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      高壓靜電場預(yù)處理對花生芽活性物質(zhì)及抗氧化能力的影響

      2019-09-18 09:12:54鄭雅瑩江正強(qiáng)劉海杰
      食品科學(xué) 2019年17期
      關(guān)鍵詞:白藜蘆醇總酚籽粒

      張 茜,鄭雅瑩,李 妍,江正強(qiáng),劉海杰,*

      (1.北京食品營養(yǎng)與人類健康高精尖創(chuàng)新中心,中國農(nóng)業(yè)大學(xué)食品科學(xué)與營養(yǎng)工程學(xué)院,北京 100083;2.北京農(nóng)學(xué)院食品科學(xué)與工程學(xué)院,北京 102200)

      花生(Arachis hypogaeaL.)又名落花生,屬雙子葉豆科作物,其不僅是中國重要的經(jīng)濟(jì)作物,還是含優(yōu)良高蛋白的油料作物[1]?;ㄉ蚜:胸S富的營養(yǎng)物質(zhì),研究報(bào)道其營養(yǎng)價(jià)值能夠媲美肉、蛋及奶類食物,其與大豆一樣是農(nóng)產(chǎn)品中優(yōu)質(zhì)的高價(jià)值油料作物[2]?;ㄉ蚜2粌H包含豐富的脂肪﹑蛋白質(zhì)﹑維生素(VE)﹑礦物質(zhì)等常見營養(yǎng)素,還含有如酚類(白藜蘆醇)、黃酮類及植物固醇(β-谷甾醇)等活性成分,其中白藜蘆醇被稱作“100 種熱門抗衰老物質(zhì)”之一,花生也被營養(yǎng)學(xué)家評為A+級作物[3]。

      高壓靜電場(high-voltage electrostatic field,HVEF)技術(shù)是目前一種重要的種子處理方法。HVEF處理能夠?qū)χ参铮ㄈ缃?jīng)濟(jì)作物、水果、蔬菜等)種子內(nèi)部水分子、酶等物質(zhì)產(chǎn)生刺激作用[4],適宜的HVEF處理有利于種子體內(nèi)ATP的合成和酶的活化,從而優(yōu)化種子原有性質(zhì),促進(jìn)其抗逆性,以達(dá)到種子發(fā)芽生長所需的良好條件。近些年的研究結(jié)果表明,靜電場處理對水稻、黃瓜和番茄等農(nóng)作物的萌發(fā)生長均有顯著影響[5-6]。Huang Rukui等[7]用電場處理黃瓜種子進(jìn)行發(fā)芽和膜通透性實(shí)驗(yàn),結(jié)果表明電場處理組黃瓜種子的發(fā)芽率得到顯著提高。

      發(fā)芽目前被認(rèn)為是應(yīng)用廣泛的能夠提高種子營養(yǎng)成分生物利用率的成熟手段[8]。當(dāng)休眠種子浸泡吸水之后,各種生理代謝隨水合作用的進(jìn)行不斷增強(qiáng)[9],種子發(fā)芽過程中貯藏物質(zhì)降解,小分子活性物質(zhì)合成或含量增加,抗?fàn)I養(yǎng)因子(如單寧等)減少,通常表現(xiàn)為含水量升高、呼吸作用增強(qiáng)、根芽生長迅速、干物質(zhì)不斷消耗等[10]。這種由豆類、蔬菜等種子或其他營養(yǎng)貯藏器官萌發(fā)生長的嫩芽及芽苗即為芽苗類蔬菜,因其具有生產(chǎn)工藝簡便、口感獨(dú)特及營養(yǎng)豐富等特點(diǎn)深受消費(fèi)者青睞[11]。Lin Bosi等[12]對萌芽花生的毒理學(xué)進(jìn)行評價(jià),大鼠喂養(yǎng)萌芽花生18 周后,基本上未在其體內(nèi)檢測到有害物質(zhì),且發(fā)現(xiàn)大鼠攝取適量花生芽后血清中甘油三酯含量減少?;ㄉ坎耸墙瓿霈F(xiàn)的一種新型芽菜品種,目前對于花生發(fā)芽及其活性成分變化等方面缺少系統(tǒng)的研究。本實(shí)驗(yàn)以花生籽粒為原料,研究了HVEF對于花生發(fā)芽過程中活性成分及抗氧化活性的影響規(guī)律,旨在尋找提高花生芽活性物質(zhì)含量、增強(qiáng)其抗氧化能力的適宜的HVEF預(yù)處理?xiàng)l件,為花生芽產(chǎn)品的深度開發(fā)和利用提供參考依據(jù)。

      1 材料與方法

      1.1 材料與試劑

      花生籽粒(‘小白沙’,手工剝殼)購自山東省花生研究所。

      白藜蘆醇、福林-酚試劑、蘆丁、水溶性V E(Trolox)、1,1-二苯基-2-三硝基苯肼(1,1-diphenyl-2-picrylhydrazyl,DPPH) 美國Sigma公司;2,4,6-三吡啶基三嗪 南京都萊生物技術(shù)有限公司;2,2’-聯(lián)氮雙(3-乙基苯并噻唑啉-6-磺酸)二銨鹽(2,2’-azino-bis(3-ethylbenzothiazoline-6-sulfonic acid) diammonium salt,ABTS) 日本東京化成工業(yè)株式會(huì)社。

      1.2 儀器與設(shè)備

      100H恒溫恒濕培養(yǎng)箱 科發(fā)豆芽機(jī)械設(shè)備有限公司;HVEF裝置由中國農(nóng)業(yè)大學(xué)中日食品研究中心實(shí)驗(yàn)室自行研制;UV-1600紫外-可見分光光度計(jì) 日本島津公司;6460液相色譜-質(zhì)譜聯(lián)用儀 美國安捷倫公司;LGJ-18真空冷凍干燥機(jī) 北京四環(huán)科學(xué)儀器廠。

      1.3 方法

      1.3.1 HVEF預(yù)處理

      HVEF裝置示意圖如圖1所示。

      圖1 HVEF實(shí)驗(yàn)裝置示意圖Fig. 1 Schematic diagram of the high-voltage electrostatic field

      為研究不同電場強(qiáng)度HVEF對花生芽活性成分及抗氧化能力的影響,分別控制電場強(qiáng)度為250、300、400、450 kV/m,處理30 min后備用。以未經(jīng)HVEF處理組作為對照。不同電場強(qiáng)度通過控制HVEF的電壓和極板間距調(diào)節(jié)。

      1.3.2 花生芽生產(chǎn)

      挑選飽滿、整齊一致的210 ?;ㄉ蚜?,單層平鋪在金屬板上進(jìn)行HVEF處理,用28 ℃、4 倍籽粒體積的自來水浸泡6 h;蒸餾水沖洗3 次,瀝干水分;將其整齊均勻地鋪在濕潤紗布上,于26 ℃催芽24 h。將花生芽尖倒置插入珍珠巖中,每箱均勻播種60 粒左右;放入溫度28 ℃、相對濕度80%恒溫恒濕培養(yǎng)箱中黑暗培養(yǎng),對照組(CK)花生芽生產(chǎn)方法同上,不使用HVEF處理。發(fā)芽1、3、5、7 d后分別采收,鮮樣用于測定胚軸長度,用于其他指標(biāo)測定的花生芽樣品作冷凍干燥處理,粉碎過40 目篩,得到花生芽粉末。

      1.3.3 花生芽胚軸長度的測定

      花生發(fā)芽過程中用尺子測量花生芽的胚軸長度,每個(gè)處理組30 根花生芽。

      1.3.4 花生芽總酚含量的測定

      樣品醇提物制備:精確稱取花生芽粉末0.2 g于50 mL離心管中,加入10 mL體積分?jǐn)?shù)80%乙醇溶液,于超聲波清洗器中60 ℃提取30 min,6 000 r/min離心10 min,取上清液備用。

      總酚含量測定[13]:根據(jù)福林-酚比色法稍作修改,取500 μL上清液,加入福林-酚顯色劑1 mL,混勻,然后加入質(zhì)量分?jǐn)?shù)7.5%碳酸鈉溶液1 mL,用蒸餾水定容至10 mL,混合均勻,在室溫、避光條件下放置2 h,用紫外-可見分光光度計(jì)測定765 nm波長處的吸光度。以試劑空白為參比。以沒食子酸為標(biāo)準(zhǔn)品繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線,總酚含量以沒食子酸質(zhì)量計(jì)。

      1.3.5 花生芽總黃酮含量的測定

      總黃酮含量測定[14]:根據(jù)硝酸鋁-亞硝酸鈉光度法測定并稍作修改。取500 μL 1.3.4節(jié)得到的上清液,加入質(zhì)量分?jǐn)?shù)5%亞硝酸鈉溶液0.5 mL,混勻,靜置6 min;加入質(zhì)量分?jǐn)?shù)10%硝酸鋁溶液0.5 mL,混勻,靜置6 min。再加入1 mol/L氫氧化鈉溶液4 mL,用乙醇定容至10 mL,放置15 min,于510 nm波長處測定吸光度。以試劑空白為參比。以蘆丁為標(biāo)準(zhǔn)品繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線,總黃酮含量以蘆丁質(zhì)量計(jì)。

      1.3.6 花生芽白藜蘆醇含量的測定

      樣品的提取[15]:精確稱取花生芽粉末1 g于50 mL離心管中,加入10 mL體積分?jǐn)?shù)80%乙醇溶液,于超聲波清洗器中60 ℃提取30 min,6 000 r/min離心10 min,取上清液,重復(fù)提取2 次,合并上清液并定容至25 mL,過0.45 μm微孔濾膜,得到預(yù)處理樣品。

      高效液相色譜-質(zhì)譜測定條件:Poroshell 120 EC-C18色譜柱(100 mm×3.0 mm,2.7 μm);流動(dòng)相:體積分?jǐn)?shù)0.1%甲酸-乙腈(60∶40,V/V);柱溫:30 ℃;流速:0.3 mL/min;進(jìn)樣量為3 μL。對樣品進(jìn)行分離后,再經(jīng)質(zhì)譜檢測,質(zhì)譜條件為:正離子掃描,選擇離子[M+H]+m/z 229檢測。

      1.3.7 花生芽抗氧化活性的測定

      1.3.7.1 亞鐵還原能力的測定

      亞鐵還原能力(ferric reducing antioxidant power,F(xiàn)RAP)工作液的制備:取0.3 mol/L醋酸鈉緩沖液(pH 3.6)50 mL,加入20 mmol/L FeCl3溶液5 mL混勻,再加入5 mL 2,4,6-三吡啶基三嗪溶液(10 mmol/L)混勻,于37 ℃水浴鍋中預(yù)熱備用。

      取100 μL 1.3.4節(jié)得到的上清液,加入300 μL蒸餾水,加入預(yù)熱至37 ℃的FRAP工作液3 mL(現(xiàn)用現(xiàn)配),混勻后于暗處反應(yīng)0.5 h,于593 nm波長處測其吸光度,以蒸餾水作為空白對照[16]。以Trolox作標(biāo)準(zhǔn)曲線,F(xiàn)RAP以每克花生芽相當(dāng)于Trolox物質(zhì)的量表示。

      1.3.7.2 DPPH自由基清除能力的測定

      離心管中加入200 μL 1.3.4節(jié)得到的上清液及1.0×10-4mol/L DPPH-乙醇溶液4.8 mL,混勻后于暗處反應(yīng)0.5 h,于517 nm波長處測定吸光度Ai;加入200 μL花生芽提取稀釋液和4.8 mL乙醇,測定吸光度Aj;加入200 μL乙醇和4.8 mL 1.0×10-4mol/L DPPH-乙醇溶液,測定吸光度A0

      [17]。DPPH自由基清除率按式(1)計(jì)算。以Trolox作標(biāo)準(zhǔn)曲線,DPPH自由基清除能力以每克花生芽相當(dāng)于Trolox物質(zhì)的量來表示。

      1.3.7.3 ABTS陽離子自由基清除能力的測定

      ABTS混合液制備:2.45 mmol/L過硫酸鉀溶液與7 mmol/L ABTS溶液混勻,在室溫暗處放置12 h,即得ABTS工作液。將工作液與乙醇按照體積比約1∶45混合,于734 nm波長處調(diào)節(jié)其吸光度至0.700,即得ABTS混合液,于30 ℃水浴鍋中預(yù)熱備用。

      取200 μL 1.3.4節(jié)得到的上清液,加入9.8 mL ABTS混合液(現(xiàn)用現(xiàn)配),在室溫下于暗處反應(yīng)0.5 h,于734 nm波長處測其吸光度,以乙醇作為空白對照[18]。以Trolox作標(biāo)準(zhǔn)曲線,ABTS陽離子自由基清除能力以每克花生芽相當(dāng)于Trolox物質(zhì)的量表示。

      1.3.8 花生籽粒電解質(zhì)外滲率的測定

      活花生籽粒外液電導(dǎo)率的測定[6]:供試的花生籽粒經(jīng)HVEF處理后,各組取20 粒,用蒸餾水洗凈,再用濾紙吸干水分。將花生籽粒置于250 mL燒杯中,加入100 mL蒸餾水,24 h后搖晃燒杯,使溶液混勻并過濾,測電導(dǎo)率a。

      死花生籽粒外液電導(dǎo)率的測定:各組取籽粒20 粒,用蒸餾水洗凈,再用濾紙吸干水分。將花生籽粒置于250 mL燒杯中,加入100 mL蒸餾水,煮沸20 min,冷卻后加蒸餾水至原刻度,以補(bǔ)充蒸發(fā)掉的水分,搖晃燒杯使溶液混勻并過濾,測電導(dǎo)率b。電解質(zhì)外滲率按式(2)計(jì)算。

      1.4 數(shù)據(jù)統(tǒng)計(jì)與分析

      實(shí)驗(yàn)獨(dú)立重復(fù)3 次,結(jié)果以平均值±標(biāo)準(zhǔn)差表示。采用SPSS軟件分析數(shù)據(jù)顯著性(Duncan’s檢驗(yàn)),P<0.05表示差異顯著。使用Origin軟件作圖。

      2 結(jié)果與分析

      2.1 HVEF預(yù)處理對花生芽胚軸長度及外觀形態(tài)的影響

      由表1可以看出,花生芽在生長過程中,隨著發(fā)芽時(shí)間的延長胚軸長度逐漸增加;前3 d胚軸生長較為緩慢,從第3天起生長迅速,胚軸長度呈明顯增長趨勢。不同電場強(qiáng)度對花生芽的生長影響不同,發(fā)芽至第7天時(shí),電場強(qiáng)度為250、300 kV/m的處理組胚軸長度略高于對照組,但差異不顯著;400 kV/m HVEF處理對花生芽生長的促進(jìn)作用最大,第7天時(shí)胚軸長10.19 cm,顯著高于對照組(9.14 cm),提升11.49%。當(dāng)電場強(qiáng)度達(dá)到450 kV/m時(shí),胚軸長度較對照組有所下降,原因可能是HVEF處理具有臨界效應(yīng),當(dāng)電場強(qiáng)度超過其閾值范圍則會(huì)對生長產(chǎn)生不利影響[19]。

      表1 花生發(fā)芽過程中胚軸長度的變化Table 1 Changes in hypocotyl length of peanut sprouts during germination

      圖2 發(fā)芽7 d的花生芽形態(tài)Fig. 2 Morphology of peanut sprouts after germination for 7 days

      不同電場強(qiáng)度HVEF預(yù)處理花生籽粒發(fā)芽7 d后花生芽表觀形態(tài)如圖2所示,結(jié)合表1結(jié)果可知,在本實(shí)驗(yàn)條件下400 kV/m HVEF處理最適宜花生芽生長。

      2.2 HVEF預(yù)處理后花生芽總酚含量的變化規(guī)律

      經(jīng)測定,‘小白沙’花生籽粒總酚含量為(149.70±4.59)mg/100 g(圖中未顯示)。結(jié)合圖3可知,花生經(jīng)發(fā)芽后,總酚含量呈現(xiàn)不斷增加趨勢,在第7天時(shí)達(dá)到最大值。徐世杰等[20]對花生發(fā)芽期間總酚及黃酮含量變化進(jìn)行研究,結(jié)果發(fā)現(xiàn)在發(fā)芽過程中總酚含量呈逐漸上升趨勢,未發(fā)芽籽粒中總酚含量僅為1.53 mg/g,而經(jīng)過發(fā)芽5 d后其總酚含量可達(dá)2.73 mg/g,約為原籽粒的1.8 倍。該結(jié)果與本研究結(jié)果一致,進(jìn)一步說明發(fā)芽可以提高花生中總酚含量。目前學(xué)者認(rèn)為種子中植物多酚含量經(jīng)發(fā)芽后顯著提高的原因可能是木質(zhì)素會(huì)與酚酸交聯(lián)參與細(xì)胞壁構(gòu)成,因此種子發(fā)芽及生長過程中會(huì)產(chǎn)生更多的酚酸,從而支撐細(xì)胞壁的形成[21]。

      圖3 花生發(fā)芽過程中總酚含量的變化Fig. 3 Changes in total phenol conten in peanut sprouts during germination

      花生芽生長過程中,HVEF預(yù)處理組總酚含量普遍高于對照組,其中400 kV/m處理組總酚含量較高,第7天可達(dá)297.67 mg/100 g,較對照組提升了22.09%。根據(jù)文獻(xiàn)[22]推測,HVEF處理花生籽粒后會(huì)引起機(jī)體組織細(xì)胞的氧化傷害,因此植物體需通過自身應(yīng)激機(jī)制產(chǎn)生更多的抗氧化物質(zhì)(如酚類)以抵御環(huán)境中活性氧對機(jī)體的損傷,因而適宜電場強(qiáng)度的HVEF預(yù)處理能夠促進(jìn)植物體酚類物質(zhì)的積累。

      2.3 HVEF預(yù)處理后花生芽總黃酮含量的變化

      圖4 花生發(fā)芽過程中總黃酮含量的變化Fig. 4 Changes in total flavonoid content in peanut sprouts during germination

      經(jīng)測定,‘小白沙’花生籽粒總黃酮含量為(326.00±8.40)mg/100 g(圖中未顯示)。結(jié)合圖4可知,花生芽總黃酮含量隨著發(fā)芽時(shí)間的延長呈現(xiàn)先升高后降低的趨勢,并且在第5天時(shí)達(dá)到最大值。有學(xué)者研究發(fā)現(xiàn)花生籽粒發(fā)芽4 d后黃酮含量明顯上升,約為未發(fā)芽籽粒的2 倍[20],與本研究結(jié)果一致,說明花生經(jīng)過發(fā)芽能明顯提高其總黃酮含量。

      花生發(fā)芽過程中,HVEF處理組總黃酮含量普遍高于對照組。花生芽生長第5天時(shí),300 kV/m處理后總黃酮含量最高,達(dá)到707.48 mg/100 g,較對照組增加了19.91%。說明電場輔助發(fā)芽能夠提高花生芽中總黃酮含量,推測其原因可能是植物體在受到外界環(huán)境刺激后容易產(chǎn)生更多的多酚和黃酮等抗氧化劑,以清除過多的活性氧物質(zhì),這些抗氧化劑既能夠直接還原活性氧,又能作為酶的底物發(fā)揮作用[22]。

      2.4 HVEF預(yù)處理后花生芽白藜蘆醇含量的變化

      圖5 培育7 d后花生芽的白藜蘆醇含量Fig. 5 Resveratrol content in peanut sprouts after germination for 7 days

      經(jīng)測定,‘小白沙’花生籽粒中未檢測到白藜蘆醇,發(fā)芽7 d后其白藜蘆醇含量增加至(3.82±0.06)μg/g,說明花生經(jīng)過發(fā)芽,一定程度上提高了白藜蘆醇含量,這與Yu Miao等[23]的研究結(jié)果一致。此外,由圖5可以看出,隨著電場強(qiáng)度的不斷增加,花生芽中白藜蘆醇含量呈現(xiàn)先增加后降低的趨勢。與對照組相比,400、450 kV/m處理組的花生芽中白藜蘆醇含量顯著高于對照組,相比對照組分別提升了32.46%和20.94%;電場強(qiáng)度為400 kV/m的HVEF處理對花生芽中白藜蘆醇含量的提升作用最明顯。Tang Ke等[24]研究了紫外輻射對花生幼苗中白藜蘆醇含量及抗氧化酶活性的影響,發(fā)現(xiàn)植物會(huì)產(chǎn)生一種機(jī)制來降低和修復(fù)脅迫損傷,脅迫產(chǎn)生的自由基會(huì)激活抗氧化防御系統(tǒng)。白藜蘆醇為一種植物抗毒素,受到紫外輻射后,內(nèi)源性白藜蘆醇以及芪合成酶含量迅速增加,植物中丙二醛含量及芽苗葉片表觀形態(tài)的變化呈現(xiàn)相似性。丙二醛含量是植物細(xì)胞膜過氧化程度的體現(xiàn),植物體內(nèi)丙二醛含量越高說明植株細(xì)胞膜受到的損傷越嚴(yán)重。Tang Ke等[24]測定了紫外輻射實(shí)驗(yàn)組過氧化氫、超氧陰離子自由基清除率及抗氧化酶活性的變化,發(fā)現(xiàn)其變化趨勢與白藜蘆醇處理組顯示出相似性。因此,推測HVEF預(yù)處理后花生發(fā)芽可能對植物造成氧化脅迫,故需通過自身應(yīng)激機(jī)制產(chǎn)生更多的植物抗氧化物質(zhì)以抵御環(huán)境中活性氧對機(jī)體的損傷,從而導(dǎo)致花生芽中白藜蘆醇的積累。

      2.5 HVEF預(yù)處理對花生芽抗氧化活性的影響

      表2 培育7 d后花生芽的抗氧化能力Table 2 Antioxidant activity of peanut sprouts after germination for 7 days

      實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明,隨著發(fā)芽時(shí)間的延長,花生芽抗氧化能力不斷增加(未在表中顯示),于第7天達(dá)到最高值,可見花生經(jīng)過萌發(fā)生長可明顯增強(qiáng)花生芽的抗氧化活性。如表2所示,生長至第7天時(shí),250、300、400 kV/m處理組花生芽FRAP顯著高于對照組,分別為304.65、335.08、343.70 μmol/L,分別較對照組提升11.61%、22.76%和25.93%;300、400、450 kV/m處理組花生芽的DPPH自由基清除能力顯著高于對照組,分別較對照組提升了30.37%、29.90%和11.85%,其中300 kV/m處理組效果較佳;300 kV/m處理組ABTS陽離子自由基清除能力(804.72 μmol/L)顯著高于對照組,相比對照組提升了11.53%。

      Kang等[25]對萌芽花生乙醇提取物DPPH自由基和ABTS陽離子自由基清除能力進(jìn)行測定,發(fā)現(xiàn)萌芽9 d后的花生芽具有較高的抗氧化活性,并且其子葉強(qiáng)于根莖。Limmongkon等[26]對西班牙5 種不同品種花生芽總酚含量及其抗氧化活性進(jìn)行測定,發(fā)現(xiàn)對于不同花生品種,總酚含量及抗氧化活性隨發(fā)芽時(shí)間的延長變化規(guī)律有所差別,對于‘Tainan9’花生,其總酚含量及抗氧化活性(DPPH自由基清除能力和FRAP)隨發(fā)芽時(shí)間的延長而增強(qiáng),說明花生經(jīng)發(fā)芽后可顯著提高總酚含量及其抗氧化活性。參考文獻(xiàn)[27-28],推測發(fā)芽期間抗氧化活性主要源于芽培期間花生中還原性物質(zhì)的產(chǎn)生,如黃酮類、多酚類以及含巰基和酚羥基的氨基酸等物質(zhì)。

      2.6 HVEF預(yù)處理對花生籽粒電解質(zhì)外滲率的影響

      電解質(zhì)外滲率是考察籽粒種皮細(xì)胞膜完整程度的重要指標(biāo)之一,籽粒的活力與其電解質(zhì)外滲率呈負(fù)相關(guān)。植物組織處于逆境損傷時(shí),因其細(xì)胞膜結(jié)構(gòu)遭到破壞或功能受損,使其透性增大,細(xì)胞內(nèi)電解質(zhì)會(huì)有一定程度的滲出,其浸泡液的電導(dǎo)率也會(huì)升高。因此,組織外滲液電導(dǎo)率的改變能夠在一定程度上反映細(xì)胞膜完整程度。如圖6所示,HVEF處理組花生籽粒的電解質(zhì)外滲率比對照組降低了13.34%~15.59%,表明經(jīng)HVEF處理后的花生籽粒細(xì)胞膜完整性較好,具有較高的生理活性。Wang Guixue等[6]研究了HVEF對老化水稻籽?;钚缘挠绊?,發(fā)現(xiàn)不同電場強(qiáng)度處理組相較對照組水稻籽粒電解質(zhì)外滲率均有不同程度下降,說明HVEF處理能夠維持籽粒細(xì)胞膜的完整性。

      圖6 HVEF處理對花生籽粒電解質(zhì)外滲率的影響Fig. 6 Effect of HVEF treatment on leakage percentage of electrolytes from peanut seeds

      3 結(jié) 論

      本研究發(fā)現(xiàn),花生籽粒經(jīng)適宜電場強(qiáng)度的HVEF預(yù)處理后發(fā)芽,其體內(nèi)活性成分及抗氧化活性有所提升,花生芽總酚、總黃酮、白藜蘆醇含量相比對照組均顯著增加,其中300、400 kV/m的HVEF處理對花生芽體內(nèi)抗氧化成分含量的提升較顯著,300 kV/m處理組發(fā)芽第5天時(shí)總黃酮含量較對照組提升了19.91%;400 kV/m處理組發(fā)芽第7天時(shí)總酚和白藜蘆醇含量較對照組分別提升了22.09%和32.46%。經(jīng)HVEF處理花生芽的FRAP及對DPPH自由基、ABTS陽離子自由基的清除能力均有不同程度提升,300、400 kV/m處理組花生芽提取物的抗氧化能力較強(qiáng)。由此可見,經(jīng)適宜外源電場誘導(dǎo)能夠提高花生芽的營養(yǎng)價(jià)值和保健功能,對功能性花生產(chǎn)品的開發(fā)具有一定意義。

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