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    微生物基因組重排技術(shù)研究進(jìn)展

    2019-09-10 07:22:44仝倩倩李亞亮王順昌顏守保
    關(guān)鍵詞:育種

    仝倩倩 李亞亮 王順昌 顏守保

    摘 要:基因組重排技術(shù)是21世紀(jì)初發(fā)展起來的基于全基因組的定向微生物菌種改良技術(shù).本文介紹了基因組重排技術(shù)的原理,并重點(diǎn)概述了基因組重排的具體過程,最后對基因組重排技術(shù)的發(fā)展進(jìn)行了展望.

    關(guān)鍵詞:基因組重排;遞推;原生質(zhì)體融合;育種

    中圖分類號:Q789? 文獻(xiàn)標(biāo)識碼:A? 文章編號:1673-260X(2019)10-0018-02

    基因組重排技術(shù)(genome shuffling)是一種基于整個微生物基因組重排的定向菌種改良技術(shù),2002年,Zhang首先提出基因組重排這一概念:它無須提前知道菌株的代謝途徑及基因表達(dá)調(diào)控機(jī)制等遺傳背景,直接對微生物進(jìn)行全基因組重排[1],現(xiàn)在已被視為一種有效的微生物育種方法.

    1 基因組重排原理

    基因組重排是在傳統(tǒng)誘變育種獲得突變株后,通過遞推式原生質(zhì)體融合技術(shù),對突變株的原生質(zhì)體進(jìn)行基因組重排,將正突變的基因集中在一起,從而大大提升菌株的正向突變的頻率及突變的速率.基因組重排技術(shù)一般被用于改良甚至改造微生物的基因,從而獲得性狀更加優(yōu)良的表型.基因組重排技術(shù)與經(jīng)典的雜交育種技術(shù)不同之處在于,后者在每次重排時(shí)只有兩個親本,然而基因組重排技術(shù)卻是兩個以上的多親本雜交,并且通過反復(fù)的遞推式雜交,從而產(chǎn)生很多表型改良顯著的新突變株[1-3].

    2 基因組重排具體方法

    基因組重排技術(shù)通過模擬自然進(jìn)化過程,將突變菌庫中的帶有不同遺傳性狀的正變菌株基因進(jìn)行多親本融合,在全基因組范圍內(nèi)隨機(jī)交換基因,通過篩選,剔除基因組中的不利的變異基因,在遞推式融合中,將突變菌株庫中的有利基因逐漸積累,從而完成跳躍性人工進(jìn)化.基因組重排育種技術(shù)主要分五步:

    2.1 突變菌株庫的建立

    基因組重排育種技術(shù)首先會構(gòu)建一個包含不同遺傳特性的突變菌株庫,其中的親本擁有多種多樣的基因,在后續(xù)的遞推式原生質(zhì)體融合時(shí),不同的優(yōu)良性狀可以進(jìn)行剪接,然后統(tǒng)一集中到融合體中.通常,突變菌株庫可借助自然分離、誘變育種等常見技術(shù)建立,從而獲得更多帶有多樣性基因的親本.

    2.2 親本的篩選

    當(dāng)利用誘變育種技術(shù)進(jìn)行微生物菌種選育時(shí),“選”與“育”要結(jié)合起來,提高誘變效率.首先進(jìn)行“育”:通過各種誘變手段(如物理誘變、化學(xué)誘變等),使菌株產(chǎn)生基因型突變,但該突變是不定向的,只有極少部分是正突變;再進(jìn)行“選”:借助各種篩選方法篩選出具有某特定表型的突變株,如能夠耐受不良環(huán)境(如某種濃度的抗生素、前體或不同的pH等),從絕大部分的負(fù)突變中快速篩選出正突變,進(jìn)一步提高篩選效率.

    2.3 親本原生質(zhì)體的制備

    原生質(zhì)體融合技術(shù)是基因組重排技術(shù)的基礎(chǔ),又很多因素會直接影響原生質(zhì)體制備及再生效果,如微生物的菌齡、制備原生質(zhì)體的酶種類及濃度、酶解溫度及時(shí)間、緩沖液及再生培養(yǎng)基的成分與設(shè)計(jì)等.李亮等[4]在利用基因組重排技術(shù)選育紅曲霉菌SH2-7生產(chǎn)治療心血管良藥的洛伐他汀時(shí)對原生質(zhì)體制備及再生條件進(jìn)行了考察,結(jié)果表明,當(dāng)溶壁酶為1.0%,菌絲菌齡為66h,在酶解溫度為30℃下酶解3h,采用pH為6.0的高滲磷酸鹽緩沖液,0.6mo/L的NaCl作為再生培養(yǎng)基的滲透壓穩(wěn)定劑時(shí),原生質(zhì)體再生率高達(dá)1.45%.

    2.4 原生質(zhì)體遞推式融合

    基因組重排技術(shù)是基于原生質(zhì)體融合技術(shù)的多輪遞推式融合[5],此種方式的融合不僅能提高不同遺傳特征細(xì)胞之間的基因頻率,還能進(jìn)一步提高基因組重排的高效性.第一輪融合后,篩選出若干株性狀比較優(yōu)良的菌株作為親本,按照相同的操作方法進(jìn)行第二輪融合.根據(jù)研究人員的原始意圖和融合子最終顯示的特性,可以實(shí)施若干輪融合.

    原生質(zhì)體融合的方法主要包括化學(xué)法及電誘導(dǎo)融合等方法.化學(xué)法是利用聚乙二醇促進(jìn)融合,如Zhang等[6]建立了一種優(yōu)化的聚乙二醇介導(dǎo)的原生質(zhì)體轉(zhuǎn)化系統(tǒng),用于黑曲霉ATCC 20611高效生產(chǎn)低聚果糖.電誘導(dǎo)融合法是基于電學(xué)和生物化學(xué)的理論.在電場作用下,原生質(zhì)體向電極方向泳動,同時(shí),在細(xì)胞內(nèi)產(chǎn)生偶極化,以促進(jìn)原生質(zhì)體的粘附,最終使原生質(zhì)體在短時(shí)間內(nèi)發(fā)生融合.Ye等[7]為了讓蘋果酒更富有風(fēng)味和香氣,對釀酒酵母和克魯氏假絲酵母的滅活原生質(zhì)體進(jìn)行電誘導(dǎo)融合,最終獲得一株感官評分和香氣成分含量得分最高的雜交R4.

    2.5 融合子的篩選

    融合子的檢出和鑒定在基因組重排中占據(jù)非常重要的地位.通??梢罁?jù)基因組重排的目的進(jìn)行重組子的篩選,可借助菌株對環(huán)境的不同耐受力,或設(shè)計(jì)一些選擇性培養(yǎng)基來實(shí)現(xiàn).Wang等[8]以分離到的Lactobacillus plantarum IMAU10014及Lactobacillus helveticus IMAU40097為材料,以Penicillium digitatum KM08模式菌為指示菌,通過基因組重排技術(shù)提高乳酸菌抗真菌活性.Gérando[9]等利用隨機(jī)誘變及基因組重排技術(shù),提高了厭氧菌Clostridium beijerinckii DSM溶劑耐受性及異丙醇/丁醇/乙醇的產(chǎn)量,極大改善自然異丙醇產(chǎn)生菌的表型.

    另外,還可通過滅活法來篩選重組體.如Yin等[10]為了提高釀酒酵母Saccharomyces cerevisiae YS86產(chǎn)谷胱甘肽的產(chǎn)量,利用紫外照射和加熱處理獲得致死的原生質(zhì)體,并對其進(jìn)行兩輪基因組重排,最終獲得高產(chǎn)的重組子YSF2-19,其在搖瓶和發(fā)酵罐中谷胱甘肽產(chǎn)量分別增加了3.2及3.3倍.筆者[11]利用紫外線照射及加熱滅活處理Streptomyces virginiae原生質(zhì)體,在鏈霉素抗性壓力下,并對其進(jìn)行五輪基因組重排,最終獲得一株維吉尼亞霉素產(chǎn)量穩(wěn)定的重組子G5-103,產(chǎn)量約為251mg/L,比親本UV-1150及野生株提高3.1及11.6倍.

    3 基因組重排技術(shù)存的問題與展望

    目前,基因組重排技術(shù)面臨很多瓶頸,其中融合子的高通量篩選是最難攻克的環(huán)節(jié),現(xiàn)尚無快速高效的篩選方法,需要研究者借助已有知識及技術(shù)深入挖掘.另外,由于跨種屬親本之間同源性較差,重組概率較低,因此基因組重排技術(shù)很少用于不同種親本的融合.

    基因組重排技術(shù)自2002年問世以來便受到人們的廣泛關(guān)注,并應(yīng)用在各種微生物菌種改良中,取得了巨大的經(jīng)濟(jì)及社會效益.隨著自身技術(shù)的發(fā)展及生物信息學(xué)、蛋白質(zhì)組學(xué)等生物技術(shù)的成熟,基因組重排技術(shù)必然成為日后開發(fā)新產(chǎn)品、新物種的有力技術(shù),為加速微生物菌種改良,進(jìn)一步促進(jìn)產(chǎn)業(yè)化做出貢獻(xiàn).

    參考文獻(xiàn):

    〔1〕Zhang Y X., Perry K., Vinci V A., et al. Genome shuffling leads to rapid phenotypic improvement in bacteria [J]. Nature,2002,415(6872):644-646.

    〔2〕Powell K A., Ramer S W., Stephen B., et al. Directed Evolution and Biocatalysis [J]. Angewandte Chemie International Edition, 2001,40(21):3948-3959.

    〔3〕Stemmer W P C. Molecular Breeding of Genes, Pathways and Genomes by Dna Shuffling [J]. Biotechnology & Bioprocess Engineering,2002,7(3):121-129.

    〔4〕李亮,林娟,葉秀云.利用基因組重排技術(shù)選育高產(chǎn)洛伐他汀紅曲菌株[J].福州大學(xué)學(xué)報(bào)(自然科學(xué)版),2017(5):754-760.

    〔5〕仝倩倩.高通量篩選及基因組重排選育維吉尼亞霉素高產(chǎn)菌[D].2018.

    〔6〕Zhang J., Liu C., Xie Y., et al. Enhancing fructooligosaccharides production by genetic improvement of the industrial fungus Aspergillus niger ATCC 20611[J]. Journal of Biotechnology, 2017, 249:25-33.

    〔7〕Ye M., Yue T., Yuan Y., et al. Production of yeast hybrids for improvement of cider by protoplast electrofusion[J]. Biochemical Engineering Journal,2013,81:162-169.

    〔8〕Wang H K., Sun Y., Chen C., et al. Genome shuffling of Lactobacillus plantarum for improving antifungal activity[J]. Food Control,2013,32(2):341-347.

    〔9〕Gérando H., Máté de., Fayolle-Guichard F., et al. Improving isopropanol tolerance and production of Clostridium beijerinckii DSM 6423 by random mutagenesis and genome shuffling[J]. Applied Microbiology and Biotechnology,2016,100(12):5427-5436.

    〔10〕Yin H., Ma Y., Deng Y., et al. Genome shuffling of Saccharomyces cerevisiae for enhanced glutathione yield and relative gene expression analysis using fluorescent quantitation reverse transcription polymerase chain reaction[J]. Journal of Microbiological Methods,2016,127:188-192.

    〔11〕Tong Q Q., Zhou Y H., Chen X S., et al. Genome shuffling and ribosome engineering of Streptomyces virginiae for improved virginiamycin production[J]. Bioprocess & Biosystems Engineering,2018(41):729-738.

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