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    滸苔染色體制備及核型初步分析

    2019-09-03 07:57:42趙曉惠施錦婷張建恒康新宇丁曉瑋何培民文欽琳楊曉倩
    海洋漁業(yè) 2019年4期
    關(guān)鍵詞:配子體秋水仙素核型

    趙曉惠,施錦婷,2,張建恒,3,康新宇,丁曉瑋,何培民,3,文欽琳,楊曉倩

    (1.上海海洋大學(xué)海洋生態(tài)與環(huán)境學(xué)院,上海 201306;2.高知大學(xué)海洋植物學(xué)研究室,日本高知 783-8502;3.江蘇省海洋生物產(chǎn)業(yè)技術(shù)協(xié)同創(chuàng)新中心,連云港 222005)

    滸苔(Enteromorpha/Ulva prolifera)原屬于綠藻門,綠藻綱,石莼目,石莼科,滸苔屬(Enteromorpha),近年來(lái)國(guó)際上根據(jù)分子研究結(jié)果已傾向把滸苔屬歸為石莼屬(Ulva)。它廣泛分布于中、低潮區(qū)的砂礫、巖石、灘涂和石沼海岸中。滸苔藻體含有許多人體必需的營(yíng)養(yǎng)成分,自古以來(lái)即作為食用和藥用植物[1-2],日本已大規(guī)模養(yǎng)殖,其產(chǎn)品價(jià)格在海藻中最高[3]。近十幾年以來(lái),許多國(guó)家都受到綠潮災(zāi)害的影響,其已成為全球性的海洋環(huán)境問(wèn)題[4-5]。2008年,滸苔引發(fā)了我國(guó)黃海大規(guī)模綠潮暴發(fā)[6-7],直接威脅2008年青島奧帆賽舉辦,此后則成為我國(guó)黃海年年暴發(fā)綠潮主因[8-9]。目前,滸苔生活史、生理生態(tài)學(xué)、發(fā)育與進(jìn)化生物學(xué)等關(guān)鍵問(wèn)題正在深入研究,并且研究重點(diǎn)已開(kāi)始轉(zhuǎn)向功能基因分析與精細(xì)定位及分子遺傳學(xué)等關(guān)鍵問(wèn)題,因此滸苔染色體制備及核型分析研究越來(lái)越重要且十分迫切。

    染色體制片和核型分析是研究重要功能基因定位、物種演化與分類、染色體遺傳學(xué)等的重要環(huán)節(jié)[10-11]。由于大型海藻細(xì)胞壁結(jié)構(gòu)特殊,采用傳統(tǒng)染色體蘇木精染色制備十分困難,至今僅海帶和紫菜染色體制備和分型比較成功[12-13]。COLL等[14]最早采用釩鐵蘇木精染液對(duì)紫菜屬的Porphyra leucosticta染色體核型進(jìn)行研究,并且通過(guò)觀察條斑紫菜(Porphyra yezoensis)和壇紫菜(Porphyra haitanensis)的殼孢子及其第1次和第2次萌發(fā)細(xì)胞染色體數(shù)目,才首次確認(rèn)了紫菜減數(shù)分裂發(fā)生位置[15-16]。周偉等[17]采用蘇木精染色可清晰地看到條斑紫菜和壇紫菜葉狀體細(xì)胞分別為3條和5條染色體、絲狀體細(xì)胞分別為6條和10條染色體。劉宇等[12]利用酶解-熒光法成功制備海帶染色體,并可清晰辨認(rèn)和分析核型;王浩東[18]最早嘗試使用蘇木精染色和常規(guī)壓片法進(jìn)行滸苔染色制備和觀察研究,但滸苔染色體制作效果較差,難以準(zhǔn)確進(jìn)行倍性及核型分析。

    為此,本研究借鑒海帶染色體制備方法,采用酶解-熒光法探索滸苔染色體制備方法,通過(guò)大量實(shí)驗(yàn)研究出綠藻滸苔染色體制備過(guò)程中的3個(gè)關(guān)鍵條件,并獲得了滸苔染色體核型清晰圖譜,以期為未來(lái)滸苔遺傳特征分析以及滸苔基因定位研究奠定基礎(chǔ)。

    1 材料與方法

    1.1 樣品采集與預(yù)處理

    本實(shí)驗(yàn)選用材料為滸苔,于2018年5月采自江蘇如東紫菜養(yǎng)殖區(qū)域,滸苔雌、雄配子體和孢子體由經(jīng)典生活史方法進(jìn)行判定[19]。選擇生長(zhǎng)狀態(tài)較好的藻體,在溫度為20℃、光照強(qiáng)度為130~150μmol·m-2·s-1、光照周期為12 L∶12 D條件下,于盛有400 mL VSE培養(yǎng)液[20]的三角瓶中充氣培養(yǎng),每周更換一次培養(yǎng)基。

    1.2 染色體的制備

    分別取1 cm生長(zhǎng)狀態(tài)良好的滸苔雌、雄配子體及孢子體,用滅菌海水清洗3~5次,放入1.5 mL離心管中,12 000 r·min-1離心2 min,去除多余水分,加入1 mL質(zhì)量濃度為0.2%的秋水仙素[12]振蕩搖勻,于4℃靜置處理,并設(shè)置不同處理時(shí)間,分別為 4、8、12、16、20 h,以確定最適處理時(shí)間。

    取秋水仙素處理的藻體,用去離子水漂洗2~3次,離心得沉淀;加入卡諾固定液(乙醇∶乙酸=3∶1)充分混勻后,于4℃處理24 h,將藻體細(xì)胞固定于有絲分裂中期,后離心得沉淀,用去離子水漂洗3次,離心取沉淀藻體,放入1.5 mL離心管中,加入質(zhì)量濃度都為2%的纖維素酶、果膠酶、離析酶各100μL,充分混勻后放入37℃水浴鍋中酶解4~24 h,設(shè)置不同梯度酶解時(shí)間分別為 4、8、12、16、20、24 h,以確定最適宜酶解時(shí)間;然后用70%的乙醇終止酶解反應(yīng),并用蒸餾水將酶解后的藻體漂洗3次,去除乙醇,離心得酶解產(chǎn)物沉淀,加入100μL冰乙酸并充分振蕩混勻,取少量酶解產(chǎn)物,設(shè)置不同高度(10、30、50 cm)進(jìn)行高位滴片,室溫自然晾干。

    1.3 染色體的觀察與核型初步分析

    取攜帶有染色體的自然晾干載玻片,避光加15μL DAPI(10μg·mL-1)溶液,蓋上蓋玻片,染色15 min后,在熒光顯微鏡(Leica DM4000B/DFC550,德國(guó))下觀察,將圖片拍照保存。根據(jù)染色體數(shù)目判定標(biāo)準(zhǔn):統(tǒng)計(jì)的細(xì)胞數(shù)目應(yīng)在30個(gè)以上,其中85%以上的細(xì)胞具有恒定一致的染色體數(shù),即可認(rèn)為是該植物的染色體數(shù)目[21]。取5個(gè)典型中期細(xì)胞,測(cè)量并計(jì)算染色體絕對(duì)長(zhǎng)度、相對(duì)長(zhǎng)度和總長(zhǎng)度及各平均值,計(jì)算方法參見(jiàn)李懋學(xué)等[21]的核型分析標(biāo)準(zhǔn);最后根據(jù)染色體絕對(duì)長(zhǎng)度,利用Adobe Photoshop軟件按照由大到小順序?qū)G苔細(xì)胞染色體進(jìn)行編號(hào)并排序[22]。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 秋水仙素處理時(shí)間對(duì)染色體制備的影響

    秋水仙素能有效抑制紡錘體的形成,秋水仙素處理時(shí)間對(duì)染色體分裂相、染色體濃縮程度及染色體形態(tài)有較大影響(圖1)。秋水仙素處理時(shí)間表明:若處理時(shí)間過(guò)短(<8 h),染色體大部分還處于染色質(zhì)狀態(tài),難以清晰分辨染色體個(gè)體(圖1-A,B);若處理時(shí)間過(guò)長(zhǎng)(>16 h),造成染色體縮得過(guò)短,成極小的圓點(diǎn)狀,顯示不出染色體之間的差異(圖1-D);對(duì)于處理12 h左右的滸苔細(xì)胞,其染色體分裂相較多,染色體濃縮程度適宜,分散均勻,形態(tài)清晰(圖1-C)。

    2.2 酶解時(shí)間對(duì)染色體制備的影響

    酶解程度的好壞直接影響到制片染色體的質(zhì)量(圖2),若酶解時(shí)間過(guò)短(<16 h)(圖2-A~D),細(xì)胞壁酶解不完全,細(xì)胞質(zhì)有殘留,細(xì)胞分散不均勻,染色體形態(tài)不易觀察;若酶解時(shí)間過(guò)長(zhǎng)(>20 h)(圖2-F),則染色體被降解,同樣不能清楚觀察染色體形態(tài);實(shí)驗(yàn)發(fā)現(xiàn),酶解20 h左右效果最好(圖2-E),能去除細(xì)胞壁、細(xì)胞膜和多糖物質(zhì),使細(xì)胞分散均勻,染色體呈清晰點(diǎn)狀或棒狀。

    圖1 秋水仙素處理時(shí)間對(duì)滸苔染色體制備的影響Fig.1 Effect of different colchicine preparation time on chromosome preparation

    圖2 酶解時(shí)間對(duì)染色體制備的影響Fig.2 Effect of different enzym atic hydrolysis time on chromosome preparation

    2.3 滴片高度對(duì)染色體制備的影響

    滴片的作用主要是打破細(xì)胞外被和核膜,使染色體較好地分散在載玻片上以便于觀察。不同高度進(jìn)行滴片,能獲得不同的染色體制片效果。結(jié)果顯示,在10 cm左右高度下滴片(圖3-A),染色體背景較模糊,不能使染色體較好的分散,不利于染色體的觀察。當(dāng)?shù)纹叨葹?0 cm左右時(shí)(圖3-B),能有效地分散染色體,獲得較容易觀察的染色體。而當(dāng)高度大于50 cm(圖3-C)進(jìn)行滴片,染色體較為分散,很難區(qū)分單個(gè)細(xì)胞染色體。

    2.4 核型初步分析

    通過(guò)不斷優(yōu)化滸苔染色體制片方法后,獲得清晰的滸苔染色體分裂相,其染色體分散較均勻,形態(tài)較清晰(圖4)。本實(shí)驗(yàn)分別選取80個(gè)滸苔雌、雄配子體和孢子體細(xì)胞進(jìn)行染色體數(shù)目的確定,93%(超過(guò)85%)的細(xì)胞染色體數(shù)目為雌、雄配子體n=9,孢子體2n=18。再按照染色體絕對(duì)長(zhǎng)度由大到小進(jìn)行染色體核型的初步分析(圖4-D~F),統(tǒng)計(jì)5個(gè)中期細(xì)胞分裂相,雌性配子體的染色體絕對(duì)長(zhǎng)度(表1)為1.249~3.490 μm,染色體總長(zhǎng)度為21.286μm,平均長(zhǎng)度為2.265μm;雄性配子體的染色體絕對(duì)長(zhǎng)度為1.375~2.875μm,染色體總長(zhǎng)度為 18.044μm,平均為2.005μm;雌配子體的染色體長(zhǎng)度略大于雄配子體染色體,但他們的相對(duì)長(zhǎng)度之間沒(méi)有顯著性差異。孢子體染色體的絕對(duì)長(zhǎng)度為1.188~2.125μm,總長(zhǎng)度為 26.242μm,平均長(zhǎng)度為1.458μm。

    圖3 不同高度滴片對(duì)染色體制備的影響效果Fig.3 Effect of different drop heights on chromosome preparation

    圖4 滸苔雌、雄配子體及孢子體的染色體及其核型分析Fig.4 Chromosome images of the female,male gametophytes and sporophytes of U.prolifera and analysis of karyotypes

    表1 滸苔雌、雄配子體及孢子體染色體長(zhǎng)度(M eans±SD,n=5)Tab.1 Index of karyotype of U.prolifera

    3 討論

    雖然目前植物染色體制片技術(shù)已較為成熟,但常規(guī)染色體制片技術(shù)仍存在不足之處[23-24],而滸苔染色體很小,增加了對(duì)其染色體的觀察難度,因此要獲得分散良好且清晰的中期分裂相,需要對(duì)影響染色體制備過(guò)程的每一個(gè)關(guān)鍵因素進(jìn)行最適范圍摸索。預(yù)處理可破壞和抑制紡錘體中微管的形成,使中期分裂相的數(shù)量增加,促使染色體濃縮變短,利于染色體分散[25-26]。可用作預(yù)處理的藥物很多,如秋水仙素、對(duì)二氯苯、8-羥基喹啉、α-溴萘、冰水等[10],但不同植物進(jìn)行預(yù)處理的最佳方式不同。楊玲等[25]利用對(duì)二氯苯-α-溴萘混合液預(yù)處理沙田柚根尖制片效果最好;李艷輝等[27]用8-羥基喹啉處理皺葉酸模,染色體制片效果最好;劉宇等[12]和唐歷波等[28]分別以秋水仙素作為預(yù)處理試劑處理海帶和白木香,取得了很好的染色體制片效果。由于滸苔與海帶同屬海藻,本研究選用秋水仙素作為預(yù)處理試劑,通過(guò)大量實(shí)驗(yàn)比較了不同濃度秋水仙素以及不同預(yù)處理時(shí)間對(duì)制片效果的影響,發(fā)現(xiàn)秋水仙素濃度對(duì)預(yù)處理效果影響不大,但其處理時(shí)間對(duì)實(shí)驗(yàn)結(jié)果有很大的影響,因此選取質(zhì)量濃度為0.2%的秋水仙素[12],本研究得出的秋水仙素最適預(yù)處理時(shí)間為12 h,這樣可以積累大量處于分裂中期的染色體[29-30]。

    固定劑可以中止細(xì)胞中的酶解反應(yīng)或其他代謝活動(dòng),防止抗原丟失或被破壞,并保持細(xì)胞原有的結(jié)構(gòu)和狀態(tài)[26],本研究所選用的卡諾固定液(無(wú)水乙醇∶冰乙酸=3∶1),目的是為了穩(wěn)定染色體的結(jié)構(gòu),防止其分解,便于顯微觀察。研究結(jié)果表明,卡諾固定時(shí)間對(duì)制片效果無(wú)顯著影響,但染色體在4℃下處理24 h,固定效果最佳,這與劉宇等[12]制備海帶染色體的條件一致。

    解離可以除去細(xì)胞間的果膠層并軟化、破壞細(xì)胞壁[31]。不同的植物材料,解離液的選擇和解離時(shí)間大不相同[32-33],GILL等[34]用纖維素酶和果膠酶溶解細(xì)胞壁;陳瑞陽(yáng)等[35]提出了酶解去壁低滲的制片方法,制片的染色體分散較好、形態(tài)較平整;劉宇等[12]用秋水仙素多種酶處理獲得清晰的海帶染色體。本研究所選用的解離方法為酶解法,在多種酶的作用下,經(jīng)過(guò)酶解和壓片后,分生細(xì)胞的原生質(zhì)體從細(xì)胞壁中脫離出來(lái),使得染色體周圍不帶細(xì)胞質(zhì)或僅有少量細(xì)胞質(zhì),從而得到細(xì)胞背景干凈、染色體分散較好的制片效果[10,12,36]。本研究酶解所用的每一種酶都是必不可少的,纖維素酶是一種在分解纖維素時(shí)起生物催化作用的酶,可以將纖維素分解為寡糖或單糖;果膠酶是從根霉中提取的,使細(xì)胞間的果膠質(zhì)降解;離析酶的主要作用是把細(xì)胞從組織內(nèi)分離出來(lái),成為單細(xì)胞。酶解程度的好壞直接影響到染色體的質(zhì)量,為了獲得高質(zhì)量的染色體分裂相,本研究通過(guò)大量實(shí)驗(yàn)得出最適酶解時(shí)間,即質(zhì)量濃度為2%的纖維素酶、果膠酶、離析酶,混合酶解20 h所得染色體質(zhì)量最高。

    滴片的作用主要是打破細(xì)胞外被和核膜,使染色體較好地分散在載玻片上以便于觀察。不同高度滴片能獲得不同的染色體制片效果,本研究發(fā)現(xiàn),若滴片高度低于30 cm,染色體背景較模糊,不能使細(xì)胞較好的分散,不利于染色體的觀察;若滴片高度高于30 cm,則細(xì)胞與染色體較為分散,很難區(qū)分單個(gè)細(xì)胞染色體;只有在30 cm的滴片高度下才能獲得高質(zhì)量的染色體。此外,本實(shí)驗(yàn)選用靈敏度高、特異性的DAPI用于染色體的顯帶,方法簡(jiǎn)便,分辨率也很高[37]。DAPI復(fù)合物發(fā)出的熒光為淺藍(lán)色,熒光顯微鏡觀察細(xì)胞標(biāo)記的效率高,發(fā)出的熒光更加穩(wěn)定,便于顯微照相[38]。

    綜上可知,影響滸苔染色體制片優(yōu)劣的因素有很多,染色體制備過(guò)程中的每一步都十分關(guān)鍵。染色體制片的目的就是獲得高質(zhì)量的染色體,為后續(xù)的核型分析和原位雜交等研究提供先決條件。本研究發(fā)現(xiàn),用質(zhì)量濃度為0.2%的秋水仙素處理12 h,在獲得大量處于分裂中期的染色體的基礎(chǔ)上,用質(zhì)量濃度為2%的纖維素酶、果膠酶、離析酶,混合酶解20 h,在30 cm高度下滴片,可以獲得質(zhì)量較高的染色體分裂相,所得滸苔雌、雄配子體染色體均為9條,孢子體的染色體為18條,呈短棒狀或點(diǎn)狀,并按照大小順序?qū)θ旧w的核型進(jìn)行了初步分析,此結(jié)果為滸苔染色體進(jìn)行核型分析以及滸苔基因定位研究奠定了基礎(chǔ),也可為未來(lái)滸苔全基因組的進(jìn)一步分析提供重要依據(jù)。

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