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    1-磷酸鞘氨醇受體3調(diào)控RhoA/Rho激酶途徑影響糖尿病ED大鼠勃起功能的初步研究

    2019-10-16 09:40:20文博矯陽田馮海航李瑞周炳炎王濤饒可
    現(xiàn)代泌尿生殖腫瘤雜志 2019年4期
    關(guān)鍵詞:糖尿病檢測

    文博 矯陽田 馮海航 李瑞 周炳炎 王濤 饒可

    男性勃起功能障礙(erectile dysfunction, ED)是糖尿病患者常見的并發(fā)癥之一,具體表現(xiàn)為陰莖不能達到或者不能維持足夠的勃起硬度以完成滿意的性生活,約半數(shù)以上糖尿病患者最終會出現(xiàn)ED,發(fā)生率是普通人的3~4倍,其癥狀出現(xiàn)的時間較普通人早,程度也較其他類型ED患者嚴(yán)重,給糖尿病患者的生活帶來了極大的負(fù)擔(dān)[1-2]。

    1-磷酸鞘氨醇受體(sphingosine-1-phospate receptor, S1PR)分布于人體的各個系統(tǒng)組織中,對生物體許多生理功能起著重要的保護作用[3-4]。S1PR1~S1PR3 3種受體是目前主要的研究對象。在人類陰莖海綿體組織中已經(jīng)證實了S1PR1~S1PR3的存在[5],陰莖海綿體組織中S1PR與ED的關(guān)系也逐漸成為研究的熱點。目前研究發(fā)現(xiàn)S1PR1~S1PR3在雄激素缺乏、高血壓、海綿體神經(jīng)損傷等因素誘導(dǎo)的ED大鼠陰莖海綿體組織中的表達均不同于正常大鼠[6-8]。然而在Ⅰ型糖尿病誘導(dǎo)的大鼠ED模型中,S1PR3的表達情況及具體作用機制還未明確。本研究通過構(gòu)建Ⅰ型糖尿病ED大鼠模型,檢測S1PR3在糖尿病大鼠陰莖海綿體組織中表達水平的改變,探討S1PR3對Ⅰ型糖尿病誘導(dǎo)的ED大鼠勃起功能的作用機制。

    材料與方法

    一、實驗材料

    1.實驗動物:選取18只8周齡雄性大鼠,大鼠種類為Spragble-Dawley(SD),體質(zhì)量控制在190~210 g,均為無特異病原(specific-pathogen-free, SPF)級別,所有實驗動物均來自湖北省疾病預(yù)防控制中心,動物許可證號:SCXK(鄂)2015-0018。本研究所有動物實驗均按照國家實驗動物委員會操作規(guī)范認(rèn)真執(zhí)行,且在南方醫(yī)科大學(xué)附屬深圳寶安醫(yī)院實驗動物倫理委員會的監(jiān)督下完成。

    2.主要試劑及儀器:鏈脲佐菌素(streptozotocin, STZ)、檸檬酸、檸檬酸鈉(Sigma公司,美國),1% STZ工作液:0.1 g STZ溶解到10 ml 0.1 mmol/L檸檬酸-檸檬酸鈉緩沖液(pH=4.2),現(xiàn)配現(xiàn)用;SDS-PAGE凝膠快速配制試劑盒(上海碧云天生物有限公司);β-actin抗體、S1PR3抗體、PI3K抗體、AKT抗體、p-AKT抗體、羊抗兔和羊抗鼠二抗(Santa Cruz公司,美國);羅氏血糖儀及試紙(ACCU-CHEK);顯微鏡(江蘇蘇州六六視覺科技股份有限公司);Powerlab四通道生理記錄儀(AD Instruments 公司,澳大利亞)。

    二、實驗方法

    1.Ⅰ型糖尿病大鼠模型建立:18只8周齡SPF級雄性SD大鼠在無菌環(huán)境中適應(yīng)性飼養(yǎng)1周。隨后將大鼠隨機分為2組,6只正常對照組予以常規(guī)飼料喂養(yǎng);其余12只大鼠,禁食不禁水12 h后腹腔注射65 mg/kg STZ。給藥之后禁水不禁食3~4 h,隨后同正常對照組常規(guī)飼養(yǎng)。STZ給藥72 h之后,檢測大鼠靜脈血糖,選取血糖值≥16.7 mmol/L的大鼠并做標(biāo)記,作為糖尿病大鼠,必要時STZ給藥后7 d復(fù)測血糖,糖尿病大鼠表現(xiàn)為多飲、多食、多尿,體質(zhì)量增長緩慢,活動量減少,毛色晦暗,易發(fā)生感染,注意單籠飼養(yǎng),仔細(xì)養(yǎng)護,8周之后大鼠全部存活。

    2.體質(zhì)量及血清學(xué)檢測:18只大鼠SPF環(huán)境適應(yīng)性飼養(yǎng)1周后隨機分為2組,隨后禁食12 h,測量并記錄各大鼠體質(zhì)量,使用羅氏血糖儀采取斷尾取血法測量空腹血糖;STZ注射8周后,同樣方法再次測量并記錄2組大鼠體質(zhì)量及空腹血糖值。

    3.Max ICP/MAP測定:參照已報道的實驗方法[9]行頸總動脈插管,連接壓力換能器并由PowerLab/4SP 系統(tǒng)監(jiān)測平均動脈壓(mean arterial pressure, MAP),陰莖海綿體內(nèi)插入穿刺針并連接壓力換能器,監(jiān)測大鼠海綿體壓力(intracavernous pressure, ICP)。連接PowerLab工作臺,設(shè)置電刺激參數(shù)為頻率15 Hz、脈沖1.2 ms,分別給予2.5、5 V電壓刺激海綿體神經(jīng),每次1 min,間隔為3 min。記錄2組大鼠在2.5、5 V電壓下的ICP及MAP,結(jié)果以Max ICP/MAP表示。

    4.免疫組織化學(xué)染色方法檢測2組大鼠陰莖海綿體組織中S1PR3的表達:處理陰莖組織樣品(5 μm厚度)用于免疫組化??酒懊撓灪螅?%雙氧水中封閉內(nèi)源性過氧化物酶,漂洗后置于0.01 mol/L檸檬酸緩沖液(pH 6.0)中,微波修復(fù)抗原15 min,自然冷卻后沖洗,加入山羊血清封閉切片30 min。隨后孵育一抗:滴加S1PR3抗體(1∶100),4 ℃過夜。漂洗后滴加二抗工作液,放至37 ℃溫箱中孵育1 h。再次漂洗,滴加適量現(xiàn)配的DAB,室溫反應(yīng)10 min,蒸餾水沖洗,用蘇木素復(fù)染2~5 min,自來水沖洗。最后放置于梯度酒精中脫水,干燥后封片。顯微鏡下觀察切片并拍照。

    5.PCR方法檢測S1PR3在大鼠陰莖海綿體組織中的mRNA水平:根據(jù)已報道的實驗方法[9],提取組織總RNA,經(jīng)逆轉(zhuǎn)錄之后完成實時定量PCR檢測,測定組織中S1PR3 mRNA的表達水平。引物來源于上海生工生物工程有限公司,序列見表1。

    表1 引物序列

    6.Western blot測定S1PR3、RhoA、ROCK1及ROCK2在大鼠陰莖海綿體組織中的表達:切下大鼠陰莖海綿體,加入RIPA裂解物,超聲處理蛋白質(zhì),將上清液在4 ℃預(yù)冷卻離心機中離心。BCA法檢測提取蛋白的濃度。取50 μg總蛋白,置于沸水中10 min。制備10% SDS-聚丙烯酰胺凝膠以電泳蛋白,電泳后將蛋白質(zhì)轉(zhuǎn)移到PVDF膜上。轉(zhuǎn)膜結(jié)束后,將PVDF膜在5% BSA溶液中封閉2 h,然后置于相應(yīng)的抗體中并孵育過夜。一抗選用兔抗大鼠S1PR3(1∶1 000)、RhoA(1∶500)、ROCK1(1∶1 000)、ROCK2(1∶1 000)、β-actin (1∶1 000)抗體,二抗選用辣根過氧化物酶標(biāo)記的羊抗兔和羊抗鼠二抗(1∶5 000),采用ECL化學(xué)發(fā)光并采集圖像,Quantity One軟件分析圖像結(jié)果。

    三、統(tǒng)計學(xué)方法

    結(jié) 果

    一、2組大鼠體質(zhì)量、血糖比較

    STZ注射后,2組大鼠均飼養(yǎng)8周,均未見死亡情況。比較2組大鼠造模前后體質(zhì)量及血糖變化,結(jié)果顯示糖尿病組大鼠體質(zhì)量較正常對照組大鼠明顯減輕,血糖水平明顯高于正常對照組大鼠。見表2。

    表2 2組大鼠體質(zhì)量及血糖比較

    與正常對照組比較*P<0.05

    二、大鼠勃起功能檢測

    在15 Hz、1.2 ms條件下,予以2.5、5.0 V電刺激時,正常對照組大鼠Max ICP/MAP分別為0.78±0.13和0.81±0.11;糖尿病組大鼠則分別為0.28±0.15和0.30±0.11,糖尿病組大鼠勃起功能較正常對照組顯著降低(P<0.05)。見圖1。

    A:2.5、5 V電刺激陰莖海綿體神經(jīng),ICP和頸部MAP的壓力變化曲線;B:2種電壓刺激下的Max ICP/MAP比值統(tǒng)計圖圖1 2組大鼠勃起功能檢測(與正常對照組比較 *P<0.05)

    三、免疫組織化學(xué)染色、PCR、Western blot檢測2組大鼠陰莖海綿體組織中S1PR3的表達情況

    通過免疫組化染色檢測正常對照組和糖尿病組大鼠S1PR3水平。如圖2A所示,紅色剪頭指示的橙色區(qū)域為S1PR3陽性表達,與正常對照組相比,糖尿病組大鼠陰莖海綿體組織中S1PR3表達增加。通過PCR檢測發(fā)現(xiàn),與正常對照組相比,糖尿病組大鼠陰莖海綿體組織中S1PR3 mRNA表達明顯增加。見圖2B。Western blot結(jié)果顯示,糖尿病大鼠陰莖海綿體組織中的S1PR3蛋白表達水平明顯高于正常大鼠(P<0.05)。見圖2C。

    四、Western blot測定RhoA、ROCK1、ROCK2在大鼠陰莖海綿體組織中的表達

    Western blot結(jié)果顯示,糖尿病大鼠陰莖海綿體組織中的RhoA、ROCK1、ROCK2蛋白表達水平明顯高于正常大鼠(P<0.05)。見圖3。

    A:免疫組化檢測2組大鼠陰莖海綿體組織中S1PR3的表達(×200);B:S1PR3 mRNA在2組大鼠陰莖海綿體中的表達;C:Western blot 檢測2組大鼠S1PR3蛋白的表達圖2 正常對照組和糖尿病組大鼠陰莖海綿體S1PR3的表達(與正常對照組比較 *P<0.05)

    A:Western blot 檢測2組大鼠RhoA、ROCK1、ROCK2的表達;B:RhoA、ROCK1、ROCK2蛋白灰度值統(tǒng)計圖圖3 RhoA、ROCK1、ROCK2在2組大鼠陰莖海綿體中的表達(與正常對照組比較 *P<0.05)

    討 論

    1-磷酸鞘氨醇(sphingosine-1-phospate, S1P)是一種對機體具有重要調(diào)控作用的溶血卵磷脂類分子,分布極其廣泛,存在于各類血細(xì)胞內(nèi)和淋巴液、血液等細(xì)胞外液中,它可以在細(xì)胞中發(fā)揮信使分子的作用,也可以分泌到體液中結(jié)合各系統(tǒng)相應(yīng)受體,調(diào)節(jié)生理活動。S1PR是S1P的特異性受體,可分為S1PR1~S1PR5 5個亞型,均屬于G蛋白偶聯(lián)受體,可以與多種類型的G蛋白結(jié)合,激活下游相應(yīng)的信號通路,產(chǎn)生不同的生物學(xué)功能[10-11]。S1PR3在人胎盤、骨骼肌、心、腦、腎、血管內(nèi)皮和平滑肌細(xì)胞中均有表達。近年來研究發(fā)現(xiàn),S1PR3在血管舒張及收縮、血管屏障功能及缺血再灌注損傷等過程中具有重要的生物學(xué)作用[12]。S1PR3在血管內(nèi)皮能夠通過上調(diào)PI3K/Akt信號途徑的表達,提高eNOS磷酸化水平,同時使eNOS含量升高,增加內(nèi)皮細(xì)胞合成分泌NO,最終使血管擴張[13]。之后Theilmeier等[14]給予缺血/再灌注模型鼠注射S1P,也發(fā)現(xiàn)S1P/S1PR3可以通過NO依賴機制激活eNOS釋放NO,從而舒張血管。然而Salomone等[15-16]在對腦血管的研究后發(fā)現(xiàn),S1P/S1PR3會上調(diào)RhoA/Rho激酶信號通路,使血管收縮。這些研究表明,S1PR3對血管的調(diào)節(jié)作用具有雙向性,需要進一步的研究。

    在自發(fā)性高血壓誘導(dǎo)ED大鼠模型和去勢ED大鼠模型中,大鼠陰莖海綿體中的S1PR3的表達均明顯高于正常大鼠[6]。同時,RhoA、ROCK1和ROCK2的表達也顯著增加,這提示在上述2種ED大鼠模型中,陰莖海綿體組織中S1PR3的含量增加可能會促使RhoA/Rho激酶信號通路表達增高,從而增加海綿體平滑肌收縮因素,損傷大鼠勃起功能[6,17]。在本研究中,糖尿病ED大鼠陰莖海綿體組織中S1PR3的表達明顯高于正常大鼠,RhoA、ROCK1、ROCK2的表達也高于正常大鼠。根據(jù)以上結(jié)果,我們推測在Ⅰ型糖尿病大鼠體內(nèi),陰莖海綿體組織中S1PR3 表達增加,激活下游的RhoA/Rho激酶信號通路,導(dǎo)致陰莖海綿體平滑肌收縮增強,最終影響勃起功能。

    綜上所述,S1PR3在Ⅰ糖尿病引起的ED中起著重要作用,S1PR3表達升高可能通過RhoA/Rho激酶通路增強陰莖海綿體收縮,誘導(dǎo)ED發(fā)生。

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