鄒毅輝,黃紅宣,蔡藝敏,王小平
(漳州衛(wèi)生職業(yè)學(xué)院藥學(xué)系,福建漳州 363000)
閩南地區(qū)陳年腌制的蘿卜干又稱老菜脯,是將白蘿卜切條后,經(jīng)過日曬和鹽腌后藏于老壇中發(fā)酵多年而成,年份越久,顏色越黑,風(fēng)味越獨特,具有清熱生津、增進食欲、促進消化、降低膽固醇等作用,還含有抗癌和抑菌活性成分[1-3]。由于閩南陳年蘿卜干腌制發(fā)酵時間較長,阻礙了其商品化進程。如何能加速其發(fā)酵過程,同時又不影響其食用價值,是目前迫切需要解決的問題。由于乳酸菌制劑發(fā)酵蔬菜可以縮短發(fā)酵周期,提高產(chǎn)品安全性和品質(zhì)而備受研究者的關(guān)注[4-5]。
當(dāng)前大多數(shù)對傳統(tǒng)發(fā)酵食品發(fā)酵劑的研究都是在傳統(tǒng)微生物技術(shù)的基礎(chǔ)上,通過從環(huán)境中篩選符合預(yù)期的菌種來對其發(fā)酵過程進行研究,此方法并不能將環(huán)境中所有的微生物進行分離、純化和培養(yǎng),也不能說明各菌種之間的相互交叉作用,不能全面的解釋各微生物在食品發(fā)酵過程中所起的作用[6]。高通量測序技術(shù)(high-throughput sequencing,HTS)又稱下一代測序技術(shù)(next-generation sequencing technology,NGS)在當(dāng)今的食品質(zhì)量和安全性研究中,它已變得越來越重要。NGS可以在一次運行中產(chǎn)生數(shù)百萬個序列,并部分避免了依賴培養(yǎng)物的方法中的某些固有偏差。根據(jù)序列信息,可以鑒定出不同的微生物分類群,包括無法培養(yǎng)和難以通過培養(yǎng)方法檢測到的微生物,都能更大程度地了解發(fā)酵食品及其微生物之間的關(guān)系[7]。高通量測序技術(shù)已廣泛應(yīng)用于傳統(tǒng)發(fā)酵食品中微生物多樣性及動態(tài)演替規(guī)律的研究[8-13]。
目前,國內(nèi)外未見對閩南陳年腌制蘿卜干中細(xì)菌組成結(jié)構(gòu)的研究報道。本研究以閩南地區(qū)的蘿卜干為研究對象,運用高通量測序技術(shù)研究不同年份閩南陳年腌制蘿卜發(fā)酵過程中細(xì)菌群落結(jié)構(gòu)組成,考察陳年腌制蘿卜發(fā)酵過程中細(xì)菌群落的多樣性和菌群結(jié)構(gòu)的演替規(guī)律。采用下一代測序(NGS)技術(shù)對不同年份蘿卜干進行測序,初步探索了蘿卜干發(fā)酵過程中細(xì)菌群落結(jié)構(gòu)組成,發(fā)酵過程中細(xì)菌群落的多樣性和菌群結(jié)構(gòu)的變化規(guī)律,并采用聚類分析(cluster analysis,CA)和主成分分析(principal component analysis,PCA)分析不同年份閩南腌制蘿卜干細(xì)菌菌群差異,為后續(xù)縮短閩南陳年腌制蘿卜發(fā)酵時間提供理論指導(dǎo)。
1.1.1 材料
2018年05月到08月在福建漳浦縣農(nóng)貿(mào)市場家庭式工坊供貨戶采購腌制于密封老壇中的發(fā)酵年份為3年(編號LL03)、5年(編號LL05)、10年(編號LL10)、15年(編號LL15)、20年(編號LL20)的蘿卜干,儲存于實驗室-20 ℃冰箱保存。5種樣品均呈長條狀,質(zhì)軟帶韌性,氣濃香、味咸,其中LL03表面和斷面呈淺棕色;LL05表面和斷面呈棕褐色;LL10表面和斷面呈黑褐色、易折斷;LL15表面和斷面呈黑褐色、易折斷;LL20表面和斷面呈烏黑色、易折斷。
1.1.2 化學(xué)試劑
E.Z.N.ATM Mag-Bind Soil 脫氧核糖核酸(deoxyribonucleic acid,DNA)提取試劑盒:美國OMEGA公司;Qubit3.0 DNA檢測試劑盒:美國Life公司;2×TaqMaster Mix:南京諾唯贊生物科技有限公司;MagicPure Size Selection DNA Beads:北京全式金生物技術(shù)有限公司。
Pico-21臺式離心機:美國Thermo Fisher公司;TND03-H-H混勻型干式恒溫器:深圳拓能達科技有限公司;DYY-6C電泳儀:北京市六一儀器廠;T100TM Thermal Cyeler聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)(polymerase chain reaction,PCR)儀:美國BIORAD公司。
1.3.1 DNA提取、PCR擴增及Illumina Miseq測序
用液氮研磨不同年份的蘿卜干樣本后,參照E.Z.N.ATM Mag-Bind Soil DNA試劑盒的使用說明書進行DNA提取,利用1%瓊脂糖凝膠電泳檢測DNA提取質(zhì)量。利用Qubit3.0 DNA檢測試劑盒精確定量基因組DNA,以融合了Miseq測序平臺的16S rRNA V3-V4通用引物341F和805R進行聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)擴增。利用Qubit3.0 DNA檢測試劑盒從2%瓊脂糖凝膠回收DNA,精確定量后在Illumina公司的Miseq 2×300 bp平臺進行測序。
1.3.2 數(shù)據(jù)分析
利用Cutadapt軟件、Pear軟件、Prinseq軟件、Usearch軟件和uchime軟件進行序列的質(zhì)量篩選和優(yōu)化[14-15]。以97%的相似度對樣本序列進行操作分類單元(operational taxonomic unit,OTU)聚類,利用Alpha分析物種多樣性和豐富度;PCA分析樣本物種組成相似度[16];利用RDP classifier及Silva數(shù)據(jù)庫分析樣本中不同分類水平上的細(xì)菌群落結(jié)構(gòu)及組成[17]。按照生物學(xué)樣品處理基本要求,所有樣品均有3個生物學(xué)重復(fù)樣品。
5個樣本質(zhì)控后共產(chǎn)生247 538條有效序列,平均序列長度為416 bp,使用97%相似度的OTU,總共聚成480個OTU,利用Mothur1.30.1做Alpha多樣性分析,結(jié)果見表1。由表1可以看出,LL20樣本的Chao指數(shù)最大,說明LL20樣本的細(xì)菌豐富度最高。細(xì)菌群落的多樣性可以用Shannon指數(shù)以及Simpson指數(shù)衡量[19]。
表1 Alpha多樣性指數(shù)統(tǒng)計Table 1 Statistics of Alpha diversity indexes
圖1 香農(nóng)指數(shù)(A)辛普森指數(shù)(B)多樣性曲線Fig.1 Diversity curves of Shannon index (A) and Simpson index (B)
由表1可以看出,樣本LL03的Shannon指數(shù)最小,Simpson指數(shù)值最大,說明LL03樣本細(xì)菌多樣性最低,樣本LL20的Shannon指數(shù)最大,Simpson指數(shù)值最小,說明LL20樣本細(xì)菌多樣性最高。利用R軟件(3.2)制作稀釋性曲線圖見圖1。由圖1可知,Shannon指數(shù)及Simpson指數(shù)曲線均隨著測序量增大趨于飽和狀態(tài),這說明此測序深度水平下,可以反映樣品中絕大多數(shù)的細(xì)菌群落信息[20]。
通過對不同年份的蘿卜干樣品細(xì)菌多樣性(Shannon指數(shù))分析可知,細(xì)菌多樣性隨著年份的增加而增加。細(xì)菌多樣性變化趨勢與發(fā)酵年份較長的白酒窯泥一致[12]。隨著發(fā)酵時間的延長,蘿卜干中的化學(xué)成分發(fā)生了改變[1]。有機物含量和種類的變化可能是導(dǎo)致細(xì)菌多樣性增加的主要原因。
基于OTU的樣本聚類分析和主成分分析,樣本間的距離越小說明樣本間的細(xì)菌群落越相似。樣本聚類樹分析結(jié)果見圖2A。由圖2A可知,樣品LL03在單獨的一個分枝上,樣品LL05、LL10、LL15、LL20在另一個大分枝上。由此可知,在發(fā)酵5年以上的樣本細(xì)菌群落系統(tǒng)進化的差異較小。
利用主成分分析(PCA)蘿卜干樣本細(xì)菌群落結(jié)構(gòu)的相似性和差異程度,結(jié)果見圖2B。由圖2B可知,5個不同年份的樣本可聚為2個大類,樣品LL03單獨一簇,樣品LL05、LL10、LL15、LL20聚為一簇,其中樣品LL20處于邊緣位置,這與聚類樹分析結(jié)果基本一致。因此,可以在細(xì)菌群落組成上將蘿卜干的發(fā)酵過程分為兩個階段,3年和5年以上的蘿卜干細(xì)菌群落組成差異大。
圖2 基于OUT水平的樣本聚類分析(A)主成分分析(B)Fig.2 Cluster analysis (A) and principal component analysis (B) of samples based on OUT level
在門、科、屬分類單位上對5個不同年份的樣本中的細(xì)菌群落結(jié)構(gòu)組成進行分析[21],不同樣本中細(xì)菌在分類門水平上的分布情況見圖3。由圖3可知,5個不同年份的樣本共鑒定出21個細(xì)菌門,其中變形菌門在全部蘿卜干樣本中都占據(jù)優(yōu)勢,所占的比例達到41%以上,是樣本中的優(yōu)勢菌門。樣品LL03的優(yōu)勢菌門為變形菌門(Proteobacteria)和擬桿菌門(Bacteroidetes),所占的比例分別為49.8%和49.1%。而5年以上蘿卜干的優(yōu)勢菌門除了變形菌門(Proteobacteria)所占的比例保持在41.2%以上外;擬桿菌門(Bacteroidetes)相對豐度顯著下降;厚壁菌門(Firmicutes)、放線菌門(Actinobacteria)、疣微菌門(Verrucomicrobia)相對豐度呈現(xiàn)逐漸增加趨勢,3年和5年以上的蘿卜干在門水平上細(xì)菌群落結(jié)構(gòu)差異較大,年份越久,細(xì)菌群落越均勻。
圖3 基于門水平樣本群落結(jié)構(gòu)Fig.3 Bacteria community structure of samples based on phylum level
研究發(fā)現(xiàn),不同腌制發(fā)酵年份的蘿卜干的細(xì)菌多樣性、群落組成各不相同。在門水平上,3年蘿卜干優(yōu)勢門為變形菌門(Proteobacteria)和擬桿菌門(Bacteroidetes),而其他年份蘿卜干的優(yōu)勢菌門為變形菌門(Proteobacteria)、擬桿菌門(Bacteroidetes)、厚壁菌門(Firmicutes)。5年以上蘿卜干厚壁菌門(Firmicutes)相對組成豐度的增加,這也表明蘿卜干中細(xì)菌多樣性隨著發(fā)酵年份的增加而增加。
不同年份蘿卜干樣本中細(xì)菌群落結(jié)構(gòu)差異在屬水平上的分布情況見圖4。由圖4可知,在5個不同年份的蘿卜干樣本中相對豐度>1%的屬有26個。樣品LL03中的主要優(yōu)勢菌屬有鞘氨醇桿菌屬(Sphingobacterium),所占的比例為46.7%;藤黃單胞菌(Luteimonas),所占的比例為29.1%。樣品LL05中的優(yōu)勢菌屬為不動桿菌(Acinetobacter),所占的比例為39.6%;短波單胞菌屬(Brevundimonas)所占的比例為8.1%。樣品LL10中的優(yōu)勢菌屬為不動桿菌(Acinetobacter),所占的比例為24.6%;苯基桿菌屬(Phenylobacterium)所占的比例為12.4%。樣品LL15中的優(yōu)勢菌屬為不動桿菌(Acinetobacter),所占的比例為38.4%;馬賽菌屬(Massilia)所占的比例為10.2%。樣品LL20樣本中的優(yōu)勢菌屬為不動桿菌(Acinetobacter),所占的比例為16.4%;乳桿菌屬(Lac-tobacillus)所占的比例為8.17%。3年和5年以上的蘿卜干在屬水平上優(yōu)勢菌屬差異較大。
圖4 基于屬水平樣本群落結(jié)構(gòu)Fig.4 Bacteria community structure of samples based on genus level
3年的蘿卜干中的優(yōu)勢菌屬為鞘氨醇桿菌屬(Sphingobacterium),鞘氨醇桿菌廣泛分布于各種復(fù)雜的極端環(huán)境,多為嚴(yán)格好氧型或兼性厭氧型。能夠利用的底物寬泛,從石油、氯乙烷等高聚物到簡單無機物都能利用,這都是它們能在貧營養(yǎng)的自養(yǎng)環(huán)境中生長和繁殖的原因。鞘氨醇桿菌能夠降解纖維素等有機物[22],蘿卜富含碳水化合物,鞘氨醇桿菌屬可能在發(fā)酵前期起重要作用。
不動桿菌(Acinetobacter)能通過酸化環(huán)境和產(chǎn)生生物表面活性劑來抑制其他微生物的生長,而且對亞硝酸鹽有較好的降解效果,能夠在干燥的環(huán)境下長期存活,并具有保持環(huán)境干燥的能力[23]。閩南蘿卜干是通過傳統(tǒng)的日曬與鹽腌脫水方式制成,蘿卜干的含水量低[24],這也可能是5年以上的蘿卜干的優(yōu)勢菌屬是不動桿菌的原因。不動桿菌屬的細(xì)菌多為條件致病菌,含有較高豐度的不動桿菌的蘿卜干也存在一定的安全隱患[25]。
本研究首次分析了不同年份閩南陳年腌制蘿卜微生物群落結(jié)構(gòu),結(jié)果發(fā)現(xiàn)3年的蘿卜干中的優(yōu)勢菌屬為鞘氨醇桿菌屬(Sphingobacterium)、藤黃單胞菌(Luteimonas),5年以上的蘿卜干中的優(yōu)勢菌屬為不動桿菌(Acinetobacter)。3年的蘿卜樣本與5年以上的蘿卜干在微生物群落組成上存在較大差異,年份越久,細(xì)菌群落越均勻,細(xì)菌多樣性越高。不動桿菌(Acinetobacter)在腌制蘿卜干后期占主導(dǎo)地位,可能在發(fā)酵過程中起著特殊作用,這為食品微生物的研究提供了新方向。