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    大腸桿菌Targetron基因打靶載體構(gòu)建及應(yīng)用*

    2019-08-02 11:10:12黃瑾陳相好吳曉娟張崢嶸谷俊瑩陳崢宏崔古貞
    關(guān)鍵詞:內(nèi)含子菌落質(zhì)粒

    黃瑾, 陳相好, 吳曉娟, 張崢嶸, 谷俊瑩, 陳崢宏**, 崔古貞**

    (1.貴州省普通高等學(xué)校病原生物學(xué)特色重點實驗室, 貴州 貴陽 550025; 2.貴州醫(yī)科大學(xué) 基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)院, 貴州 貴陽 550025; 3.貴州醫(yī)科大學(xué) 醫(yī)學(xué)檢驗學(xué)院, 貴州 貴陽 550004)

    Ⅱ型內(nèi)含子(group II introns)是一類具有自我剪接功能、可在染色體不同位置移動的反轉(zhuǎn)錄轉(zhuǎn)座子,廣泛存在于細(xì)菌、古細(xì)菌和植物的細(xì)胞器基因組中[1-2]。來源于乳酸乳球菌(lactococcuslactis)的Ll.LtrB內(nèi)含子由內(nèi)含子RNA和內(nèi)含子編碼蛋白(intron-encoded protein,IEP)兩部分組成,其中內(nèi)含子編碼蛋白IEP由反轉(zhuǎn)錄結(jié)構(gòu)域、成熟酶結(jié)構(gòu)域、DNA結(jié)合域和核酸內(nèi)切酶結(jié)構(gòu)域等多個功能結(jié)構(gòu)域組成[2-6]。Ⅱ型內(nèi)含子發(fā)揮功能時,IEP蛋白利用其核酸內(nèi)切酶活性切割靶位點,并通過其自身攜帶的反轉(zhuǎn)錄活性將內(nèi)含子RNA以cDNA的形式插入到靶位點,最后細(xì)胞通過修復(fù)機制再以cDNA為模板合成互補DNA,從而將內(nèi)含子RNA以DNA的形式插入到DNA靶位點[6-8]?;冖蛐蛢?nèi)含子的這種遷移特性開發(fā)出的Targetron基因打靶技術(shù)被廣泛應(yīng)用于多個物種的基因失活[8-19]。本研究以課題組前期建立誘導(dǎo)型targetron質(zhì)粒為基礎(chǔ),選擇大腸桿菌lacZ-1683a和lacZ-1874s為靶位點,構(gòu)建了兩種Targetron打靶載體,經(jīng)異丙基硫代半乳糖苷(IPTG)誘導(dǎo)后驗證其功能及其效率,為下一步對Ⅱ型內(nèi)含子的移動機制研究及應(yīng)用奠定了基礎(chǔ)。

    1 材料與方法

    1.1 實驗材料

    1.1.1主要試劑 高保真DNA聚合酶、T4 DNA連接酶和DNA Marker購自北京全式金公司,TRYPTONE、YEAST EXTRACT購自美國OXID公司,瓊脂糖、Agar Powder、氨芐青霉素、X-gal以及IPTG購自索萊寶公司,限制性內(nèi)切酶XhoI和BsrGI購自賽默飛公司,菌落PCR所使用的2×Taq Master Mix購自諾唯贊公司,DNA純化試劑盒、DNA凝膠回收試劑盒以及質(zhì)粒提取試劑盒購自天根公司。

    1.1.2菌株的培養(yǎng) 菌株均用LB液體培養(yǎng)基(1% Tryptone,0.5%Yeast Extract,1%NaCl)37 ℃進(jìn)行培養(yǎng),必要時加入1.5% Agar Powder配制成LB固體培養(yǎng)基,采用100 mg/L氨芐青霉素,藍(lán)白斑篩選時加入40 mg/L X-gal和0.1 mmol/L IPTG。

    1.1.3菌株及質(zhì)粒 所用的菌株及質(zhì)粒見表1。

    表1 所用菌株及質(zhì)粒的特征和來源Tab.1 Strains and plasmids used in this study

    注:(1)表示該質(zhì)粒已在生物技術(shù)通報中使用(《生物技術(shù)通報》2019年35卷6期,已錄用、待發(fā)表)

    1.1.4引物 引物合成由上海生工合成,詳細(xì)序列信息見表2。

    1.2 方法

    1.2.1打靶引物設(shè)計 將大腸桿菌BL21(DE3)的lacZ全基因序列輸入到在線網(wǎng)址(www.clostron.com),根據(jù)評分高低,選擇lacZ基因反義鏈第1 683位點(lacZ-1683a)及正義鏈第1 874位點(lacZ-1874s)作為打靶位點,在線設(shè)計程序會給出相應(yīng)位點的打靶引物序列,每個位點會給出4種引物(lacZ-1683a-IBS、lacZ-1683a-EBS1d、lacZ-1683a-EBS2以及EBS Universal),詳細(xì)引物序列見表2。

    表2 引物序列及描述Tab.2 Primers used in this study

    1.2.2打靶載體的構(gòu)建 以pSY7質(zhì)粒為模板,用相應(yīng)打靶位點的引物(lacZ-1683a-IBS/EBS Universal和lacZ-1683a-EBS2/lacZ-1874s-EBS1d)進(jìn)行第一輪PCR,條件為95 ℃ 3 min,95 ℃ 20 s、55 ℃ 20 s、72 ℃ 30 s,循環(huán)數(shù)為30,PCR產(chǎn)物采用瓊脂糖DNA凝膠回收試劑盒回收特異條帶,以第一輪的PCR產(chǎn)物及打靶位點引物(lacZ-1683a-IBS lacZ-1874s-EBS1d)進(jìn)行第二輪PCR,PCR條件同上,產(chǎn)物再采用DNA純化試劑盒回收特異性條帶。利用限制性內(nèi)切酶XhoI/BsrGI雙酶切質(zhì)粒pSY7和第二輪PCR產(chǎn)物,通過DNA凝膠試劑盒回收,T4 DNA連接酶連接,連接產(chǎn)物轉(zhuǎn)化大腸桿菌E.coliDH5a,菌落PCR鑒定及測序后獲得打靶載體pSY7-lacZ-1683a和pSY7-lacZ-1874s。見圖1。

    圖1 打靶載體pSY7-lacZ-1683a和pSY7-lacZ-1874s的構(gòu)建流程Fig.1 Flow chart of Targetron vectors construction

    1.2.3大腸桿菌BL21(DE3)的轉(zhuǎn)化 將3 μL的質(zhì)粒pSY7-lacZ-1683a、pSY7-lacZ-1874s分別加入到50 μL大腸桿菌的BL21(DE3)感受態(tài)細(xì)胞中,冰上孵育30 min,42 ℃熱激90 s后,置于冰上5 min,加入900 μL LB液體培養(yǎng)基中,37 ℃ 180 r/min復(fù)蘇1 h后,離心取細(xì)胞沉淀加入100 mg/L氨芐青霉素LB液體培養(yǎng)基5 mL中,37 ℃ 180 r/min過夜培養(yǎng)。

    1.2.4打靶載體功能的檢測 取40 μL過夜培養(yǎng)的菌液加入100 mg/L氨芐青霉素的LB液體培養(yǎng)基4 mL中,37 ℃ 200 r/min進(jìn)行增菌培養(yǎng)1 h,再加入終濃度為0.5 mmol/L的IPTG誘導(dǎo)質(zhì)粒表達(dá)45 min,離心取細(xì)胞沉淀稀釋凃布LB平板(含100 mg/L氨芐青霉素、40 mg/L X-gal和0.1 mmol/L IPTG),37 ℃過夜,挑取平板上的白色菌落和藍(lán)色菌落進(jìn)行菌落PCR驗證以檢測內(nèi)含子序列插入基因組的特異性,通過藍(lán)白斑計數(shù)計算打靶效率,打靶效率=白斑/(白斑+藍(lán)斑)×100%。

    2 結(jié)果

    2.1 打靶載體的構(gòu)建

    圖2A為第一輪PCR的電泳圖,成功擴增出兩個打靶序列0.1 kb和0.25 kb的特異性條帶;圖2B為進(jìn)行第二輪PCR的電泳圖,成功將第一輪PCR的0.1 kb和0.25 kb的產(chǎn)物進(jìn)行了連接;圖2C為所構(gòu)建質(zhì)粒菌落的PCR結(jié)果,可見明顯的0.35 kb的打靶序列條帶。通過測序,表明本研究成功構(gòu)建了打靶載體pSY7-lacZ-1683a、pSY7-lacZ-1874s。

    注:M為8 000 Marker,A為第一輪PCR,1為lacZ-1683a-IBS/EBSU,2為lacZ-1683a-EBS2/lacZ-1683s-EBS1d,3為lacZ-1874s-IBS/EBSU,4為lacZ-1874s-EBS2/lacZ-1874s-EBS1d;B為第二輪PCR,1為lacZ-1683a-IBS/lacZ-1683a-EBS1d,2為lacZ-1874s-IBS/lacZ-1874s-EBS1d;C為菌落PCR,1為lacZ-1683a-IBS/lacZ-1683a-EBS1d,2為lacZ-1874s-IBS/lacZ-1874s-EBS1d圖2 打靶載體構(gòu)建電泳結(jié)果Fig.2 Electrophoresis detection for Targetron construction

    2.2 打靶載體的功能檢測

    如圖3所示,當(dāng)用打靶位點的上下游引物進(jìn)行菌落PCR時,白色菌落比野生型藍(lán)色菌落多了0.9 kb的條帶大小,而且通過特異性引物進(jìn)行菌落PCR,可得到相應(yīng)大小的條帶,表明本研究所構(gòu)建的打靶載體經(jīng)過誘導(dǎo)后,內(nèi)含子序列成功的特異性地插入了相應(yīng)的打靶位點。

    2.3 Targetron載體的打靶效率

    如圖4所示,lacZ-1683a的打靶效率為(14.299±1.271)%,lacZ-1874s的打靶效率為(9.217±1.024)%。

    3 討論

    來源于乳酸乳球菌的Ll.LtrB內(nèi)含子是目前研究得最為廣泛的細(xì)菌Ⅱ型內(nèi)含子,基于其在細(xì)菌中的特異轉(zhuǎn)移機制,已被開發(fā)為高效的Targetron基因打靶技術(shù)[9,14,18,20-21]。由于該技術(shù)操作簡便,實驗周期短,基因打靶效率高等優(yōu)點,已在多種革蘭氏陽性菌及革蘭陰性菌中獲得廣泛應(yīng)用[8]。根據(jù)Ⅱ型內(nèi)含子的靶位點識別機制,已開發(fā)出通用的特異性打靶引物設(shè)計軟件,并可利用在線設(shè)計軟件(www.clostron.com),僅輸入靶基因即可自動生成特異性引物,并獲得各打靶位點的評分情況;其次,在基因打靶載體構(gòu)建方面,通過重疊延伸PCR獲得特異性的內(nèi)含子打靶序列,結(jié)合單次質(zhì)??寺。憧色@得針對目標(biāo)基因的打靶載體。本研究以大腸桿菌lacZ基因為例,設(shè)計并構(gòu)建了針對lacZ-1683a和lacZ-1874s兩個位點的Targetron載體,通過轉(zhuǎn)化、誘導(dǎo)及菌落PCR驗證獲得較好的打靶效率。總之,本研究成功構(gòu)建的Targetron打靶載體為Ⅱ型內(nèi)含子的機理研究及應(yīng)用奠定了基礎(chǔ)。

    注:M為8 000 Marker,A為打靶載體功能檢測所用引物示意圖,B為插入位點外側(cè)引物檢測BL21-pSY7-lacZ-1683a 突變株、1為lacZ-1/lacZ-2引物檢測BL21-pSY7-lacZ-1683a、2為lacZ-1/lacZ-2引物檢測BL21(DE3),C為特異性 引物檢測BL21-pSY7-lacZ-1683a突變株、1為lacZ-1/lacZ-1683a-IBS、2為lacZ-1/lacZ-1683a-EBS2、3為lacZ- 1683a-EBS1d/lacZ-2、4為EBSU/lacZ-2,D為插入位點外側(cè)引物檢測BL21-pSY7-lacZ-1874s突變株、1為 lacZ-1/lacZ-2引物檢測BL21-pSY7-lacZ-1874s、2為lacZ-1/lacZ-2引物檢測BL21(DE3),E為特異性 引物檢測BL21-pSY7-lacZ-1874s突變株、1為lacZ-1/ lacZ-1874s-EBS1d、2為lacZ-1/ EBSU、 3為lacZ-1874s-IBS/lacZ-2、4為lacZ-1874s-EBS2/lacZ-2圖3 打靶載體的功能檢測Fig.3 Function verification of Targetron vectors

    圖4 Targetron載體的打靶效率Fig.4 Targeting efficiency of Targetron vectors

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