葉天一 周 鑫 黃 艷 王曉紅
(國(guó)家林業(yè)局哈爾濱林業(yè)機(jī)械研究所,哈爾濱 150086)
桂花(Osmanthusfragrans)是木犀科(Oleaceae)木犀屬(Osmanthus)植物,常綠闊葉灌木或者小喬木,屬于我國(guó)十大傳統(tǒng)名花,同時(shí)也是世界上最早被用作園藝觀賞植物的其中之一[1~3]。目前我國(guó)的桂花品種可分為4個(gè)品種群,共157個(gè)品[4~5]。桂花常用的繁殖方法有嫁接、扦插、壓條、種子繁殖,其中以嫁接為主[6~11]。現(xiàn)階段微繁即組織培養(yǎng)作為桂花的一種繁殖方式,是一種新興的繁殖技術(shù),具有繁殖系數(shù)大[12]、能夠保持品種的優(yōu)良性狀等特點(diǎn),可彌補(bǔ)以往常規(guī)繁殖育苗的不足[13],同時(shí)又能滿足市場(chǎng)對(duì)苗木大批量的需求[14]。實(shí)驗(yàn)是以植物組織培養(yǎng)技術(shù)為基礎(chǔ)開展的擴(kuò)繁研究工作,植物離體快繁技術(shù)是依賴于植物組織培養(yǎng)技術(shù)而興起的[15~17]。它是利用植物的營(yíng)養(yǎng)繁殖方法,植物組織培養(yǎng)的材料為外植體(explant),器官、組織、胚胎、細(xì)胞以及原生質(zhì)體均可作為組織培養(yǎng)的材料[18~20]。將植物的組織塊或是器官消毒后放入無(wú)菌的培養(yǎng)環(huán)境中,在人工的培養(yǎng)條件下繁殖,快速的獲取較多的目的植株,達(dá)到快速擴(kuò)繁的目的。
迄今為止,桂花組織培養(yǎng)的室內(nèi)快速繁殖技術(shù)已經(jīng)基本上發(fā)展成熟,但是針對(duì)其煉苗鮮見(jiàn)系統(tǒng)的文獻(xiàn)報(bào)道,且工序復(fù)雜不系統(tǒng),成苗率低,實(shí)用性不強(qiáng)。本研發(fā)內(nèi)容的開展,期望通過(guò)對(duì)金桂品種微繁的煉苗關(guān)鍵技術(shù)試驗(yàn)及其結(jié)果分析,探索其提高成活、成苗率的煉苗技術(shù),為目標(biāo)品種的壯苗快繁提供煉苗的技術(shù)支撐。
以廣西地區(qū)金桂(Osmanthusfragransvar.thunbergii)作為微繁培育苗木的試材,組培室內(nèi)培養(yǎng)溫度為25±3℃,光照14 h·d-1,光照強(qiáng)度為2 000~2 500 lx。
1.2.1 不同培養(yǎng)基對(duì)試管苗生根的影響
試驗(yàn)以金桂組織培養(yǎng)苗繼代增殖后生長(zhǎng)2.5 cm以上的無(wú)根苗為試材,將其轉(zhuǎn)入生根培養(yǎng)基。試驗(yàn)包括基本培養(yǎng)基(A)、NAA(B)和6-BA(C)3個(gè)因素,每因素3個(gè)水平(表1)。根據(jù)設(shè)定的因素水平表,故選用L9(34)正交試驗(yàn)設(shè)計(jì)進(jìn)行實(shí)施。
表1 實(shí)驗(yàn)因素水平表
Table 1 The levels and factors of the experiment
水平Level因素FactorA:基本培養(yǎng)基A:Minimal mediumB:NAA(mg·L-1)C:6-BA(mg·L-1)1MS002B520.0531/2MS40.10
設(shè)立兩個(gè)對(duì)照組:CK1:1/2MS基本培養(yǎng)基;CK2:B5基本培養(yǎng)基。
每個(gè)處理組合需桂花無(wú)根瓶苗5瓶,每瓶3株,每個(gè)處理設(shè)置3個(gè)重復(fù),本試驗(yàn)共需要165瓶無(wú)根苗。
1.2.2 不同預(yù)處理對(duì)煉苗的影響
以長(zhǎng)至6 cm左右的金桂微繁生根苗為材料,試驗(yàn)試劑為蒸餾水、3%蔗糖水即30 g蔗糖與1 L蒸餾水相溶、10倍稀釋的MS大量母液。
表2 試驗(yàn)因素水平表
本試驗(yàn)一個(gè)處理共設(shè)置3個(gè)重復(fù),每個(gè)處理5瓶,每瓶3株,共需180瓶。
1.2.3 不同移栽基質(zhì)對(duì)煉苗的影響
經(jīng)過(guò)室內(nèi)煉苗的金桂微繁苗,腐殖土為購(gòu)買的淮安市土壤肥料研究所生產(chǎn)的有機(jī)基質(zhì),苗圃土為商丘市農(nóng)林科學(xué)院桂花培育基地園土,珍珠巖為袋裝購(gòu)買。
試驗(yàn)包括苗圃土(A)、珍珠巖(B)和腐殖土(C)3個(gè)因素,每因素3個(gè)水平(表3),各因素水平之間為容積比。根據(jù)設(shè)定的因素水平表,試驗(yàn)選用L9(34)正交試驗(yàn)設(shè)計(jì)進(jìn)行實(shí)施。
表3 試驗(yàn)因素水平表
Table 3 The levels and factors of the experiment
水平Level因素FactorA:苗圃土A:The nursery soilB:珍珠巖B:PerliteC:腐殖土C:Humus101121343257
設(shè)立一個(gè)對(duì)照組CK:只用苗圃土作為基質(zhì)。
每個(gè)處理組合需微繁苗15株,每個(gè)處理設(shè)置3個(gè)重復(fù),本實(shí)驗(yàn)共需要450株經(jīng)過(guò)室內(nèi)煉苗的桂花。
通過(guò)對(duì)不同處理組合的金桂微繁苗快繁生根性狀的調(diào)查分析,各指標(biāo)的平均值如表4所示。
從表4中可以看出,編號(hào)2(A1B2C2)得到了最大生根率,且顯著高于其他組合,說(shuō)明珍珠巖∶腐殖土為3∶4的時(shí)候有利于金桂的生根,而在兩組對(duì)照實(shí)驗(yàn)處理(CK1和CK2)來(lái)看,僅使用苗圃土的生根率最低,可以說(shuō)在金桂生根過(guò)程中,使用苗圃土?xí)档徒鸸鸬纳省?/p>
在直觀分析的基礎(chǔ)上,采用因素水平變化趨勢(shì)圖,解釋根系各生長(zhǎng)指標(biāo)隨因素的水平變化規(guī)律(圖1)。
表4 不同處理組合的生根指標(biāo)統(tǒng)計(jì)表
注:不同大、小寫字母分別表示差異極顯著(P<0.01)和顯著(P<0.05),下同。
Note:Different big and small letters mean extremely significant difference(P<0.01) and significant difference(P<0.05) respectively, the same as below.
圖1 根系各指標(biāo)隨因素的變化趨勢(shì)圖Fig.1 The chart of rooting parameter variation with the change of factorial levels
由圖1可看出,基本培養(yǎng)基類型對(duì)發(fā)芽率影響差異不顯著,NAA對(duì)發(fā)芽率影響達(dá)極顯著水平,6-BA對(duì)發(fā)芽率影響達(dá)顯著水平。基本培養(yǎng)基對(duì)根系各指標(biāo)的影響中,MS基本培養(yǎng)基對(duì)發(fā)芽率的影響效果最好,B5基本培養(yǎng)基對(duì)生根數(shù)的效果效果最好,由于當(dāng)基本培養(yǎng)基由A2(B5)變?yōu)锳3(1/2MS)時(shí),對(duì)生根數(shù)的影響并不大,綜合可知B5對(duì)該根系各指標(biāo)的影響效果較好;NAA對(duì)根系各指標(biāo)的影響以2.0 mg·L-1最好,其生根率和生根數(shù)量分別達(dá)到85.93%和3.59條/株,均優(yōu)于NAA其他兩個(gè)濃度;6-BA對(duì)根系各指標(biāo)中,生根率隨其濃度的增加而增加,可達(dá)到60.74%,生根數(shù)隨其濃度的增加到一定數(shù)目不再改變,最高達(dá)到3.09條/株。從根系各指標(biāo)隨因素水平變化趨勢(shì)圖可以看出,試驗(yàn)的最佳組合為A2B2C3,即在B5基本培養(yǎng)基中添加2 mg·L-1NAA和0.10 mg·L-16-BA是促進(jìn)金桂微繁苗生根及根系生長(zhǎng)的較佳組合,與直觀分析的結(jié)果一致。
2.2.1 處理組合的成活率和苗木損失率指標(biāo)統(tǒng)計(jì)
對(duì)不同處理組合的金桂微繁苗煉苗室內(nèi)成活率、移栽成活率以及苗木損失率進(jìn)行調(diào)查統(tǒng)計(jì),各指標(biāo)的平均值如表5所示。
表5 不同處理組合統(tǒng)計(jì)結(jié)果
(1)多重比較結(jié)果顯示,處理組合7、10和11的室內(nèi)成活率比較接近,分別為95.6%、97.8%和95.6%,可以說(shuō)明,在生根培養(yǎng)較長(zhǎng)時(shí)間、加入蒸餾水有利于金桂的移栽成活率。與其他處理組合的差異極顯著,并為室內(nèi)成活率最高的A組;處理組合5和6的室內(nèi)成活分別為84.4%、82.2%和66.7%,與其他處理組合的差異顯著,組成B組;處理組合3、6的室內(nèi)成活率分別為60.0%和62.2%,組成B組;處理組合9室內(nèi)成活率為75.6%,獨(dú)立為過(guò)渡組BC組;處理組合2室內(nèi)成活率為62.2%,與其他組差異極顯著為C組;處理組合處理組合1、3、4、8以及12的室內(nèi)成活率分別為48.9%、48.9%、40.0%、44.4%、51.1%,與C組的差異極顯著,組成室內(nèi)成活率最低的D組。
(2)對(duì)不同處理組合間的移栽成活率方差分析,結(jié)果P=7.36E-10<0.01差異極顯著。多重比較結(jié)果表明,處理組合7移栽成活率最高,為84.4%,與其他處理組合的差異極顯著,獨(dú)立為A組;處理組合5、6和10的移栽成活率分別為68.9%、64.4%,兩者無(wú)極顯著差異但與其他處理組合的室內(nèi)成活率差異顯著而為次大的B組;處理組合1、2、3、11的移栽成活率分別為46.7%、53.3%、44.4%和40.0%,組成C組;處理組合8和9的移栽成活率分別為26.7%、28.9%,獨(dú)立為D組;處理組合4和12的移栽成活率分別為17.8%、8.9%,與D組的差異極顯著,組成移栽成活率最低的D組。
金桂微繁苗煉苗移栽30 d后,通過(guò)對(duì)不同處理組合的成活率以及苗木增長(zhǎng)率進(jìn)行統(tǒng)計(jì),各指標(biāo)的平均值如表6所示。
表6 不同處理組合生長(zhǎng)指標(biāo)統(tǒng)計(jì)結(jié)果
(1)多重比較結(jié)果,試驗(yàn)的成活率表現(xiàn)出以下特征:處理組合1的成活率最高,達(dá)到82.2%,與其他處理組合的差異極顯著,獨(dú)立為成活率最高的A組;處理組合2、3和7成活率分別為66.7%、73.3%和71.1%,與其他處理組合的成活率差異顯著而為成活率次大的B組;處理組合3、6的生根率較接近,分別為48.9%、55.6%和51.1%,組成成活率次低的C組;處理組合5、9以及10三者的生根率極顯著地低于其他處理組合的,組成成活率最低的D組。
(2)不同處理組合間的苗木增長(zhǎng)率方差分析結(jié)果與成活率類似,其差異達(dá)到極顯著水平,即P=2.69E-18<0.01。多重比較結(jié)果表明,處理組合3、7和8(41.7、42.9、42.2%)的苗木增長(zhǎng)率極顯著地大于其他處理組合,組成苗木增長(zhǎng)率最大的A組;處理組合2的苗木增長(zhǎng)率為33.0%,與其他處理組合的苗木增長(zhǎng)率差異極顯著而為苗木增長(zhǎng)率次大的B組;處理組合1、4和6的苗木增長(zhǎng)率無(wú)顯著差異(28.4、27.8、28.5%),組成苗木增長(zhǎng)率次小的C組;處理組合5、9和10的苗木增長(zhǎng)率較少,分別為8.0%、7.6%和8.2%,組成苗木增長(zhǎng)率最少的D組(表1~6)。
通過(guò)以上分析,初步揭示了不同基質(zhì)處理組合對(duì)金桂微繁苗煉苗成活率和苗木生長(zhǎng)狀況的影響較大。
影響金桂微繁苗生根率的最優(yōu)理論組合為A2B2C3,但是,該試驗(yàn)組合在本次試驗(yàn)中未實(shí)施,平均生根數(shù)的最優(yōu)理論組合為A3B2C2(C3)。實(shí)際試驗(yàn)中以處理組合A3B2C3(1/2MS培養(yǎng)基,2 mg·L-1NAA,0.10 mg·L-16-BA)的處理,對(duì)金桂微繁苗的各個(gè)生根指標(biāo)最好,其生根率、平均生根數(shù)分別為:91.11%、3.83條/株。由于基本培養(yǎng)基(A因素)對(duì)生根率和生根數(shù)的影響不顯著,且故綜合分析結(jié)果,最優(yōu)組合為A3B2C3,即以B5基本培養(yǎng)基+2 mg·L-1NAA+0.10 mg·L-16-BA作為生根培養(yǎng)基,是提高金桂微繁苗生根率和生根數(shù)的最佳處理組合。
影響金桂微繁苗生根率的最優(yōu)理論組合為A2B4C3D2E3,但是,該試驗(yàn)組合在本次試驗(yàn)中未實(shí)施,結(jié)合實(shí)際試驗(yàn)中以處理組合A3B4C2D3E2的移栽成活率達(dá)到最高為84.4%,并且其室內(nèi)成活率為95.6%,與室內(nèi)最高成活率接近,苗木損失率也為最低組僅11.6%,因此可考慮最為煉苗預(yù)處理的技術(shù)措施,即生根苗培養(yǎng)40 d,閉瓶6 d,開瓶6 d,3/4開瓶方式,加入3%蔗糖水。
試驗(yàn)的最優(yōu)理論處理組合為A1B1C3(苗圃土∶珍珠巖∶腐殖土=0∶1∶7),在實(shí)際試驗(yàn)中該處理組合未實(shí)施,需在進(jìn)一步的實(shí)驗(yàn)研究中進(jìn)行驗(yàn)證。在實(shí)際試驗(yàn)中,與最優(yōu)處理組合相近的試驗(yàn)組合是A3B2C3,其成活率和苗木增長(zhǎng)率分別為82.2%、42.2%,雖其苗木增長(zhǎng)率低于處理組合A3B1C2,但是兩者的苗木增長(zhǎng)率接近差異不顯著,而且在實(shí)際生產(chǎn)中,苗圃土比較方便收集以及成本低,因此,可考慮在實(shí)際生產(chǎn)中以A3B2C3(苗圃土∶珍珠巖∶腐殖土=2∶3∶7)作為金桂微繁苗煉苗基質(zhì)的配比組合。
以往的研究者依據(jù)培養(yǎng)的不同物種、組織和目的,設(shè)計(jì)了許多不同類型的基本培養(yǎng)基[21]。在桂花的組織培養(yǎng)中,其初代培養(yǎng)和增殖培養(yǎng),選用的基本培養(yǎng)基略有不同,但是其基本培養(yǎng)基常用的有MS和B5兩類[22]。在二十世紀(jì)九十年代,秦新民在對(duì)秋桂嫩莖誘導(dǎo)叢生芽的組織培養(yǎng)實(shí)驗(yàn)中,就選用了MS作為基本培養(yǎng)基,獲得了實(shí)驗(yàn)的成功;在1998年,Kazutaka和Nishikaw兩位科學(xué)家對(duì)在桂花莖尖進(jìn)行誘導(dǎo)時(shí)以MS+6-BA 1.5 mg·L-1+2,4-D 0.1 mg·L-1為初代培養(yǎng)基,得到了愈傷組織[16];在對(duì)桂花新稍莖段初代及其繼代培養(yǎng)、胚幼苗生長(zhǎng)的研究中發(fā)現(xiàn),LMc培養(yǎng)基優(yōu)于MS培養(yǎng)基[13]。但是袁王俊等人通過(guò)對(duì)桂花莖尖以及胚的組織培養(yǎng)實(shí)驗(yàn)研究得出,MS和DCR培養(yǎng)基沒(méi)有B5效果好[16,19]。
植物生長(zhǎng)調(diào)節(jié)劑又被稱為外源激素,它與植物體內(nèi)分泌的激素具有相似的生理和生物學(xué)效應(yīng)。經(jīng)過(guò)以往大量研究發(fā)現(xiàn),激素在各類植物的組織培養(yǎng)中是不可或缺的,并且根據(jù)不同的植物、不同的目的等,其在應(yīng)用中的種類、濃度以及配比是不同的?,F(xiàn)在應(yīng)用的激素主要有:生長(zhǎng)素類,如2,4-D、萘乙酸(NAA)、吲哚乙酸(IAA)等;細(xì)胞分裂素類,能夠促使細(xì)胞快速分裂,以及側(cè)芽的生長(zhǎng)和不定芽的分化等,如在組織培養(yǎng)中我們最常用的6-芐基腺嘌呤(6-BA),另外還有激動(dòng)素(KT)等;赤霉素類、水楊酸等等。
在桂花組織培養(yǎng)中,常用6-BA誘導(dǎo)產(chǎn)生不定芽、NAA誘導(dǎo)生根、2,4-D誘導(dǎo)愈傷組織產(chǎn)生等作為外源激素添加到相應(yīng)的培養(yǎng)基中[16]。2013年,王麗霞等以桂花葉盤、莖段為外植體,基質(zhì)用基本培養(yǎng)基MS,然后添加不同濃度的6-BA和NAA,并調(diào)節(jié)其配比,結(jié)果發(fā)現(xiàn)兩者直接分化不定芽的最佳培養(yǎng)基不同,前者為MS+1 mg·L-16-BA+0.3 mg·L-1NAA,后者則為MS+2 mg·L-16-BA+0.1 mg·L-1NAA[23]。
在植物組織培養(yǎng)基中添加蔗糖,主要作用是為植物外植體的初期生長(zhǎng)提供碳源和能源。添加蔗糖而不是葡萄糖,主要是前者可以形成穩(wěn)定的滲透壓,便于植物細(xì)胞的吸收,同時(shí)也可以減少微生物的污染,因?yàn)槠咸烟鞘俏⑸镒钸m合的碳源。關(guān)于在桂花培養(yǎng)基中蔗糖的濃度常選用3%,主要是因?yàn)槿粽崽堑臐舛冗^(guò)高或低都會(huì)造成培養(yǎng)基的滲透壓改變,從而不利于外植體的生長(zhǎng)。