)
中國(guó)傳統(tǒng)發(fā)酵豆制品醬油、豆豉、納豆、腐乳(sufu)在調(diào)味品中具有重要地位,而腐乳因其獨(dú)特而誘人的風(fēng)味被稱(chēng)為“中國(guó)奶酪”或“東方芝士”。腐乳可分為紅方、白方、青方以及其他各種花色腐乳,白腐乳因其獨(dú)特的風(fēng)味和純凈的外觀在華南地區(qū)及海外擁有較大的市場(chǎng)[1-2]。
白腐乳的生產(chǎn)工藝包括大豆浸泡、打漿、濾漿、煮漿、點(diǎn)漿、壓榨成型、切塊,以及接種毛霉、前酵、加鹽腌制、灌湯后酵、包裝等。雖然接種了純種毛霉進(jìn)行前期發(fā)酵[3],但由于固態(tài)發(fā)酵是在開(kāi)放的空間進(jìn)行,環(huán)境中的微生物特別是細(xì)菌仍然可以進(jìn)入并參與發(fā)酵,從而影響腐乳的品質(zhì)。白腐乳在后酵過(guò)程中常常出現(xiàn)的白點(diǎn)[4]、脹蓋漏汁[5]等感官品質(zhì)問(wèn)題,均可能與后酵過(guò)程中的微生物相關(guān)。此外,也有報(bào)道顯示,腐乳生產(chǎn)原料豆腐可能被金黃色葡萄球菌、腸桿菌等食源致病菌污染而存在安全問(wèn)題[6]。因此,解析白腐乳發(fā)酵過(guò)程中出現(xiàn)的細(xì)菌群落變化將對(duì)腐乳生產(chǎn)及產(chǎn)品質(zhì)量提升具有很好的指導(dǎo)作用。
研究表明,高通量測(cè)序方法可以在脫氧核糖核酸(deoxyribonucleic acid,DNA)層面比較清晰地展示發(fā)酵體系中出現(xiàn)的微生物[7],而傳統(tǒng)的培養(yǎng)組學(xué)則可以從發(fā)酵體系中得到純的菌種,可以進(jìn)一步從菌種的角度進(jìn)行深入的研究。目前,對(duì)腐乳菌群的研究主要集中在紅腐乳[8-10],白腐乳菌群研究的報(bào)道較少。因此,本研究擬對(duì)白腐乳發(fā)酵過(guò)程的全過(guò)程(從前酵至后酵180 d)細(xì)菌群落的演替進(jìn)行系統(tǒng)的研究,為進(jìn)一步研究白腐乳發(fā)酵過(guò)程中的細(xì)菌群落變化對(duì)白腐乳品質(zhì)的影響奠定基礎(chǔ)。
1.1.1 原料
實(shí)驗(yàn)原料均采自廣東某腐乳廠(chǎng)同一批次生產(chǎn)的白腐乳樣品,實(shí)驗(yàn)原料包括酸漿水(SJ)、白坯(BP)、毛坯(MP)、鹽坯(YP)、后酵45 d(CG45)、后酵90 d(CG90)、后酵180 d(CG180)。所有樣品均收集三份然后混勻凍存于-80 ℃冰箱備用。
1.1.2 化學(xué)試劑
核酸熒光定量染料(P7589):美國(guó)Invitrogen 公司;聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)(polymerase chain reaction,PCR)Mix、Marker、DNA提取試劑盒、PCR產(chǎn)物純化試劑盒:廣州東盛生物科技有限公司。
1.1.3 培養(yǎng)基
MRS肉湯培養(yǎng)基、M17肉湯培養(yǎng)基、LB固體培養(yǎng)基、營(yíng)養(yǎng)瓊脂(nutrient agar,NA)培養(yǎng)基:廣州環(huán)凱生物科技有限公司。
IlluminaHiSeq2500高通量測(cè)序平臺(tái):美國(guó)Illumina公司;DYY-6C電泳儀:北京六一生物科技有限公司;BG-gdsAUTO(130)凝膠成像系統(tǒng):北京百晶生物技術(shù)有限公司;LDX-30KBS立式壓力蒸汽滅菌器:上海申安醫(yī)療器械廠(chǎng);SW-CJ-1C超凈工作臺(tái)蘇州凈化設(shè)備廠(chǎng);MDF-86V50超低溫冰箱:安徽中科都菱電器有限公司。
1.3.1 白腐乳加工工藝流程及操作要點(diǎn)
操作要點(diǎn):白腐乳生產(chǎn)工藝可分為四個(gè)階段。第一階段是豆腐的生產(chǎn),包括泡豆、打漿、煮漿、點(diǎn)漿、蹲腦、擠壓成型等工藝,其中用于點(diǎn)漿的凝固劑是酸漿水,即自然發(fā)酵的豆腐乳清。第二階段,也稱(chēng)為前期發(fā)酵階段,新鮮切好的豆腐塊(白坯)接種純種毛霉,在適當(dāng)?shù)臈l件下培養(yǎng)約48 h,待豆腐塊表面覆蓋著厚實(shí)的白色真菌菌絲結(jié)束(毛坯)。第三階段,將毛坯進(jìn)行腌制,降低毛坯中的水分(鹽坯)。第四階段為后熟階段,將鹽坯裝罐并加入含有一定濃度的食鹽和酒精的湯汁,陳放1~6個(gè)月然后包裝白腐乳成品。
1.3.2 白腐乳發(fā)酵過(guò)程中細(xì)菌群落演替分析
對(duì)各個(gè)樣品按照試劑盒操作說(shuō)明進(jìn)行總DNA提取,并通過(guò)0.8%瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)DNA提取質(zhì)量,同時(shí)采用紫外分光光度計(jì)對(duì)DNA進(jìn)行定量。然后,以各樣本提取的總細(xì)菌基因組DNA為模板,以16S rRNA 基因V3-V4區(qū)特異引物338F(5'-ACTCCTACGGGAGGCAGCA-3')和806R(5'-GGACTACHVGGGTWTCTAAT-3')對(duì)模板進(jìn)行PCR擴(kuò)增,PCR擴(kuò)增體系(25 μL):5×反應(yīng)緩沖液(reaction buffer)5 μL,5×GC buffer 5 μL,脫氧核苷三磷酸(deoxyribonucleoside triphosphate,dNTP)(2.5 mmol/L)2 μL,正向引物(Forward primer)(10 μmol/L)1 μL,反向引物(10 μmol/L)1 μL,DNA 模板2 μL,雙蒸水(ddH2O)8.75 μL,Q5 DNA聚合酶0.25 μL。PCR擴(kuò)增參數(shù):98 ℃預(yù)變性2 min;98 ℃變性15 s,55 ℃退火30 s,72 ℃延伸30 s,擴(kuò)增30個(gè)循環(huán);72 ℃末端延伸5 min。PCR擴(kuò)增產(chǎn)物通過(guò)2%瓊脂糖凝膠電泳進(jìn)行檢測(cè),并對(duì)目標(biāo)片段進(jìn)行切膠回收。最后,送樣至派諾森生物使用Illumina MiSeq平臺(tái)進(jìn)行高通量測(cè)序及生物信息學(xué)分析。
1.3.3 白腐乳發(fā)酵過(guò)程中可培養(yǎng)細(xì)菌的分離鑒定
采用傳統(tǒng)平板法對(duì)部分可培養(yǎng)細(xì)菌進(jìn)行分離、純化,采用16S rDNA對(duì)分離的細(xì)菌進(jìn)行鑒定。用于分菌的樣品及其采集和保存方法有1.1中所有樣品和后酵30 d腐乳(CG30),其采集和保存方法同1.1。
細(xì)菌的分離純化:在超凈臺(tái)中取5 g腐乳于研缽中(酸漿水取5 mL),研磨后加入45 mL生理鹽水混勻制備樣品液,在超凈臺(tái)中吸取1 mL樣品液于9 mL無(wú)菌生理鹽水中,依次稀釋至10-3、10-4、10-5倍,分別取100 μL用MRS和M17固體培養(yǎng)基依次傾注倒平板,分別取100 μL于LB、NA固體培養(yǎng)基涂布,于30 ℃的恒溫培養(yǎng)箱中,培養(yǎng)72 h。挑取單菌落液體培養(yǎng),經(jīng)平板劃線(xiàn)法進(jìn)一步純化直至獲得單菌落。將分離得到的菌株編號(hào)并于-80 ℃冰箱甘油保藏備用。
分離菌株的鑒定:采用東盛生物細(xì)菌DNA提取試劑盒按照說(shuō)明書(shū)步驟提取每個(gè)分離菌株的基因組DNA,然后使用16S rDNA通用引物(上游引物27F:5'-AGAGTTTGATCCTGGCTCAG-3'和下游引物1495R:5'-CTACGGCTACCTTGTTACGA-3')進(jìn)行PCR擴(kuò)增,PCR擴(kuò)增體系為50 μL,包括:λDNA 1 μL,引物27F和引物1495R各2 μL,2×PCR Mix 20 μL,超純水25 μL。PCR擴(kuò)增程序:94 ℃預(yù)變性5 min;94 ℃變性30 s,42 ℃退火30 s,72 ℃延伸1 min,30次循環(huán);72 ℃再延伸10 min。在瓊脂糖凝膠中加入GoldView染料制膠,取8.0 μLPCR產(chǎn)物進(jìn)行瓊脂糖凝膠電泳,在紫外凝膠成像儀下觀察。然后利用PCR產(chǎn)物及DNA片段純化試劑盒按照其操作手冊(cè)從PCR反應(yīng)液中回收DNA片段,將回收得到的DNA片段送到生工生物工程(廣州)公司進(jìn)行DNA測(cè)序,將測(cè)得的DNA序列在美國(guó)國(guó)家生物技術(shù)信息中心(national center of biotechnology information,NCBI)進(jìn)行基本局部比對(duì)搜索工具(basic local alignment search tool,BLAST)對(duì)比。
1.3.4 數(shù)據(jù)處理
數(shù)據(jù)分析使用Excel 2019、Origin 2018等軟件。生物信息學(xué)分析:采用滑動(dòng)窗口法對(duì)FASTQ格式的雙端序列逐一作質(zhì)量篩查,隨后利用FLASH軟件(v1.2.7)對(duì)通過(guò)質(zhì)量初篩的雙端序列根據(jù)重疊堿基進(jìn)行配對(duì)連接,根據(jù)每個(gè)樣本所對(duì)應(yīng)的Index信息,將連接后的序列識(shí)別分配入對(duì)應(yīng)樣本(要求Index序列完全匹配),從而獲得每個(gè)樣本的有效序列。對(duì)于每個(gè)OTU的代表序列,在QIIME軟件中使用默認(rèn)參數(shù),通過(guò)將OTU代表序列與對(duì)應(yīng)數(shù)據(jù)庫(kù)的模板序列相比對(duì),獲取每個(gè)OTU所對(duì)應(yīng)的分類(lèi)學(xué)信息,計(jì)算各樣本的Alpha多樣性。使用Origin 2018軟件,對(duì)關(guān)注的特定樣本在特定分類(lèi)水平的組成繪制柱狀圖。
對(duì)于微生物群落而言,有多種指數(shù)來(lái)反映其Alpha多樣性。常用的度量指數(shù)主要包括側(cè)重于體現(xiàn)群落豐富度的Chao1指數(shù)和ACE指數(shù),以及兼顧群落均勻度的Shannon指數(shù)和Simpson指數(shù)。一般而言,Chao1或ACE指數(shù)越大,表明群落的豐富度越高;Shannon指數(shù)對(duì)群落的豐富度以及稀有OTU更敏感,而Simpson指數(shù)對(duì)均勻度和群落中的優(yōu)勢(shì)OTU更敏感。樣品Alpha多樣性指數(shù)結(jié)果見(jiàn)表1。由表1可知,毛坯中細(xì)菌群落的豐富度最高,白坯和后酵180 d樣品中細(xì)菌群落的豐富度最低。
表1 白腐乳各樣品中細(xì)菌群落測(cè)序的Alpha多樣性指數(shù)Table 1 Alpha-diversity indexes of bacterial community sequencing in each sample of white sufu
腐乳發(fā)酵過(guò)程中各樣品門(mén)水平、屬水平細(xì)菌群落相對(duì)豐度分布結(jié)果見(jiàn)圖1。由圖1A可知,在后酵45 d及以前樣品中厚壁菌門(mén)(Firmicutes)和變形菌門(mén)(Proteobacteria)為優(yōu)勢(shì)菌門(mén);在整個(gè)發(fā)酵過(guò)程中厚壁菌門(mén)均為優(yōu)勢(shì)菌門(mén),尤其是在后酵45~180 d,厚壁菌門(mén)相對(duì)豐度均在92%以上。由圖1B可知,在酸漿水和白坯中相對(duì)豐度較高的有乳桿菌屬(Lactobacillus)、醋酸菌屬(Acetobacter);毛坯中的優(yōu)勢(shì)菌屬是庫(kù)特氏菌屬(Kurthia)、不動(dòng)桿菌屬(Acinetobacter)、芽孢桿菌屬(Bacillus);鹽坯中的優(yōu)勢(shì)菌屬是庫(kù)特氏菌屬(Kurthia)、魏斯氏菌屬(Weissella)和不動(dòng)桿菌屬(Acinetobacter);后酵45 d樣品中的優(yōu)勢(shì)菌屬是明串珠菌屬(Leuconostoc)、乳球菌屬(Lactococcus)和四聯(lián)球菌屬(Tetragenococcus);后酵90 d樣品中的優(yōu)勢(shì)菌屬是庫(kù)特氏菌屬、明串珠菌屬和乳球菌屬;后酵180 d樣品中的優(yōu)勢(shì)菌屬是四聯(lián)球菌屬、庫(kù)特氏菌屬和魏斯氏菌屬。
圖1 白腐乳發(fā)酵過(guò)程中細(xì)菌群落基于門(mén)水平(A)及屬水平(B)相對(duì)豐度Fig.1 Relative abundance of bacterial community in white sufu samples in the fermentation process based on phylum level (A) and genus level (B)
利用DNA提取試劑盒提取分離菌株DNA,采用通用引物27F和1492R進(jìn)行PCR擴(kuò)增并進(jìn)行瓊脂糖凝膠電泳,結(jié)果見(jiàn)圖2。由圖2可知,所有條帶堿基數(shù)均在1 500 bp左右,條帶單一且清晰明亮,可進(jìn)行PCR產(chǎn)物純化并測(cè)序。
圖2 部分菌株基于16S rDNA序列PCR擴(kuò)增產(chǎn)物瓊脂糖凝膠電泳圖Fig.2 Electrophoretogram of 16S rDNA PCR amplification products of some isolated strains
對(duì)PCR產(chǎn)物純化并測(cè)序后,將測(cè)得的DNA序列在NCBI進(jìn)行BLAST對(duì)比,相似度均在99%以上。從酸漿水、白坯、毛坯、后酵45 d、后酵90 d、后酵180 d 6個(gè)樣品中用MRS、M17、LB和NA四種培養(yǎng)基分離、純化和鑒定出64株細(xì)菌,結(jié)果見(jiàn)表2。
表2 白腐乳發(fā)酵過(guò)程中可培養(yǎng)細(xì)菌基于16S rDNA序列的分離鑒定結(jié)果Table 2 Isolation and identification results of culturable bacteria in the white sufu fermentation process based on 16S rDNA sequences
由表2可知,從酸漿水中主要分離鑒定出融合魏斯氏菌(Weissella confuse),其在白坯和毛坯中也大量分離到,而在白坯中還分離鑒定到了蠟樣芽孢桿菌(Bacillus cereus)和肉葡萄球菌(Staphylococcus carnosus);在毛坯中還分離鑒定到乳酸乳球菌(Lactococcus lactis)和糞腸球菌(Enterococcus faecalis),這兩種細(xì)菌在后酵45 d和90 d腐乳中均有分離到;除乳酸乳球菌外,后酵45 d和90 d樣品中還分離出較多的腸球菌;后酵180 d樣品中分離鑒定到蠟樣芽孢桿菌和乳酸乳球菌。
酸漿水中豐度較高的細(xì)菌有乳桿菌和醋酸菌,這和課題組先前的研究一致(樣品源自不同工廠(chǎng))[11],本實(shí)驗(yàn)從酸漿水、白坯和毛坯中都分離到比較多的融合魏斯氏菌。魏斯氏菌是革蘭氏陽(yáng)性細(xì)菌,細(xì)胞不運(yùn)動(dòng),顯微鏡下菌體是短桿狀的,其廣泛分布于食物、土壤、胃腸道和呼吸道等環(huán)境中,其中一個(gè)分支由食竇魏斯氏菌和融合魏斯氏組成,它們常分布在含鹽的發(fā)酵食品中。魏斯氏菌是參與食品發(fā)酵的重要乳酸菌之一,對(duì)于發(fā)酵食品的發(fā)酵進(jìn)程和風(fēng)味有重要的影響和貢獻(xiàn)[12]。
序列分析的結(jié)果顯示,從毛坯開(kāi)始出現(xiàn)乳球菌,且在后酵45~90 d樣品中乳球菌屬相對(duì)豐度較高,而通過(guò)培養(yǎng)組學(xué)分析,從白坯到后酵的各個(gè)階段均分離到多株乳酸乳球菌,說(shuō)明乳球菌是白腐乳發(fā)酵過(guò)程中的主要細(xì)菌之一。乳酸乳球菌被廣泛應(yīng)用于發(fā)酵乳制品中,對(duì)牛乳蛋白質(zhì)的降解和酸奶風(fēng)味具有重要的影響[13]。
明串珠菌屬在后酵45~150 d腐乳中相對(duì)豐度較高。明串珠菌屬是兼性厭氧菌,具有嗜溫性,廣泛存在于發(fā)酵蔬菜、肉制品等[14],但并未分離到該菌。在白坯中分離到肉葡萄球菌,該菌對(duì)發(fā)酵香腸的風(fēng)味有重要作用[15]。在后酵45~90 d腐乳中還分離鑒定到較多的糞腸球菌、耐久腸球菌及未鑒定到種的腸球菌,腸球菌在其他腐乳中也有分布[9]。有報(bào)道表明,某些芽孢桿菌、乳桿菌和腸桿菌會(huì)導(dǎo)致辣椒醬及豆瓣醬脹蓋[16-17],本研究高通量測(cè)序結(jié)果顯示白腐乳發(fā)酵后期也存在一定的芽孢桿菌、乳桿菌和腸桿菌,因此后酵過(guò)程中某些活躍的芽孢桿菌、乳桿菌和腸桿菌可能對(duì)腐乳“脹蓋漏汁”產(chǎn)生影響。在白坯及后酵180 d腐乳中均分離到蠟樣芽孢桿菌,但在后酵階段不是優(yōu)勢(shì)菌屬。
在腐乳成熟的后期,嗜鹽四聯(lián)球菌的豐度越來(lái)越高。雖然四聯(lián)球菌的豐度很高,一開(kāi)始并未分離到該菌。后期通過(guò)文獻(xiàn)調(diào)研,在培養(yǎng)基中增補(bǔ)了氯化鈉后從后熟30 d腐乳中分離到11株嗜鹽四聯(lián)球菌(Tetragenococcus halophilus)。嗜鹽四聯(lián)球菌對(duì)鹽的耐受性較強(qiáng),是一種革蘭氏陽(yáng)性、四聚體形成、不活動(dòng)、過(guò)氧化氫酶陰性、廣泛存在于高鹽發(fā)酵食品中的微生物[18-19],在發(fā)酵食品中具有抑制組胺產(chǎn)生[20]、降解黃曲霉毒素B1的作用[21],并且能夠產(chǎn)生風(fēng)味物質(zhì)[22]。后酵45 d和90 d腐乳中乳球菌、明串珠菌和四聯(lián)球菌等菌屬相對(duì)豐度較高,后酵180 d腐乳中四聯(lián)球菌、魏斯氏菌和乳桿菌等菌屬相對(duì)豐度較高,可能是由于這些菌屬的某些菌種對(duì)腐乳后酵體系的高鹽、微氧及復(fù)雜的營(yíng)養(yǎng)環(huán)境具有較好的適應(yīng)性,并且對(duì)其他微生物產(chǎn)生抑制作用。
值得關(guān)注的是,在發(fā)酵的過(guò)程中還出現(xiàn)了不動(dòng)桿菌和庫(kù)特氏菌。不動(dòng)桿菌屬在毛坯中的相對(duì)豐度最高,在發(fā)酵各階段都有存在,這和XU D D等[10]的研究結(jié)果一致;不動(dòng)桿菌屬的部分種是有感染性的[23-24],但大多數(shù)種是非致病的環(huán)境生物,不動(dòng)桿菌屬也存在于其他各種發(fā)酵食品中[15,22]。庫(kù)特氏菌在鹽坯和后酵90 d樣品中豐度較高,在腐乳發(fā)酵過(guò)程中一直存在且有一定的波動(dòng),這與LIANG J J等[25]的結(jié)果相似。
對(duì)不同樣品進(jìn)行細(xì)菌的分離鑒定,發(fā)現(xiàn)能夠分離鑒定出的細(xì)菌種類(lèi)較少,并且純培養(yǎng)出的細(xì)菌菌屬不是該樣品豐度最高的菌屬,可能原因是培養(yǎng)基、培養(yǎng)條件不適合該樣品高豐度菌屬生長(zhǎng),或分菌時(shí)挑取菌數(shù)有限,而純培養(yǎng)出來(lái)的細(xì)菌是較適合實(shí)驗(yàn)條件生長(zhǎng)的,或是高通量測(cè)序方法可能檢測(cè)到死亡的微生物群的完整核苷酸序列[26-27]。
通過(guò)高通量測(cè)序及培養(yǎng)分離結(jié)合的方法分析了白腐乳發(fā)酵過(guò)程中細(xì)菌群落演替。白腐乳從前酵到后酵180 d的整個(gè)發(fā)酵過(guò)程中細(xì)菌群落均有較大變化,從白坯、毛坯、后熟45 d腐乳至后熟180 d腐乳中的優(yōu)勢(shì)菌屬分別為:乳酸桿菌屬、不動(dòng)桿菌屬、明串珠菌屬和四聯(lián)球菌屬。從白腐乳生產(chǎn)及發(fā)酵過(guò)程中分離鑒定出75株細(xì)菌,包括融合魏斯氏菌(Weissella confusa)、蠟樣芽孢桿菌(Bacillus cereus)、肉葡萄球菌(Staphylococcus carnosus)、乳酸乳球菌(Lactococcus lactis)、嗜鹽四聯(lián)球菌(Tetragenococcus halophilus)、糞腸球菌(Enterococcus faecalis)和耐久腸球菌(Enterococcus durans)等。