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    外源p-香豆酸處理對采后桃果實苯丙烷代謝和抗氧化能力的影響

    2020-01-08 05:59:00李姚瑤曹毛毛王小璐蘇金龍
    食品科學(xué) 2019年23期
    關(guān)鍵詞:內(nèi)源酚類總酚

    李姚瑤,曹毛毛,王小璐,蘇金龍,高 慧

    (西北大學(xué)食品科學(xué)與工程學(xué)院,陜西 西安 710069)

    桃(Prunus persica L.)果實清脆爽口,細膩甘甜,富含氨基酸、維生素和酚酸等多種營養(yǎng)物質(zhì),是有益于人體健康的果中佳品[1]。然而,桃果實皮薄多汁,且成熟于炎熱潮濕的夏季,采后極易遭受機械損傷和微生物侵染,導(dǎo)致桃果實失水萎蔫、軟化腐爛,極大地降低了桃果實的食用品質(zhì)[2]。低溫貯藏是延緩果蔬衰老和保持果蔬品質(zhì)的有效手段。但桃屬典型的冷敏性果實,低溫貯藏過程中易受到低溫脅迫,并表現(xiàn)出果肉褐變、風(fēng)味喪失及無法正常后熟等冷害癥狀[1]。針對這一問題,研究人員進行了桃果實冷害發(fā)生和發(fā)展機理的相關(guān)研究,并通過采取物理(如紫外照射、氣調(diào)包裝等)、化學(xué)(如鈣處理、1-甲基環(huán)丙烯熏蒸)等采后處理措施增強桃果實的耐冷性[3]。

    p-香豆酸(p-coumaric acid,p-CA)是一種廣泛存在于果蔬中的肉桂酸衍生物,也是苯丙烷代謝途徑的核心物質(zhì)[4-5]。有研究表明,p-CA可以通過發(fā)生氧化交聯(lián)反應(yīng)參與木質(zhì)素合成,進而維持細胞膜脂系統(tǒng)的完整性[6];還可以通過提供質(zhì)子氫清除活性氧來抑制脂質(zhì)過氧化作用[7]。近年來,p-CA作為新型褐變抑制劑,已被用于采后園藝作物的貯藏保鮮[8]。Hu Yonghua等[9]發(fā)現(xiàn)10 μmol/L p-CA浸泡雙孢蘑菇(Agaricus bisporus),在延期緩褐變發(fā)生的同時,還能延長蘑菇的貨架期;這主要歸因于p-CA對蘑菇酪氨酸酶活力的抑制作用。但有關(guān)p-CA對冷敏果實耐冷性影響的相關(guān)報道較少。本研究從苯丙烷代謝和抗氧化能力兩方面研究了0.5 mmol/L p-CA對采后桃果實耐冷性影響,以期為冷敏果實采后低溫貯藏保鮮提供新的方法和理論依據(jù)。

    1 材料與方法

    1.1 材料與試劑

    試材為商業(yè)成熟度‘沙紅'桃果實,采摘于西安市城郊果園,并于采摘當(dāng)日運回實驗室。散去田間熱后,挑選大小均一、果皮色澤一致,且無可見缺陷的桃果實用于本次實驗。

    莽草酸、煙酰胺腺嘌呤二核苷酸基磷酸(nicotinamide adenine dinucleotide phosphate,NADP+)、p-CA、腺嘌呤核苷三磷酸(adenosine triphosphate,ATP)、輔酶A(coenzyme A,CoA)、反式肉桂酸 上海源葉生物科技有限公司;1,1-二苯基-2-三硝基苯肼(1,1-diphenyl-2-picrylhydrazyl,DPPH)、沒食子酸 美國Sigma公司;L-苯丙氨酸 美國Amresco公司;其余試劑為國產(chǎn)分析純。

    1.2 儀器與設(shè)備

    超低溫冷凍箱 中科美菱低溫科技股份有限公司;TCL-20Br高速冷凍離心機 上海安亭科學(xué)儀器廠;UPTC10L超純水機 優(yōu)普儀器有限公司;DIONEX UltiMate-3000高效液相色譜儀 美國Thermo Fisher公司;722G型可見分光光度計 上海儀器分析有限公司。

    1.3 方法

    1.3.1 材料處理

    將桃果實隨機分為3 組,分別用0(蒸餾水,對照)、0.5、1.0 mmol/L p-CA溶液常溫浸泡10 min,攤開晾干后,放入低密度聚乙烯保鮮袋中,于4 ℃、相對濕度85%~90%低溫庫中貯藏28 d。每隔7 d進行取樣,測定其冷害指數(shù)和丙二醛(malondialdehyde,MDA)含量,得到最優(yōu)濃度,并收集果肉組織于-80 ℃凍藏,測定最優(yōu)濃度組其他各項指標(biāo)。每組處理均設(shè)3 個重復(fù)。

    1.3.2 冷害指數(shù)的測定

    冷害指數(shù)的測定參照Wang Lijun等[10]的方法,并略作修改。將桃果實沿縫合線剖開,觀察果實切面的褐變面積,將其分為0~4級:0級,褐變面積=0;1級,褐變面積<25%;2級,25%≤褐變面積<50%;3級,50%≤褐變面積<75%;4級,褐變面積≥75%。冷害指數(shù)按式(1)進行計算。

    1.3.3 MDA含量的測定

    MDA含量的測定參照Dhindsa等[11]的方法。稱取2 g桃果肉,加入6 mL、體積分數(shù)10%三氯乙酸溶液(含質(zhì)量分數(shù)6%巴比妥酸)研磨后,加熱煮沸10 min,迅速冷卻、離心。在450、532、600 nm波長處測定上清液吸光度。結(jié)果以鮮質(zhì)量計,MDA含量表示為μmol/g。

    1.3.4 酚類物質(zhì)代謝相關(guān)酶活力測定

    對于苯丙氨酸脫氨酶(phenylalanine ammonia lyase,PAL)、莽草酸脫氫酶(shikimate dehydrogenase,SKDH)、肉桂酸-4-羥化酶(cinnamate-4-hydroxylase,C4H)、4-香豆酸輔酶A連接酶(4-coumarate: coenzyme A ligase,4CL)、多酚氧化酶(polyphenol oxidase,PPO)和過氧化氫酶(peroxidase,POD),參照Gao Hui等[12]的方法提取粗酶液并測定其活力。定義反應(yīng)體系在290 nm波長處每秒吸光度升高0.01為1 個PAL活力單位(U);反應(yīng)體系在340 nm波長處每秒吸光度升高0.01為1 個SKDH、C4H活力單位(U);反應(yīng)體系在333 nm波長處每秒吸光度升高0.01定義為1 個4CL活力單位(U);其中反應(yīng)體系在420 nm波長處每秒吸光度升高0.01定義為1 個PPO活力單位(U);反應(yīng)體系在470 nm波長處每秒吸光度升高0.01為1 個POD活力單位(U)。以上酶活力單位均為U/g,結(jié)果以鮮質(zhì)量計。

    1.3.5 內(nèi)源p-CA含量的測定

    內(nèi)源p-CA的提?。悍Q取6 g桃果肉,加入35 mL甲醇勻漿后,超聲30 min,離心,收集上清液,殘渣重復(fù)提取2 次。將合并上清液旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)濃縮至10 mL左右,以色譜純甲醇定容至25 mL,經(jīng)0.22 μm有機系濾膜過濾,收集濾液備用。

    測定條件:流動相:A為甲醇,D為體積分數(shù)0.1%甲酸;洗脫梯度:0~5 min,85%~78% D;5~10 min,78%~70% D;10~15 min,70%~64% D;15~16 min,64%~85% D;流速1 mL/min,柱溫30 ℃,波長308 nm,進樣量10 μL,時長16 min。檢測器:UltiMate-3000二極管陣列檢測器,色譜柱:ZORBAX SB-C18色譜柱(4.6 mm×150 mm,5 μm)。以外標(biāo)法測定內(nèi)源p-CA含量,單位為μg/g,結(jié)果以鮮質(zhì)量計。

    1.3.6 總酚含量的測定

    參照Hinneburg等[13]的方法測定。稱取2 g桃果肉于6 mL 80%甲醇勻漿,離心后,收集上清液作為總酚粗提液。取0.5 mL上清液,依次加入1 mL福林-酚試劑、3 mL 1 mmol/L Na2CO3溶液,混勻后,以蒸餾水定容至10 mL,避光反應(yīng)1 h,760 nm波長處測定吸光度。以沒食子酸作標(biāo)準(zhǔn)曲線,計算總酚含量。結(jié)果以鮮質(zhì)量計,總酚含量表示為mg/g。

    1.3.7 DPPH自由基、羥自由基、O2-·清除率測定

    以總酚粗提液進行測定。參照Odriozola-Serrano等[14]的方法測定DPPH自由基清除率。取0.2 mL上清液,加入2.8 mL 0.15 mmol/L DPPH甲醇溶液,避光反應(yīng)30 min。于517 nm波長處測定吸光度。

    參照Zhuang Hong等[15]的方法測定羥自由基清除率。取0.5 mL 9 mmol/L FeSO4溶液、0.5 mL 9 mmol/L水楊酸-乙醇溶液、0.5 mL上清液、5.4 mL蒸餾水和0.1 mL 8.8 mmol/L H2O2混合搖勻后,37 ℃水浴30 min。于510 nm波長處測定吸光度。

    參照陳旭丹等[16]的方法測定O2-·清除率。取2.7 mL 50 mmol/L Tris-HCl(pH 8.3)和0.2 mL上清液,25 ℃水浴20 min,加入0.1 mL 1.5 mmol/L連苯三酚。于320 nm波長處測定吸光度。

    DPPH自由基、羥自由基、O2-·清除率均按式(2)進行計算。

    式中:A0為以甲醇代替總酚粗提液吸光度;A1為含總酚粗提液樣品吸光度。

    1.4 數(shù)據(jù)處理與分析

    以上指標(biāo)測定均取3 個平行樣,重復(fù)測定3 次。采用SPSS 19.0軟件進行數(shù)據(jù)分析,采用單因素方差分析進行顯著性差異分析,P<0.05為差異顯著。采用Origin 8.5軟件繪圖。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 p-CA處理對桃果實冷害指數(shù)和MDA含量的影響

    表1 p-CA處理對桃果實冷害指數(shù)和MDA含量的影響Table 1 Effect of p-CA treatment on CI index and MDA content in peach fruit

    如表1所示,對照桃果實貯藏期間,其冷害指數(shù)隨貯藏時間的延長逐漸增加。與對照處理(0 mmol/L p-CA)相比,0.5 mmol/L p-CA處理可顯著抑制桃果實冷害的發(fā)生(P<0.05);而相較于0.5 mmol/L p-CA處理,1.0 mmol/L p-CA處理則促進了桃果實冷害指數(shù)的增加。貯藏第28天時,0.5 mmol/L p-CA處理桃果實的冷害指數(shù)較對照果實降低60.71%。MDA是細胞膜脂過氧化終產(chǎn)物,其含量可反映桃果實冷害發(fā)生的嚴(yán)重程度。對照桃果實MDA含量隨貯藏時間的延長亦呈緩慢上升趨勢變化,0.5 mmol/L p-CA處理顯著抑制了桃果實MDA含量的增加(P<0.05),而1.0 mmol/L p-CA處理則與0.5 mmol/Lp-CA處理相比,促進了桃果實MDA的累積。貯藏結(jié)束時,0.5 mmol/L p-CA處理桃果實的MDA含量較對照桃果實降低12.69%。因此,選定0.5 mmol/L p-CA用于后續(xù)實驗。

    2.2 p-CA處理對桃果實酚類物質(zhì)合成相關(guān)酶活力的影響

    圖1 p-CA處理對桃果實酚類物質(zhì)合成相關(guān)酶活力的影響Fig. 1 Effect of p-CA treatment on the activities of phenolic synthesis enzymes in peach fruit

    SKDH是催化莽草酸生成L-苯丙氨酸的關(guān)鍵酶。如圖1A所示,對照桃果實的SKDH活力在貯藏的前21 d逐漸降低,隨后上升。貯藏第21天時,對照桃果實的SKDH活力較采收當(dāng)天降低67.85%。p-CA處理顯著提高了桃果實的SKDH活力(P<0.05),貯藏末期時,p-CA處理桃果實的SKDH活力為對照桃果實的1.67 倍。

    PAL、C4H、4CL是苯丙烷代謝途徑的3 個關(guān)鍵酶。如圖1B所示,對照和p-CA處理桃果實的PAL活力變化趨勢相似,貯藏前14 d緩慢上升隨后逐漸下降,并于貯藏第14天達到峰值,其中p-CA處理桃果實的PAL活力為對照桃果實的1.20 倍。且整個貯藏期內(nèi),p-CA處理桃果實的PAL活力始終顯著高于對照桃果實(P<0.05)。

    如圖1C、D所示,p-CA處理顯著提高了桃果實的C4H和4CL活力(P<0.05)。p-CA處理桃果實的C4H和4CL活力在貯藏第21天均出現(xiàn)峰值,其活力分別為對照桃果實的1.45 倍和1.22 倍。整個貯藏期內(nèi),p-CA處理桃果實的C4H和4CL活力始終高于對照桃果實。

    2.3 p-CA處理對桃果實酚類物質(zhì)氧化相關(guān)酶活力的影響

    PPO和POD是苯丙烷代謝途徑末端的兩個氧化酶,可氧化果蔬中酚類化合物形成褐色物質(zhì)。如圖2A所示,整個貯藏期內(nèi),對照和p-CA處理桃果實的PPO活力呈下降、升高波動趨勢變化,并于貯藏第14天出現(xiàn)峰值,此時對照桃果實的PPO活力較p-CA處理桃果實高16.67%。如圖2B所示,對照桃果實的POD活力呈先升高再降低再升高趨勢變化。貯藏結(jié)束時,對照桃果實的POD活力是p-CA處理桃果實的1.26 倍。P-CA處理顯著抑制了桃果實的PPO和POD活力(P<0.05)。

    圖2 p-CA處理對桃果實酚類物質(zhì)氧化相關(guān)酶活力的影響Fig. 2 Effect of p-CA treatment on phenolic oxidase activity in peach fruit

    2.4 p-CA處理對桃果實中內(nèi)源p-CA和總酚含量的影響

    圖3 p-CA處理對桃果實中內(nèi)源p-CA(A)和總酚(B)含量的影響Fig. 3 Effect of p-CA treatment on endogenous p-CA (A) and total phenolic (B) contents of peach fruit

    p-CA是植物苯丙烷代謝途徑的核心物質(zhì)。如圖3A所示,對照桃果實的內(nèi)源p-CA含量呈先上升后下降趨勢變化。p-CA處理顯著增加了桃果實的內(nèi)源p-CA含量(P<0.05),貯藏第14天時,p-CA處理桃果實的內(nèi)源p-CA含量是果實貯藏第0天的14.47 倍。如圖3B所示,對照桃果實的總酚含量隨貯藏時間延長逐漸降低,貯藏結(jié)束時,對照桃果實的總酚含量比果實貯藏第0天低37.65%。p-CA處理顯著誘導(dǎo)了桃果實總酚含量的增加(P<0.05)。貯藏前14 d,p-CA處理桃果實總酚含量緩慢增加并于第14天達到峰值,此時總酚含量為對照桃果實的1.64 倍,隨后總酚含量逐漸下降直至貯藏結(jié)束。整個貯藏期內(nèi),p-CA處理桃果實的總酚含量始終高于對照桃果實。

    2.5 p-CA處理對桃果實DPPH自由基、羥自由基、清除率的影響

    如圖4所示,在貯藏的前14 d,對照桃果實的DPPH自由基、羥自由基、O2-·清除率逐漸下降,之后趨于穩(wěn)定;相關(guān)性分析顯示,對照桃果實中總酚含量與DPPH自由基、羥自由基清除率呈顯著正相關(guān)關(guān)系,其相關(guān)系數(shù)分別為0.989 5和0.991 7;對照果實中總酚含量和O2-·清除率呈一定正相關(guān)關(guān)系(r=0.592 9)。p-CA處理顯著提高了桃果實對3 種自由基的清除率(P<0.05),且p-CA處理桃果實中內(nèi)源p-CA含量與DPPH自由基、羥自由基和O2-·清除率呈顯著正相關(guān)關(guān)系,其相關(guān)系數(shù)r分別為0.913 5、0.968 3和0.878 6;p-CA處理桃果實中總酚含量與3 種自由基的清除率呈一定正相關(guān)關(guān)系。

    圖4 p-CA處理對桃果實DPPH自由基(A)、羥自由基(B)、(C)清除率的影響Fig. 4 Effect of p-CA treatment on scavenging capacity against DPPH (A),hydroxyl (B) and superoxide anion (C) radical in peach fruit

    3 討 論

    桃果實是典型的冷敏性果實,采后不適宜低溫貯藏且極易遭受低溫傷害,尤以2.2~7.6 ℃時更為嚴(yán)重,并表現(xiàn)出果肉褐變、失去果實原有風(fēng)味和更易遭受微生物侵襲等冷害癥狀,這嚴(yán)重影響了其市場價值[1]。本研究發(fā)現(xiàn),p-CA是一種廣泛存在于果蔬中的小分子酚酸,其外源處理可顯著抑制桃果實冷害指數(shù)的增加,大大提高了桃果實的耐冷性(表1)。與p-CA相似,小分子酚酸(如水楊酸)已被證實可有效緩解低溫脅迫對桃果實造成的損傷,延緩冷害的發(fā)生[17]。

    低溫脅迫下,果蔬組織的胞內(nèi)活性氧代謝失衡,這使得自由基大量累積。累積的自由基可引發(fā)和或加劇膜脂過氧化,進而造成細胞膜脂系統(tǒng)的損傷[18]。MDA含量的高低可衡量細胞膜脂過氧化程度。本研究中,p-CA處理能顯著抑制桃果實MDA含量的增加(表1)。這表明p-CA處理可有效提高桃果實對低溫誘導(dǎo)氧化脅迫的抵御能力,抑制膜脂過氧化導(dǎo)致的細胞膜損傷。這與草酸、水楊酸等外源處理桃果實的研究結(jié)果[19-20]一致。

    有研究表明,酚類物質(zhì)在植物抵御低溫脅迫過程中發(fā)揮著重要作用[21]。這基于酚類物質(zhì)可提供質(zhì)子氫清除活性氧,或通過分解過氧化物,減輕植物氧化損傷程度,維持細胞的正常結(jié)構(gòu)和功能[22]。苯丙烷代謝途徑是酚類物質(zhì)的生物合成途徑,SKDH、PAL、C4H和4CL是此途徑中主要的合成代謝相關(guān)酶[23-24]。其中,SKDH催化莽草酸生成L-苯丙氨酸[23],之后L-苯丙氨酸在苯丙烷代謝關(guān)鍵限速酶PAL的作用下被轉(zhuǎn)化為肉桂酸[25]。C4H則催化肉桂酸發(fā)生羥化反應(yīng)生成p-CA,4CL作用于此途徑的最后一步反應(yīng)[21]。SKDH、PAL、C4H和4CL活力的高低與果實中酚類物質(zhì)的含量直接相關(guān)[26]。經(jīng)外源水楊酸處理的葡萄果實,其PAL、C4H和4CL活力顯著升高,且水楊酸處理還誘導(dǎo)了PAL、C4H和4CL 3 種酶mRNA的累積[27],進而誘導(dǎo)了酚類物質(zhì)的合成。本研究中,p-CA處理激活了SKDH、PAL、C4H和4CL活力(圖1),且p-CA處理果實含有較高的總酚含量(圖3B)。因此,推測p-CA處理可能通過誘導(dǎo)酚類物質(zhì)合成酶相關(guān)基因的表達,促進總酚的累積。其中所涉及的具體機制將在后續(xù)的研究中進一步明確。PPO和POD可協(xié)同催化酚類物質(zhì)氧化形成醌,醌再進一步聚合成棕色聚合物,致使果蔬褐變。在桃果實上,較高的PPO和POD活力已被證實與冷害導(dǎo)致的果肉褐變直接相關(guān)。本研究中,在整個貯藏過程中,與對照果實相比,p-CA處理果實的PPO和POD活力被顯著抑制(圖2),這使得酚類底物的氧化消耗減少(圖3B),減輕了桃果實果肉褐變的冷害癥狀。本研究結(jié)果與Luo Zisheng等[28]的結(jié)果一致,該研究認為外源水楊酸處理通過調(diào)控PPO和POD活力顯著減輕李果實果肉褐變,延緩冷害的發(fā)生。p-CA與酪氨酸結(jié)構(gòu)相似,此二者可競爭PPO的活性位點[8],這可能是p-CA處理抑制桃果實PPO活力的機理。此外,p-CA處理還顯著增加了桃果實的內(nèi)源p-CA含量(圖3A),這與Yang Zhenfeng等[29]的研究結(jié)果一致,即基于滲入,外源水楊酸處理可顯著提高桃果實的內(nèi)源水楊酸含量。

    酚類物質(zhì)是果蔬組織內(nèi)一類重要的非酶抗氧化劑。盧娟芳等[30]認為,桃果實中酚類物質(zhì)含量的高低與其抗氧化活性直接相關(guān)。本研究中,p-CA處理果實含有較高的內(nèi)源p-CA和總酚含量,且內(nèi)源p-CA含量均與DPPH自由基、羥自由基、O2-·清除率呈顯著正相關(guān)。這表明p-CA處理可通過提高自由基清除能力,提高桃果實對低溫冷害的抵御能力。

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