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    HPLC法同時測定不同產(chǎn)地龍膽酒炙前后3種環(huán)烯醚萜苷

    2019-06-03 08:05:14孫建之徐士釗曹麗娟姜恒麗
    中成藥 2019年5期

    呂 新,孫建之,徐士釗,才 謙?,曹麗娟,姜恒麗

    (1.遼寧中醫(yī)藥大學藥學院,遼寧 大連 116600;2.盛實百草藥業(yè)有限公司,天津 300301)

    龍膽為龍膽科植物條葉龍膽Gentiana manshuricaKitag.、龍膽Gentiana scabraBge.、三花龍膽Gentiana trifloraPall.或堅龍膽Gentiana rigescensFranch.的干燥根及根莖。前3種習稱龍膽,后 1種習稱堅龍膽[1]。龍膽的生長范圍廣泛,遍布于黑龍江、吉林、遼寧、內蒙古、浙江、江蘇、廣東、云南、新疆等地。其主要成分為環(huán)烯醚萜苷類,以含有量較高的龍膽苦苷、獐牙菜苦苷和獐芽菜苷為代表[2-7]。歷史上記載龍膽的炮制方法有很多,如酒龍膽、龍膽炭、膽汁制龍膽、蜜龍膽、姜龍膽等[8-10],目前廣泛應用的是生龍膽和酒龍膽。藥材經(jīng)過酒制后,發(fā)生了物理和化學變化,會導致藥性緩和或改變[11-13]。傳統(tǒng)理論認為酒炙以熱制寒,可緩和生龍膽苦寒之性及引藥上行[14]。采用HPLC 法對22 個不同產(chǎn)地的生龍膽和對應的自制酒龍膽中3種成分進行含有量測定,并比較酒炙前后含有量差異。

    1 儀器與材料

    1.1 儀器 高效液相色譜儀Angilent1100、SPD-l0A 紫外檢測器(美國安捷倫公司);GTSONICP13 型超聲波清洗器(江蘇蘇州江東精密儀器有限公司);CP225D 型電子天平(十萬分之一,北京賽多利斯儀器系統(tǒng)有限公司)。

    1.2 材料 龍膽飲片收集于不同產(chǎn)地,見表1,由遼寧中醫(yī)藥大學鑒定教研室李峰教授進行鑒定為正品;酒龍膽為自制(方法參考2015年版 《中國藥典》Ⅰ附錄ⅡD 酒炙法)。黃酒(浙江塔牌紹興酒有限公司,產(chǎn)品標準號GB/T17946)。龍膽苦苷、獐牙菜苦苷和獐芽菜苷對照品均購自江蘇永健醫(yī)藥科技有限公司,含有量均≥98%;甲醇(色譜級,天津市大茂化學試劑廠);純凈水(杭州娃哈哈集團有限公司)。

    2 方法與結果

    2.1 吸收波長確定 將藥材提取液進行紫外全波長掃描,龍膽苦苷在270 nm 處有明顯吸收峰,而獐牙菜苦苷和獐芽菜苷較差;在240 nm 處3種成分都有明顯吸收,故檢測波長為240 nm。

    2.2 色譜條件 Welchrom C18柱(4.6 nm×250 mm,5 μm);流動相甲醇(A)-水(B),梯度洗脫(0~25 min,8%~45%A;25~35 min,45%~48%A;35~45 min,48%~65%A;45~50 min,65%~90%A);檢測波長240 nm;體積流量1.0 mL/min;柱溫 25 ℃;進樣量 20 μL。

    2.3 對照品溶液制備 精密稱取適量的龍膽苦苷、獐牙菜苦苷和獐芽菜苷對照品,放置在10 mL量瓶中并加甲醇至刻度處,制得3種成分混合對照品溶液。質量濃度分別為 2、0.2、16 μg/mL。

    2.4 供試品溶液制備 將22 批不同產(chǎn)地的生、酒龍膽粉末過60 目篩,分別取0.5 g,精密稱定,加入甲醇 20 mL,記錄質量,放入超聲儀器中,30 min后放冷再稱定質量,用甲醇補足減失質量,過濾定容至 25 mL 量瓶中,濾液經(jīng) 0.45 μm 微孔濾膜過濾,即得,避光,置于冰箱中4 ℃?zhèn)溆谩?/p>

    2.5 方法學考察

    2.5.1 系統(tǒng)適用性試驗 取遼寧清原生、酒龍膽制備的供試品溶液和混合對照品溶液,在 “2.2”項色譜條件下進樣測定,見圖1。龍膽苦苷、獐牙菜苦苷和獐芽菜苷的色譜峰與相鄰色譜峰的分離度均符合要求,與其他組分完全分離。

    圖1 各成分HPLC 色譜圖Fig.1 HPLC chromatograms of various constituents

    2.5.2 線性關系考察 取龍膽苦苷標準品20.00 mg,且精密稱定于10 mL 量瓶中,加甲醇至刻度線處制成2.0 mg/mL 對照品貯備液。精密吸取龍膽苦苷對照品貯備液加甲醇制成質量濃度分別為 0.062 5、0.125、0.25、0.5、1.0、2.0 mg/mL的溶液,搖勻。質量濃度從低到高分別精密吸取20 μL,在 “2.2”項色譜條件下進樣,以化合物進樣量為橫坐標(X),色譜峰面積為縱坐標(Y),進行線性回歸,得回歸方程為Y=930.39X-127.68(r= 0.999 5),表明龍膽苦苷在 1.25~40 μg范圍內線性關系良好。

    另稱取獐牙菜苦苷標準品12.5 mg,且精密稱定于 25 mL 量瓶中,加甲醇至刻度線處制成500 μg/mL的對照品貯備液。分別精密吸取獐牙菜苦苷對照品貯備液加甲醇制成質量濃度分別為12.5、25、50、100、150、200 μg/mL 的溶液,搖勻。質量濃度從低到高分別精密吸取 20 μL,在“2.2”項色譜條件下進樣,以化合物進樣量為橫坐標(X),色譜峰面積為縱坐標(Y),進行線性回歸,得回歸方程為Y= 1 391.1X-121.48(r=0.999 2),表明獐牙菜苦苷在0.25~4 μg 范圍內線性關系良好。

    另稱取獐芽菜苷標準品1.60 mg,且精密稱定于100 mL 量瓶中,加甲醇至刻度線處制成16 μg/mL的對照品貯備液。精密吸取獐芽菜苷對照品貯備液加甲醇制成質量濃度分別為0.5、1、2、4、8、16 μg/mL 的溶液,搖勻。質量濃度從低到高分別精密吸取20 μL,在 “2.2”項色譜條件下進樣,以化合物進樣量為橫坐標(X),色譜峰面積為縱坐標(Y),進行線性回歸,得回歸方程為Y=1.903 5X-1.322 4(r=0.999 8),表明獐芽菜苷在10~320 ng 范圍內線性關系良好。

    2.5.3 精密度試驗 取遼寧清原生龍膽粉末,按“2.4”項下方法制備供試品溶液,在 “2.2”項色譜條件下連續(xù)進樣5 次且每次20 μL,龍膽苦苷、獐牙菜苦苷、獐芽菜苷峰面積積分值的RSD 分別為 0.81%、0.52%、0.77%,表明該儀器精密度良好。

    2.5.4 穩(wěn)定性試驗 取遼寧清原生龍膽粉末,按“2.4”項下方法制備供試品溶液,在 “2.2”項色譜條件下,分別于 0、4、8、12、24、48 h 進樣分析并計算其3種成分含有量。結果龍膽苦苷、獐牙菜苦苷、獐芽菜苷的RSD 分別為1.07%、0.68%、1.27%,表明供試品溶液在48 h 內穩(wěn)定性良好。

    2.5.5 重復性試驗 取遼寧清原生龍膽粉末5 份,按 “2.4”項下方法制備供試品溶液,在 “2.2”項色譜條件下進樣并計算5 份供試品中龍膽苦苷、獐牙菜苦苷、獐芽菜苷含有量。測得平均值分別為23.58、1.86、0.49 mg/g,RSD 分 別 為 0.66% 、0.92%、0.84%,表明該方法重復性良好。

    2.5.6 加樣回收率試驗 取已知含有量的龍膽樣品粉末 0.5 g,精密稱定,共 9 份,每 3 份加入高、中、低3 個質量濃度梯度對照品溶液,其加入對照品量與供試品中量的比例分別為1.5 ∶1、1 ∶1、0.5 ∶1,按 “2.4”項下方法制備供試品溶液,在“2.2”項色譜條件下分別進樣并計算。得龍膽苦苷、獐牙菜苦苷、獐芽菜苷平均加樣回收率分別為100.26%、99.84%、100.17%,RSD 分 別 為1.32% 、1.59% 、1.16% 。

    2.6 樣品含有量測定 將不同產(chǎn)地生品和炮制品龍膽樣品溶液,在 “2.2”項色譜條件下測定,并計算,結果見表1。

    3 討論

    本實驗建立HPLC 法同時測定龍膽飲片中3種成分的含有量,分別考察了乙腈-水和甲醇-水2種流動相體系。結果表明乙腈-水溶液作流動相時,3種成分不能很好分離,存在較大雜峰干擾獐芽菜苷,而甲醇-水溶液分離較好,也無雜峰干擾。

    實驗中收集了22 個產(chǎn)地的商品生龍膽飲片,因品種和產(chǎn)地有所不同,可能在各樣品之間化學成分的種類和含有量有一些差異,故本實驗選擇了龍膽苦苷、獐牙菜苦苷、獐芽菜苷作為指標性成分進行含有量測定并比較[15-18]。結果表明,不同產(chǎn)地樣品中3種成分的含有量存在明顯差別,遼寧新賓的龍膽苦苷含有量高達65.875 mg/g,而西藏拉薩此成分含有量最低,為4.217 mg/g;遼寧新賓的獐牙菜苦苷含有量也高于其他產(chǎn)地,為3.170 mg/g,而寧夏銀川在該成分的含有量則為0.285 mg/g;遼寧清原的獐芽菜苷最高,為 0.484 mg/g,西藏拉薩該成分的含有量最低,為0.069 mg/g。

    通過HPLC 法測定不同產(chǎn)地的商品生龍膽和相應酒炙飲片中3種成分的含有量,結果表明,大多數(shù)產(chǎn)地龍膽酒炙后龍膽苦苷含有量增加,但酒炙后獐牙菜苦苷和獐芽菜苷含有量變化不一致,一些產(chǎn)地的飲片經(jīng)過黃酒炮制后含有量上升,還有一些產(chǎn)地含有量下降。推測龍膽酒炙后龍膽苦苷含有量增加的原因可能是經(jīng)炮制后發(fā)生了一系列的化學變化,使該成分含有量增加,也可能是酒炙促進了其溶解;而龍膽酒炙后其他2種成分含有量變化不一的原因尚無法做出科學解釋。這3種成分酒炙后含有量發(fā)生改變的原因都有待深入研究。

    表1 各成分含有量測定結果(mg/g, n=3)Tab.1 Results of content determination of various constituents(mg/g, n=3)

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