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    仙人掌果多酚的提取及抗氧化活性研究

    2020-04-09 07:27:42賈金滏馬超張明范祺王崇隊張博華孟曉峰賈洪玉楊立風
    中國果菜 2020年3期
    關鍵詞:影響

    賈金滏,馬超,張明,范祺,王崇隊,張博華,孟曉峰,賈洪玉,楊立風*

    (1.中華全國供銷合作總社濟南果品研究院,山東濟南 250014;2.山東農業(yè)大學,山東泰安 271018;3.山東農業(yè)工程學院,山東濟南 250100)

    多酚是含有苯環(huán)與酚羥基結構的化合物的總稱。作為植物體內重要的次生代謝產物,植物多酚是果蔬營養(yǎng)品質的主要決定因素之一[1]。有研究表明,天然來源的植物多酚具有顯著的抗氧化活性[2],能有效預防高血脂、高血糖以及心腦血管疾病等現(xiàn)代疾病的發(fā)生[3-4]。近年來,隨著人們生活水平的提高,消費需求更趨向于綠色、營養(yǎng)和保健。植物多酚作為一種理想保健品原料,其衍生出的功能性食品越來越受到消費者的青睞。

    仙人掌(Opuntia stricta)為仙人掌科、仙人掌屬植物,原產于南/北美洲,廣泛分布于亞、非、美洲的熱帶與亞熱帶地區(qū),在我國主要集中在西南及華南沿海地區(qū)[5]。仙人掌果為仙人掌植物的果實,果肉中含有豐富的多糖、有機酸、蛋白質、氨基酸、膳食纖維、維生素、礦物元素、多酚類等[6]。吉雪慧等[7]、馬丹雅等[8]分別從仙人掌果中提取了花色苷及黃酮類物質,并對這些物質的提取工藝進行了優(yōu)化。目前,仙人掌果實僅少量被采食,深加工利用較少,關于仙人掌果實總多酚的研究報道相對更少。鑒于此,本文對仙人掌果中多酚類物質的提取條件進行了優(yōu)化,并對其抗氧化活性進行了初步評價,以期為仙人掌果實在食品、藥品以及化妝品等領域的應用提供參考依據(jù)。

    1 材料與方法

    1.1 材料與儀器

    材料:新鮮仙人掌果,采摘于2018 年10 月,購于山東恒寶食品集團有限公司。

    試劑:沒食子酸(99%)、DPPH(96%),上海麥克林生化科技有限公司,均為分析純。福林酚(BR)、碳酸鈉、抗壞血酸、無水乙醇等,均為分析純,國藥集團化學試劑有限公司。

    儀器:ME204E/02 型電子分析天平,梅特勒-托利多儀器(上海)有限公司;SHA-B 型恒溫水浴振蕩器,江蘇杰瑞爾電器有限公司;TDL-5-A 型低速大容量離心機,上海安亭科學儀器廠;Vortex-3 型旋渦混合儀,上海嘉鵬科技有限公司;UV1000 型單光束紫外/可見分光光度計,上海天美科學儀器有限公司;SHB-Ⅲ型循環(huán)水式多用真空泵,鄭州長城科工貿有限公司;N-1100 型旋轉蒸發(fā)儀,SB-1100 型恒溫水浴鍋,上海愛朗儀器有限公司;FD-2型冷凍干燥機,上海比郎儀器制造有限公司。

    1.2 試驗方法

    1.2.1 樣品預處理

    采購新鮮的仙人掌果實,經真空冷凍干燥,粉碎過篩(250 μm),避光保存。

    1.2.2 標準曲線的繪制

    采用Folin-Ciocalteus 法[9],準確稱取沒食子酸標準品0.100 0 g,去離子水超聲溶解,定容至100 mL,得到1 mg/mL 沒食子酸標準儲備液,用去離子水稀釋至40 μg/mL,冷藏備用;分別準確移取0、0.125、0.250、0.375、0.500、0.625、0.750、0.875、1.000 mL 沒食子酸標準儲備液(40 μg/mL)于試管中,去離子水補至1.0 mL,分別加入1 N 福林酚試劑1.0 mL,室溫反應3 min;分別加入10%Na2CO3溶液1.0 mL,30 ℃條件下反應30 min,于760 nm處測定吸光度,并進行線性分析。

    1.2.3 仙人掌果多酚提取含量測定

    精確稱取仙人掌果凍干粉0.5 g,以一定濃度乙醇溶液為提取溶劑進行水浴振蕩提取,3 000 r/min 離心5 min,過濾,定容至50 mL,冷藏備用,參照1.2.2 進行多酚含量測定。

    1.2.4 單因素試驗

    (1)提取溫度對仙人掌果多酚提取效果的影響

    稱取0.5 g 仙人掌果凍干粉,在乙醇濃度60%,料液比1:40(g/mL)的條件下,選擇提取溫度為30、40、50、60、70℃,水浴振蕩提取45 min,冷卻,3 000 r/min 離心5 min,過濾,定容至50 mL,參照1.2.2 測定多酚含量,平行3次,研究不同提取溫度對仙人掌果多酚提取效果的影響。

    (2)提取時間對仙人掌果多酚提取效果的影響

    稱取0.5 g 仙人掌果凍干粉,在乙醇濃度60%、料液比1:40(g/mL)、提取溫度50 ℃的條件下,水浴振蕩提取15、30、45、60、75 min。其他步驟同(1),研究不同提取時間對仙人掌果多酚提取效果的影響。

    (3)料液比對仙人掌果多酚提取效果的影響

    稱取0.5 g 仙人掌果凍干粉,在乙醇濃度60%、溫度50 ℃、提取45 min,的條件下,選取料液比1:20、1:30、1:40、1:50、1:60(g/mL)。其他步驟同(1),研究不同料液比對仙人掌果多酚提取效果的影響。

    (4)乙醇濃度對仙人掌果多酚提取效果的影響

    稱取0.5 g 仙人掌果凍干粉,分別選取乙醇濃度20%、40%、60%、80%、100%,在料液比1:40(g/mL)、提取溫度50 ℃條件下,水浴振蕩提取45 min。其他步驟同(1),研究不同乙醇濃度對仙人掌果多酚提取效果的影響。

    1.2.5 正交試驗

    在單因素試驗基礎上,以提取溫度、提取時間、料液比、乙醇濃度為因素,以多酚得率為評價指標,設計L9(34)正交試驗,確定仙人掌果多酚的最佳提取工藝,因素水平設計見表1。

    表1 仙人掌果多酚提取工藝的正交試驗設計Table 1 Orthogonal test design of extraction process of polyphenols from cactus fruit

    1.2.6 仙人掌果多酚提取物抗氧化活性評價

    DPPH 自由基于醇溶液中呈現(xiàn)深紫色,在517 nm 處顯示特征吸收峰,抗氧化劑可結合其單電子,吸光度減弱,清除程度與抗氧化劑能力呈劑量依賴關系[10]。取適當濃度的仙人掌果多酚溶液2 mL,與2 mL DPPH 溶液(400 μmol/L),30 ℃暗室條件下反應30 min,以甲醇為空白,測定517 nm 處的吸光度,計算清除率(公式1)及IC50值(公式2)。

    式中:A1為2 mL 樣品液+2 mL DPPH 溶液在517 nm 下的吸光度;A2為2 mL 去離子水+2 mL DPPH 溶液在517 nm 下的吸光度;A3為2 mL 去離子水+2 mL 樣品液在517 nm 下的吸光度;A4為2 mL 去離子水+2 mL 甲醇在517 nm 下的吸光度。

    式中:S為半數(shù)清除率(50)。

    2 結果與分析

    2.1 沒食子酸標準曲線

    利用Folin-Ciocalteus 法,以吸光度A對濃度C(μg/mL)進行線性分析,得到沒食子酸標準曲線(見圖1),回歸方程為A=0.044c+0.027 6(R2=0.999 1)。

    2.2 仙人掌果多酚提取單因素試驗

    2.2.1 提取溫度對仙人掌果多酚得率的影響

    圖2 顯示了提取溫度對多酚得率的影響。由圖可知,提取溫度低于40 ℃時,隨著溫度的升高,多酚得率不斷提高;超過40 ℃后,多酚得率逐漸下降,70 ℃時略有回升;在40 ℃時,多酚得率最高,為0.40%±0.02%。這可能是由于隨著體系溫度的升高,植物多酚在溶劑體系中的溶解度以及擴散系數(shù)均會隨之增大,這有利于溶質的浸提溶出。然而當體系溫度過高,則會導致部分多酚氧化修飾或分解,另外高溫溶劑易揮發(fā),這影響了溶質在體系中的分散度[11],從而降低了多酚的提取得率。故選擇40 ℃為最適提取溫度。

    2.2.2 提取時間對仙人掌果多酚得率的影響

    圖3 顯示了提取時間對多酚得率的影響。由圖3 可知,隨著提取時間的延長,仙人掌果多酚得率先升后降之后又上升,提取時間為30 min 時,多酚得率最高,為0.34%±0.02%。隨著提取時間的延長,多酚提取得率隨之提高,可能由于與溶劑體系充分接觸,利于內容物由細胞內溶出釋放,時間延長,溶出達到飽和;另外提取時間過長,其他雜質與目標內容物構成競爭,可能影響目標內容物的選擇性溶出[12]。故選擇30 min 為最佳提取時間。

    2.2.3 料液比對仙人掌果多酚得率的影響

    圖4 顯示了料液比對多酚得率的影響。由圖可知,隨著溶劑量的增加,多酚得率呈現(xiàn)先上升后略下降的趨勢;在料液比1:40 時,多酚得率最高,為0.36%,可能由于水醇體系可促使多酚類物質與蛋白質、多糖等大分子化合物之間氫鍵的斷裂[13],在一定范圍內增加溶劑用量,利于多酚類物質溶出,繼續(xù)降低料液比,溶出達到飽和,得率增加不明顯或有所下降。故選擇1:40 為最適料液比。

    2.2.4 乙醇濃度對仙人掌果多酚得率的影響

    圖5 顯示了乙醇濃度對多酚得率的影響。由圖5 可知,多酚得率隨著乙醇濃度的提高總體呈現(xiàn)先降后升再下降的趨勢。在乙醇濃度為60%時,多酚得率最高,為0.31%±0.02%??赡苡捎跇O性相似相溶,一定乙醇濃度范圍,醇水體系利于多酚成分溶出,乙醇濃度過高,醇解反應產生的醇溶性雜質的溶出量增加[14],并與多酚類化合物形成競爭,導致多酚得率下降。故選擇60%為最適乙醇提取濃度。

    2.3 仙人掌果多酚提取的正交試驗

    由表2 極差分析可知,各因素對多酚得率影響依次為D>A>B>C,乙醇濃度為最主要的影響因素;理論最佳工藝為A3B3C3D2。對比驗證理論最佳組合(A3B3C3D2)與表觀最優(yōu)組合(A3B1C3D2)如表3 所示,由表3 可知,多酚得率分別為0.37%±0.01%與0.40%±0.02%,A3B3C3D2高于A3B1C3D2。綜上考察,最佳提取工藝條件為提取溫度50 ℃,提取時間45 min,料液比1:50(g/mL),乙醇濃度60%。

    表2 仙人掌果多酚提取最佳工藝正交試驗Table 2 Orthogonal test of best extraction process of polyphenols from cactus fruit

    表3 驗證試驗結果Table 3 Results of verification experiment

    2.4 仙人掌果多酚提取物的抗氧化活性評價

    目前關于天然產物抗氧化活性評價有自由基清除、脂質過氧化、抗氧化酶活性、DNA氧化損傷等方法[15]。DPPH作為以氮為中心的穩(wěn)定自由基,由于結構簡單、反應過程易控制,已被廣泛應用于單一化合物及提取物的抗氧化活性評價與篩選[16]。在乙醇濃度60%,料液比1:50(g/mL),提取溫度50 ℃,提取時間45 min 的工藝條件下,提取制備仙人掌果總多酚,并進行DPPH 自由基清除率測定,結果如圖6 所示。

    由圖6 可知,仙人掌果多酚提取物對DPPH 自由基有較強的清除效果,且隨著濃度的增加而增大,清除率(%)與質量濃度(mg/mL)呈線性關系(y=27.587x+0.191 2,R2=0.998 9),IC50為1.81 mg/mL。

    3 結論

    本研究以乙醇為提取溶劑,采用單因素及正交試驗對仙人掌果多酚的提取工藝進行了優(yōu)化,結果發(fā)現(xiàn),各因素對仙人掌果多酚類物質提取得率影響的主次順序為乙醇濃度>提取溫度>提取時間>料液比;最佳提取條件為乙醇濃度60%,料液比1:50(g/mL),提取溫度50 ℃,提取時間45 min,在此條件下仙人掌果多酚得率為0.40%±0.02%,仙人掌果多酚提取物顯示出了較強的DPPH 自由基清除能力,IC50值為1.81 mg/mL。

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