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    HBx蛋白抑制滋養(yǎng)細(xì)胞凋亡的作用及機制

    2021-10-14 06:47:06潘怡霞林亞云郭凡凡張文濤白桂芹
    關(guān)鍵詞:兔抗人熒光素酶胎盤

    潘怡霞,林亞云,劉 妍,郭凡凡,張文濤,白桂芹

    (1.西安交通大學(xué)第一附屬醫(yī)院婦產(chǎn)科,陜西西安 710061;2.昆明醫(yī)科大學(xué)第一附屬醫(yī)院生殖遺傳科,云南昆明 650032;3.解放軍總醫(yī)院第五醫(yī)學(xué)中心,臨床研究管理中心,北京 100039;4.西安市第三醫(yī)院婦產(chǎn)科,陜西西安 710016)

    中國是乙肝病毒(hepatitis B virus,HBV)感染的高發(fā)地帶,人群HBV攜帶率為9.9%,HBV感染與慢性肝炎、肝硬化和肝癌密切相關(guān)[1-3]。HBV母嬰傳播包括宮內(nèi)感染、分娩過程中的感染和分娩后的感染[4]。從母親到嬰兒的后兩種傳播途徑可通過在嬰兒出生后立即使用HBV疫苗和HBV免疫球蛋白(hepatitis B immunoglobulin,HBIG)治療而阻斷[5]。但仍然有5%~10%的嬰兒未能阻斷HBV感染,這主要是發(fā)生宮內(nèi)感染所致[6-9]。本課題組前期的研究發(fā)現(xiàn)HBV可通過母體血液接觸胎盤并感染胎盤滋養(yǎng)細(xì)胞,產(chǎn)生乙肝X蛋白(hepatitis B X protein,HBx),與胞內(nèi)磷脂酰肌醇激酶(phosphoinositide 3-kinase,PI3K)、絲氨酸/蘇氨酸特異性蛋白激酶(protein ki?nase B,Akt)抑制滋養(yǎng)細(xì)胞凋亡的信號通路有關(guān)[10-11]。本研究將進(jìn)一步明確HBx蛋白通過內(nèi)皮生長因子受體(epidermal growth factor receptor,EGFR)/PI3K/Akt信號通路抑制胎盤滋養(yǎng)細(xì)胞凋亡的具體機制。

    1 材料與方法

    1.1 材料人絨毛膜癌細(xì)胞株JEG-3(中科院上海生命科學(xué)研究院細(xì)胞庫),人滋養(yǎng)細(xì)胞HTR-8(第四軍醫(yī)大學(xué)唐都醫(yī)院婦產(chǎn)科實驗室),DMEM高糖培養(yǎng)、RPMI-1640培養(yǎng)基(美國Gibco公司);優(yōu)質(zhì)胎牛血清(美國Gibco公司),胰蛋白酶(Amresco公司)。EGFR過表達(dá)慢病毒顆粒(復(fù)能基因),EGFR shRNA(維真生物),pGL3-EGFR啟動子熒光素酶表達(dá)質(zhì)粒(上海宇玫博生物),pGL3-basic、pGL3-control、pRLTK質(zhì)粒(Promega公司),pGFP-HBx表達(dá)質(zhì)粒(Add?gene);質(zhì)粒提取試劑盒、膠回收試劑盒(上海生工生物工程有限公司、德國QIAGEN公司);0.22 μm濾器(Millpore公司);轉(zhuǎn)染試劑X-tremeGENE HD(德國Roche公司)。兔抗人HBx多克隆抗體、兔抗人EGFR多克隆抗體(Abcam公司),兔抗人PI3K單克隆抗體、兔抗人p-Akt單克隆抗體、兔抗人Akt單克隆抗體(Cell Signaling公司);化學(xué)發(fā)光底物(Thermo公司);辣根過氧化物酶結(jié)合的山羊抗鼠IgG、辣根過氧化物酶結(jié)合的山羊抗兔IgG、兔抗β-actin多克隆抗體、鼠抗β-actin多克隆抗體(北京康為世紀(jì)生物公司);羊抗兔IgG-Cy3(康維世紀(jì))。8孔腔室載玻片(ibidi),細(xì)胞凋亡試劑盒(凱基生物)。pGFP-HBx質(zhì)粒、野生型pTriEx-1.1 HBV質(zhì)粒和HBx缺失突變型pTriEx-1.1 HBV質(zhì)粒為本課題組前期構(gòu)建提取儲存。

    1.2 細(xì)胞培養(yǎng)將JEG-3及HTR-8細(xì)胞從液氮中取出復(fù)蘇后,JEG-3細(xì)胞培養(yǎng)于含100 mL/L胎牛血清的DMEM高糖培養(yǎng)基中,HTR-8細(xì)胞培養(yǎng)于含100 mL/L胎牛血清的RPMI-1640培養(yǎng)基中,置于含50 mL/L CO2、37℃恒溫細(xì)胞培養(yǎng)箱中孵育。將復(fù)蘇成功的細(xì)胞培養(yǎng)傳2代后進(jìn)行后續(xù)實驗。

    1.3 雙熒光素酶檢測HBx與EGFR啟動子的關(guān)系分別將正常培養(yǎng)的JEG-3、HTR-8細(xì)胞以3×105/孔接 種 至24孔板,16~18 h時將pGL3-EGFR啟動子熒光素酶表達(dá)載體與內(nèi)參pRL-TK載體按30∶1的比例分別共轉(zhuǎn)染2種細(xì)胞。每種細(xì)胞各分為3組。實驗組(HBx+E組)共轉(zhuǎn)染pGFP-HBx表達(dá)質(zhì)粒和pGL3-EGFR啟動子熒光素酶表達(dá)載體;空載體對照組(Control組)共轉(zhuǎn)染pGFP空載體和pGL3-EGFR啟動子熒光素酶表達(dá)載體;陰性對照組(NC組)共轉(zhuǎn)染pGFP-HBx表達(dá)質(zhì)粒和pGL3-Basic熒光素酶表達(dá)載體。設(shè)置pGL3-Basic熒光素酶報告載體為陰性對照,pGL3-Control熒光素酶報告載體為陽性對照。48 h時進(jìn)行各組細(xì)胞熒光素酶活性檢測,分析HBx對EGFR啟動子活性的影響。

    1.4 EGFR過表達(dá)或敲低的JEG-3、HTR-8細(xì)胞系的構(gòu)建及實驗分組通過慢病毒顆粒感染細(xì)胞構(gòu)建EGFR穩(wěn)定表達(dá)細(xì)胞系:培養(yǎng)JEG-3、HTR-8細(xì)胞至對數(shù)生長期,每孔9.5×104個細(xì)胞于500 μL相應(yīng)細(xì)胞培養(yǎng)液至24孔板,過夜培養(yǎng)后更換完全培養(yǎng)液,分別加入相應(yīng)的慢病毒顆粒液,即慢病毒量(mL)=接觸慢病毒的細(xì)胞數(shù)×MOI/慢病毒滴度(TU/mL)。感染12~16 h后,吸棄含慢病毒顆粒的培養(yǎng)液,加完全培養(yǎng)液繼續(xù)培養(yǎng)72~96 h,觀察熒光表達(dá)。于感染72 h時加入嘌呤霉素2 μg/mL藥物篩選。將穩(wěn)定過表達(dá)EGFR的JEG-3、HTR-8細(xì)胞系定義為EGFR過表達(dá)組。

    通過脂質(zhì)體法轉(zhuǎn)染細(xì)胞構(gòu)建敲低EGFR表達(dá)細(xì)胞系:穩(wěn)定過表達(dá)EGFR的JEG-3、HTR-8細(xì)胞培養(yǎng)至對數(shù)生長期,按每孔約1.0×106個細(xì)胞接種于6孔板中,培養(yǎng)至50%~60%匯合時采用脂質(zhì)體轉(zhuǎn)染法轉(zhuǎn)染EGFR shRNA。將2 μg質(zhì)粒 和4 μL轉(zhuǎn) 染試劑X-tremeGENE HP混勻后室溫孵育30 min,加入細(xì)胞培養(yǎng)孔,搖勻后繼續(xù)培養(yǎng)72 h,顯微鏡下觀察細(xì)胞形態(tài)。將干擾EGFR表達(dá)的JEG-3、HTR-8細(xì)胞系定義為EGFR敲低組。本研究另設(shè)空白對照組,細(xì)胞未進(jìn)行處理。

    1.5 Western blotting檢測EGFR/PI3K/p-Akt的表達(dá)分別收集1.4項各組細(xì)胞,加入RIPA裂解液于冰上裂解30 min。4℃12 500 r/min離心25 min,離心后保留上清,用BCA法測定蛋白濃度,計算蛋白上樣量。用SDS-PAGE電泳法進(jìn)行蛋白電泳后通過轉(zhuǎn)膜儀移至硝酸纖維素膜上;將膜置于含50 g/L脫脂奶粉的TBST中進(jìn)行抗體封閉2 h,隨后分別于一抗(兔抗人EGFR多克隆抗體1∶1 000,兔抗人PI3K單克隆抗體、兔抗人p-Akt單克隆抗體1∶500,兔抗人Akt單克隆抗體1∶800,鼠抗β-actin多克隆抗體1∶1 000)及HRP標(biāo)記的二抗(辣根過氧化物酶結(jié)合的山羊抗鼠IgG、辣根過氧化物酶結(jié)合的山羊抗兔IgG均為1∶2 000)孵育后,ECL發(fā)光液顯色,壓片保存。

    1.6 激光共聚焦成像分析EGFR/PI3K/p-Akt蛋白定位表達(dá)分別收集1.4項各組細(xì)胞,按每孔4.5×104個細(xì)胞接種到8孔腔室載玻片。48 h后細(xì)胞生長至約90%,棄上清,用1×PBS清洗細(xì)胞,40 g/L多聚甲醛 固 定,1 mL/L Triton X-100破 膜,30 g/L BSA室溫封閉2 h。一抗(兔抗人EGFR多克隆抗體1∶500,兔抗人PI3K單克隆抗體、兔抗人p-Akt單克隆抗體1∶250)4℃孵育過夜,二抗(羊抗兔IgG-Cy3 1∶500)37℃避光孵育40 min,加細(xì)胞核染液DAPI染核10 min,PBS再次清洗 后,在Olympus FV1000共聚焦顯微鏡下觀察并分析結(jié)果。

    1.7 Western blotting檢測HBx、PI3K/p-Akt的表達(dá)在6孔板內(nèi)培養(yǎng)JEG-3、HTR-8細(xì)胞,每種細(xì)胞分為4組,分別轉(zhuǎn)染pGFP-HBx質(zhì)粒、野生型pTriEx-1.1 HBV質(zhì) 粒、HBx缺 失 突 變 型pTriEx-1.1 HBV質(zhì)粒和pGFP空載體。培養(yǎng)72 h,收集各組細(xì)胞進(jìn)行Western blotting檢測,具體步驟同1.6項(兔抗人HBx多克隆抗體1∶500)。

    1.8 流式細(xì)胞儀檢測細(xì)胞凋亡收集1.4項各組細(xì)胞接種于12孔板培養(yǎng)72 h,分別用不含EDTA的胰酶消化,PBS洗滌細(xì)胞2次(2 000 r/min離心5 min)收集(1~5)×105細(xì)胞;加入500 μL的Binding Buffer懸浮 細(xì) 胞;加 入5 μL Annexin V-FITC混 勻 后,加 入5 μL PI(propidium iodide),混勻;室溫、避光反應(yīng)5~15 min;在1 h內(nèi)使用流式細(xì)胞儀檢測。將1.7項中的各組轉(zhuǎn)染細(xì)胞培養(yǎng)48 h,分別用不含EDTA的胰酶消化收集,用流式細(xì)胞儀檢測細(xì)胞凋亡。

    1.9 統(tǒng)計學(xué)處理采用SPSS 18.0統(tǒng)計軟件對資料進(jìn)行統(tǒng)計學(xué)分析;實驗數(shù)據(jù)以“均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差”表示,2組樣本比較采用獨立樣本t檢驗,多組樣本比較采用單因素或雙因素方差分析,組間多重比較采用Bonferroni多重比較法分析。P<0.05為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。

    2 結(jié) 果

    2.1 雙熒光素酶報告基因檢測HBx與EGFR啟動子的關(guān)系結(jié)果顯示,同時轉(zhuǎn)染HBx質(zhì)粒和pGL3-EGFR啟動子熒光素酶表達(dá)載體的實驗組(HBx+E組)JEG-3和HTR-8細(xì)胞中,pGL3-EGFR啟動子熒光素酶表達(dá)較空載體對照組(Control)及陰性對照組(NC組)均顯著增高(均為P<0.01,圖1)。

    圖1雙熒光素酶報告基因檢測HBx與EGFR啟動子的關(guān)系Fig.1 Relationship between HBx and EGFR promoters de?tected by luciferase reporter assay

    2.2 EGFR過表達(dá)時EGFR/PI3K/p-Akt蛋白的表達(dá)情況

    2.2.1各組EGFR/PI3K/p-Akt蛋白的表達(dá)West?ern blotting結(jié)果顯示,EGFR過表達(dá)組的2種細(xì)胞中EGFR蛋白表達(dá)高于空白對照組(JEG-3細(xì)胞,HTR-8細(xì)胞,均為P<0.05);EGFR敲低組的2種細(xì)胞內(nèi)EGFR表達(dá)顯著低于EGFR過表達(dá)組(均為P<0.01),說明EGFR過表達(dá)組及EGFR敲低組細(xì)胞構(gòu)建成功。EGFR過表達(dá)組的2種細(xì)胞內(nèi)PI3K及p-Akt的蛋白表達(dá)顯著高于空白對照組和EGFR敲低組(均為P<0.01);各組之間Akt表達(dá)差異無統(tǒng)計學(xué)意義(圖2)。

    圖2 Western blotting檢測細(xì)胞內(nèi)EGFR/PI3K/p-Akt蛋白表達(dá)Fig.2 Expression of EGFR/PI3K/p-Akt protein detected by Western blotting

    2.2.2各組細(xì)胞內(nèi)EGFR/PI3K/p-Akt蛋白表達(dá)定位激光共聚焦成像結(jié)果顯示(圖3):EGFR過表達(dá)組的EGFR蛋白表達(dá)高于空白對照組與EGFR敲低組(均為P<0.05);當(dāng)EGFR過表達(dá)組細(xì)胞轉(zhuǎn)染shRNA而敲低表達(dá)后,EGFR敲低組的兩組細(xì)胞內(nèi)EGFR表達(dá)較EGFR過表達(dá)組降低(均為P<0.05)。當(dāng)EGFR過表達(dá)時,兩組細(xì)胞內(nèi)PI3K/p-Akt表達(dá)高于空白對照組和EGFR敲低組(均為P<0.05),表達(dá)變化與Western blotting結(jié)果一致。

    圖3激光共聚焦成像分析EGFR/PI3K/p-Akt蛋白表達(dá)定位Fig.3 Localization and expression of EGFR/PI3K/P-Akt protein by laser confocal imaging(×400)

    2.3 EGFR/PI3K/p-Akt信號通路抑制細(xì)胞凋亡流式細(xì)胞術(shù)結(jié)果顯示:EGFR過表達(dá)組2種細(xì)胞的凋亡比例較空白對照組顯著降低(JEG-3P<0.05;HTR-8P<0.01);EGFR敲低組2種細(xì)胞的凋亡比例顯著高于EGFR過表達(dá)組(JEG-3P<0.05;HTR-8P<0.01,圖4)。這說明胎盤滋養(yǎng)細(xì)胞凋亡比例與EGFR/PI3K/p-Akt表達(dá)呈負(fù)相關(guān)。

    圖4 流式細(xì)胞術(shù)檢測EGFR/PI3K/p-Akt信號通路抑制細(xì)胞凋亡Fig.4 The inhibitory effect of EGFR/PI3K/p-Akt signaling pathway on apoptosis detected by flow cytometry

    2.4 HBx蛋白促進(jìn)PI3K/p-Akt信號通路蛋白表達(dá)當(dāng)JEG-3、HTR-8兩種細(xì)胞轉(zhuǎn)染pGFP-HBx質(zhì)粒及pTriEx-1.1 HBV野生型質(zhì)粒時,可檢測到HBx蛋白表達(dá);轉(zhuǎn)染HBx缺失突變型pTriEx-1.1 HBV質(zhì)粒組和空載體對照組無HBx蛋白表達(dá);當(dāng)存在HBx蛋白表達(dá)時,即轉(zhuǎn)染pGFP-HBx質(zhì)粒組和轉(zhuǎn)染pTriEx-1.1 HBV野生型質(zhì)粒組中PI3K及p-Akt蛋白表達(dá)顯著高于HBx缺失組和空載體對照組(均為P<0.05);各組之間Akt表達(dá)差異無統(tǒng)計學(xué)意義(圖5)。

    圖5 Western blotting檢測HBx及PI3K/p-Akt蛋白表達(dá)情況Fig.5 Expressions of HBx and PI3K/p-Akt protein detected by Western blotting

    2.5 HBx蛋白抑制細(xì)胞凋亡流式細(xì)胞術(shù)結(jié)果顯示,JEG-3和HTR-8兩種細(xì)胞轉(zhuǎn) 染pGFP-HBx組 及轉(zhuǎn)染pTriEx-1.1 HBV組細(xì)胞凋亡率均較轉(zhuǎn)染HBx缺失突變pTriEx-1.1 HBV組及空載體對照組顯著降低(均為P<0.05,圖6)。這提示絨毛膜癌滋養(yǎng)細(xì)胞凋亡比例與HBx/PI3K/p-Akt表達(dá)呈負(fù)相關(guān)。

    3 討 論

    HBx可整合入EGFR等調(diào)控細(xì)胞生長基因,影響細(xì)胞內(nèi)信號轉(zhuǎn)導(dǎo)[12]。研究表明,HBx可影響EGFR和EGFR家族其他成員的激活[13-14],將不同的信號刺激傳入細(xì)胞內(nèi),從而啟動了信號轉(zhuǎn)導(dǎo)級聯(lián)而產(chǎn)生多種生化反應(yīng)。而HBx激活EGFR的作用位點及機制還有待進(jìn)一步研究。

    本研究通過雙熒光素酶活性檢測,發(fā)現(xiàn)HBx質(zhì)粒與EGFR啟動子質(zhì)粒共轉(zhuǎn)染時,EGFR啟動子表達(dá)顯著高于空載體對照組及陰性對照組(P<0.01)。本研究首次發(fā)現(xiàn)并證實HBx蛋白可作用于EGFR啟動子區(qū)域,激活EGFR啟動子表達(dá)。

    圖6流式細(xì)胞術(shù)檢測HBx蛋白對細(xì)胞凋亡的抑制作用Fig.6 The inhibition of HBx protein on apoptosis detected by flow cytometry

    EGFR在哺乳動物細(xì)胞表面廣泛分布,作為膜表面受體,具有酪氨酸激酶活性,可將不同的信號刺激傳入細(xì)胞內(nèi),激活多種下游信號途徑如PI3K/p-Akt/Bad、Ras/Raf/MEK/ERK等多種信號轉(zhuǎn)導(dǎo)途徑,與刺激細(xì)胞增殖、細(xì)胞移動性增強及器官的修復(fù)有密切關(guān)系[15]。EGFR/PI3K/p-Akt在許多類型細(xì)胞的增殖調(diào)控和凋亡抑制中發(fā)揮關(guān)鍵作用[16-17]。

    為探討在胎盤滋養(yǎng)細(xì)胞內(nèi)EGFR/PI3K/p-Akt信號通路的調(diào)控機制與HBV宮內(nèi)感染之間存在的內(nèi)在關(guān)系,本研究構(gòu)建了EGFR過表達(dá)滋養(yǎng)細(xì)胞,使用shRNA敲低過表達(dá)組EGFR表達(dá),通過Western blotting及激光共聚焦檢測EGFR/PI3K/p-Akt表達(dá)及定位。EGFR/PI3K/p-Akt均位于細(xì)胞質(zhì)中,當(dāng)EGFR過表達(dá)時PI3K/p-Akt表達(dá)顯著升高(P<0.01),Akt表達(dá)無統(tǒng)計學(xué)差異,細(xì)胞凋亡比例顯著降低(JEG-3P<0.05;HTR-8P<0.01)。EGFR過表達(dá)組被敲低后,PI3K/p-Akt表達(dá)顯著降低(P<0.01),Akt表達(dá)無統(tǒng)計學(xué)差異,細(xì)胞凋亡比例顯著增加(JEG-3P<0.05;HTR-8P<0.01)。胎盤滋養(yǎng)細(xì)胞內(nèi)EGFR過表達(dá)時可以激活其下游信號通路PI3K/p-Akt,并通過PI3K/p-Akt信號通路抑制胎盤滋養(yǎng)細(xì)胞凋亡,證實EGFR激活PI3K/p-Akt從而抑制胎盤滋養(yǎng)細(xì)胞凋亡,使感染HBV的滋養(yǎng)細(xì)胞壽命延長,逃避機體免疫系統(tǒng)的清除。HBV DNA得以大量復(fù)制合成,增加HBV宮內(nèi)感染的危險性。

    有研究表明,體外和體內(nèi)的高復(fù)制狀態(tài)下(HBV DNA>1×103copies/mL),尤其是HBV DNA>1×107copies/mL,滋養(yǎng)細(xì)胞內(nèi)有HBxAg的表達(dá),滋養(yǎng)細(xì)胞凋亡明顯受到抑制,同時細(xì)胞內(nèi)PI3K及p-Akt的表達(dá)上調(diào)。在妊娠過程中,孕婦血液內(nèi)的HBV感染胎盤滋養(yǎng)細(xì)胞后,在其中復(fù)制繁殖,抑制滋養(yǎng)細(xì)胞凋亡,可能與產(chǎn)生的HBx蛋白及胞內(nèi)PI3K/p-Akt信號通路有關(guān)[10-11]。WANG等[18]的研究發(fā)現(xiàn),pEGFR蛋白在HBx感染的人胎盤組織和滋養(yǎng)細(xì)胞中明顯上調(diào),HBx通過激活EGFR/Akt通路,減少細(xì)胞凋亡,促進(jìn)胎盤滋養(yǎng)細(xì)胞分泌胎盤激素。本研究發(fā)現(xiàn),當(dāng)胎盤滋養(yǎng)細(xì)胞內(nèi)存在HBx蛋白表達(dá)時,PI3K/p-Akt表達(dá)顯著升高(P<0.05),細(xì)胞凋亡率則顯著降低(P<0.05)。這證實了HBx蛋白通過促進(jìn)EGFR/PI3K/p-Akt信號通路,抑制胎盤滋養(yǎng)細(xì)胞凋亡,與已有研究報道的結(jié)果一致[19-20]。

    綜上所述,在胎盤滋養(yǎng)細(xì)胞內(nèi)HBx蛋白作用于EGFR啟動子區(qū)域,通過調(diào)控EGFR啟動子區(qū)激活EGFR及其下游信號通路PI3K/p-Akt,抑制細(xì)胞凋亡,受HBV感染的胎盤滋養(yǎng)細(xì)胞生存期延長,有益于HBV DNA的復(fù)制,為病毒提供了潛伏場所,實現(xiàn)免疫逃逸。因此,探討HBx蛋白在HBV宮內(nèi)感染中的作用及機制是未來研究的重點。

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