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    羅漢果環(huán)阿屯醇合酶的同源建模、分子對(duì)接及催化環(huán)化的機(jī)理推測(cè)

    2019-03-15 05:52:12喬晶崔晟榕石宏武羅祖良馬小軍
    生物技術(shù)通報(bào) 2019年2期
    關(guān)鍵詞:鯊烯殘基同源

    喬晶 崔晟榕 石宏武 羅祖良 馬小軍

    (中國醫(yī)學(xué)科學(xué)院 北京協(xié)和醫(yī)學(xué)院藥用植物研究所,北京 100193)

    環(huán)阿屯醇(Cycloartenol)廣泛分布于植物中,是重要的藥效物質(zhì),近年來研究發(fā)現(xiàn)它具有明顯的抗炎[1-2]、抗氧化[3]、抗腫瘤[4-5]、調(diào)節(jié)膽固醇[6]等藥理活性。此外,它還是重要的藥物中間體和先導(dǎo)化合物,是植物甾醇、甾體皂苷等化合物半化學(xué)合成及生物合成的關(guān)鍵底物。環(huán)阿屯醇合酶(Cycloartenol Synthase,簡(jiǎn)稱CAS)作為合成環(huán)阿屯醇的關(guān)鍵調(diào)控基因,也是很多植物甾醇及甾體類物質(zhì)生物合成途徑中的重要環(huán)化酶[7]。目前,已有20多種植物的CAS基因被分離和克隆出來,如擬南芥[8](Arabidopsis thaliana)、盾葉薯蕷[9](Dioscorea zingiberensis)、光果甘草[10](Glycyrrhiza glabra)、黃芪[11](Astragalus membranaceus)、 丹 參[12](Salvia miltiorrhiza)和刺五加[13](Eleutherococcus senticosus)等,并通過異源表達(dá)進(jìn)行功能驗(yàn)證。在生物體內(nèi),三萜類物質(zhì)和植物甾醇均通過異戊二烯途徑合成,且都源于同一前體物質(zhì)—2,3-氧化鯊烯[14]。Liang等[15]研究表明,CAS可與β-AS競(jìng)爭(zhēng)2,3-氧化鯊烯,對(duì)CAS基因的表達(dá)進(jìn)行抑制后,減少了植物甾醇合成,使2,3-氧化鯊烯更多的進(jìn)入到三萜皂苷代謝支流,從而間接提高了三萜皂苷的產(chǎn)量,說明CAS不僅是植物甾醇合成過程中的關(guān)鍵酶,同時(shí)又是三萜物質(zhì)合成的重要調(diào)控位點(diǎn)。雖然目前已在CAS基因的分離、純化、克隆及表達(dá)分析上取得了一定的進(jìn)展,但是對(duì)于CAS的酶結(jié)構(gòu)以及催化2,3-氧化鯊烯發(fā)生環(huán)化的機(jī)理尚不清楚。因此,該酶性質(zhì)及催化機(jī)理的研究對(duì)次生代謝調(diào)控具有重要意義。

    CAS屬于氧化鯊烯環(huán)化酶(OSCs)大家族的成員之一,OSC催化的環(huán)化作用是以2,3-氧化鯊烯為底物經(jīng)過一系列的質(zhì)子化、環(huán)化、重排和去質(zhì)子化作用完成的。然而,由于OSCs分子結(jié)構(gòu)較大且屬于膜蛋白,晶體結(jié)構(gòu)獲得困難[16],目前,只有來自人、牛和酵母的羊毛甾醇合酶被純化獲得晶體結(jié)構(gòu),通過三維晶體結(jié)構(gòu)研究催化機(jī)理及活性位點(diǎn)的工作無法開展[17],從而阻礙了酶進(jìn)一步的改進(jìn)及應(yīng)用。同源模建是根據(jù)模板蛋白,預(yù)測(cè)目標(biāo)蛋白的三維結(jié)構(gòu)。對(duì)于尚未或者無法獲得實(shí)驗(yàn)晶體結(jié)構(gòu)的蛋白質(zhì),同源模建無疑是一種重要而有效的輔助手段。近年來,越來越多的研究者以已解析的晶體結(jié)構(gòu)為模板,結(jié)合生物化學(xué)、有機(jī)化學(xué)和計(jì)算機(jī)輔助設(shè)計(jì)等開展OSCs催化活性的研究,以深入理解OSCs的催化環(huán)化/重排反應(yīng)機(jī)理,產(chǎn)物多樣性以及活性功能氨基酸殘基。

    綜上所述,CAS反應(yīng)機(jī)制的研究是近年來一個(gè)極富挑戰(zhàn)性的難點(diǎn)和熱點(diǎn),揭示其催化的活性位點(diǎn)及環(huán)化的機(jī)制,具有重要的理論意義。同時(shí)該酶能競(jìng)爭(zhēng)三萜合成的共同底物2,3-氧化鯊烯,實(shí)現(xiàn)對(duì)次級(jí)代謝支路的調(diào)控,具有十分廣闊的應(yīng)用前景。本研究以羅漢果CAS為對(duì)象開展研究,通過分析序列,采用同源建模及分子模擬的軟件模擬預(yù)測(cè)CAS三維結(jié)構(gòu)和活性中心,以及其催化底物2,3-氧化鯊烯的環(huán)化的機(jī)制,旨為酶的改造及其代謝調(diào)控奠定基礎(chǔ)。

    1 材料與方法

    1.1 材料

    1.1.1 同源建模序列來源及模板選擇 CAS氨基酸序列為本實(shí)驗(yàn)室前期研究所獲得[18],已登錄于NCBI數(shù)據(jù)庫,基因登錄號(hào)為HQ128566?;贑AS氨基酸序列,利用Blast程序在蛋白質(zhì)結(jié)構(gòu)數(shù)據(jù)庫(Protein data bank,PDB)中搜尋與其氨基酸序列一致性大于或等于30%的X射線衍射晶體結(jié)構(gòu)用于三維結(jié)構(gòu)的建模。

    1.1.2 受體結(jié)構(gòu)準(zhǔn)備 上文同源建模得到的CAS酶結(jié)構(gòu)用于下面的分子對(duì)接。初始結(jié)構(gòu)用AutoDockTools 1.5.6進(jìn)行處理,保存蛋白原有電荷,并生成pdbqt文件用于對(duì)接。

    1.1.3 配體結(jié)構(gòu)準(zhǔn)備 小分子配體2,3-氧化鯊烯以及碳正離子中間體的三維結(jié)構(gòu)如圖1所示。使用MOPAC程序優(yōu)化分子結(jié)構(gòu)并計(jì)算AM1原子電荷用于后續(xù)的分子對(duì)接,然后用AutoDock Tools 1.5.6處理配體結(jié)構(gòu),處理后生成相應(yīng)的pdbqt文件用于對(duì)接。

    1.2 方法

    1.2.1 同源建模 根據(jù)獲取的模板蛋白三維結(jié)構(gòu)文件以及序列比對(duì)文件,根據(jù)序列的相似性推測(cè)結(jié)構(gòu)的相似性,使用Modeller 9.17對(duì)CAS進(jìn)行同源模建,從而獲取目標(biāo)蛋白CAS的三維結(jié)構(gòu)。所有計(jì)算均在MolDesigner分子模擬平臺(tái)(MolDesigner Molecular Simulation Platform)上完成。

    圖1 2,3-氧化鯊烯以及碳正離子中間體的分子結(jié)構(gòu)

    1.2.2 模型評(píng)價(jià) 本文分別用PROCHECK和Verify-3D程序?qū)?yōu)化后模型蛋白結(jié)構(gòu)進(jìn)行評(píng)價(jià)。Ramachandran plot用于闡述蛋白質(zhì)或肽立體結(jié)構(gòu)中肽鍵內(nèi)α碳原子和羰基碳原子間的鍵的旋轉(zhuǎn)度對(duì)α碳原子和氮原子間鍵的旋轉(zhuǎn)度,主要用來指明蛋白質(zhì)或肽類中氨基酸殘基的允許和不允許的構(gòu)象。Ramachandran plot主要分為三個(gè)區(qū)域,允許區(qū)(紅色區(qū)域),最大允許區(qū)(黃色區(qū)域),不允許區(qū)(空白區(qū)域)。

    1.2.3 分子對(duì)接 分子對(duì)接采用AutoDock 4.2.6程序?qū)崿F(xiàn)。首先確定配體對(duì)接位點(diǎn),對(duì)接口袋中心點(diǎn)坐標(biāo)為(26.264,70.645,14.631),網(wǎng)格數(shù)目分別為40×60×50,格點(diǎn)間距為 0.375 埃(?ngstr?m,符號(hào)?),對(duì)接口袋區(qū)域的格點(diǎn)能量采用AutoGrid程序進(jìn)行計(jì)算。對(duì)接時(shí),構(gòu)象搜索策略采用拉馬克遺傳 算 法(Lamarckian Genetic Algorithm,LGA), 關(guān)鍵參數(shù)如下:對(duì)接次數(shù)(Number of GA Runs)設(shè)置為100,種群數(shù)目(Population Size)設(shè)置為150,最大迭代次數(shù)(Maximum Number of evaluations)設(shè)置為25 000 000,其余參數(shù)采用默認(rèn)值。所有計(jì)算均在MolDesigner分子模擬平臺(tái)(MolDesigner Molecular Simulation Platform)上完成。

    2 結(jié)果

    2.1 同源建模

    2.1.1 模板選擇 通過在PDB數(shù)據(jù)庫中搜尋發(fā)現(xiàn),在下載的OSCs氨基酸序列中,僅人的羊毛甾醇合酶1W6J和1W6K能獲得一致性大于或等于30% 的晶體模板,也僅這2個(gè)蛋白可以進(jìn)行同源建模。圖2為CAS和2個(gè)模板的序列比對(duì)結(jié)果,模板覆蓋率為86%,序列一致性為49%。

    圖2 CAS與模板1W6J、1W6K的序列比對(duì)

    2.1.2 模型評(píng)價(jià) CAS模型的Ramachandran plot顯示模型中的氨基酸殘基如圖3所示,90.8%的氨基酸位于允許區(qū),8.7%的氨基酸殘基位于最大允許區(qū)域,只有0.5%的氨基酸殘基位于扭轉(zhuǎn)角的禁止區(qū)域。模型中99.5%的蛋白質(zhì)殘基的二面角都在合理的范圍之內(nèi),符合立體化學(xué)能量規(guī)則。

    圖3 模建CAS酶的Ramachandran plot

    Verify-3D是UCLA的David Eisenberg教授開發(fā)的一種基于“穿線”法的模型評(píng)價(jià)程序。該方法采用3D-1D的打分函數(shù)來檢測(cè)所構(gòu)建模型與自身氨基酸序列的匹配度關(guān)系。80%殘基的Verify score大于0.2即認(rèn)為模型合理。Verify-3D圖顯示了序列中每個(gè)氨基酸的打分。從圖4可知,CAS結(jié)構(gòu)中的92.34%氨基酸殘基在Verify-3D中Verify score平均值大于0.2,模型通過了Verify 3D檢測(cè),表明所建模型質(zhì)量較好。

    2.1.3 酶結(jié)構(gòu)分析 為進(jìn)一步討論建模所得模型的合理性和分析CAS的催化活性中心結(jié)構(gòu),本文對(duì)1W6J晶體蛋白結(jié)構(gòu)與CAS模型進(jìn)行了疊合對(duì)比。通過CAS模型與1W6J晶體結(jié)構(gòu)的疊合對(duì)比分析可得(圖5),CAS酶模型與晶體蛋白間的RMSD為0.246 ?,CAS能夠與晶體模板很好重合。晶體模板上的催化中心主要由Asp455、Cys456、Cys533、Tyr503、His232關(guān)鍵殘基構(gòu)成。通過疊合對(duì)比,CAS酶上的Asp491、Cys492、Cys570、Tyr540、His265殘 基 與晶體模板的關(guān)鍵殘基相互重合。

    圖4 CAS的Verify-3D圖

    2.2 分子對(duì)接結(jié)果

    對(duì)接結(jié)果表明2,3-氧化鯊烯分子能夠結(jié)合到CAS酶的活性空腔,結(jié)合自由能為-11.15 kcal/mol。為進(jìn)一步探索CAS酶對(duì)2,3-氧化鯊烯的催化機(jī)制,我們對(duì)CAS酶和2,3-氧化鯊烯的相互作用進(jìn)行了分析。如圖6-A、C所示,2,3-氧化鯊烯上的環(huán)氧與CAS酶的Asp491羧酸氫原子可形成一個(gè)氫鍵,鍵長為1.8 ?,該氫鍵引發(fā)后續(xù)的環(huán)化反應(yīng)。2,3-氧化鯊烯的疏水鏈與CAS酶結(jié)合空腔中的His265、Pro375、Val376、Phe480、Phe734殘基間可形成疏水作用,疏水作用可進(jìn)一步加強(qiáng)配體與CAS的結(jié)合,有利于反應(yīng)物2,3-氧化鯊烯穩(wěn)定結(jié)合在酶的活性空腔中。

    在CAS酶催化2,3-氧化鯊烯過程中,C27和C11間會(huì)形成單鍵,進(jìn)而生成產(chǎn)物環(huán)阿屯醇。據(jù)此我們推測(cè),原本環(huán)化后的C27碳正離子中間體,經(jīng)過碳正離子遷移后形成C11位的碳正離子中間體(如圖6-B所示),而C27位上的氫被結(jié)合位點(diǎn)附近的殘基奪走,進(jìn)而C27、C11形成單鍵。在2,3-氧化鯊烯與CAS酶催化位點(diǎn)的對(duì)接結(jié)構(gòu)中,2,3-氧化鯊烯能夠進(jìn)入到催化位點(diǎn),且Tyr540的羥基氧原子與C27位上的氫原子間距離為3.1 ?(如圖6-C紅色虛線所示),表明Tyr540可能具有接收C27上的氫質(zhì)子進(jìn)而催化C27、C11成鍵的作用。

    圖5 模建CAS酶與晶體蛋白1W6J的疊合圖示

    圖6 小分子與CAS酶的相互作用分析

    碳正離子中間體與CAS酶的結(jié)合構(gòu)象中,中間體C27原子(如圖6-D所示,C27顯示為藍(lán)紫色球型)上的一個(gè)氫原子與Tyr540的羥基氧原子的距離為2.5 ?(如圖6-D紅色虛線所示),該距離比反應(yīng)物體系中的距離明顯減小,表明去質(zhì)子化的Tyr540羥基氧原子可能奪取C27上的氫原子,使得C27與C11間形成單鍵生成產(chǎn)物環(huán)阿屯醇。

    另外,我們進(jìn)一步發(fā)現(xiàn)CAS酶活性空腔內(nèi)的Tyr540殘基上的羥基氫原子能夠與His265的氮原子形成氫鍵。說明在催化過程中,Tyr540羥基上的氫原子可能轉(zhuǎn)移到His265的氮原子上,去質(zhì)子化的Tyr540作為氫質(zhì)子受體接受2,3-氧化鯊烯甲基上的氫原子,從而導(dǎo)致2,3-氧化鯊烯被催化為環(huán)阿屯醇。

    2.3 催化機(jī)制推測(cè)

    根據(jù)上述對(duì)接結(jié)果,本文推測(cè)CAS酶對(duì)2,3-氧化鯊烯的催化機(jī)理主要分三步完成(圖7):(1)Cys492和Cys570殘基向Asp491提供氫質(zhì)子,2,3-氧化鯊烯上的環(huán)氧基奪取Asp491上的氫質(zhì)子后斷裂,由于碳正離子-π電子作用(cationic-π interaction)引起四個(gè)環(huán)的環(huán)化反應(yīng)形成C27正離子中間體;(2)C27正離子中間體經(jīng)過一系列碳正離子重排,形成C11正離子中間體;(3)Tyr540殘基上的羥基氫原子能夠與His265的氮原子形成氫鍵,被去質(zhì)子化的Tyr540奪取C27上的氫質(zhì)子,進(jìn)而C27與C11原子形成單鍵生成環(huán)阿屯醇。

    3 討論

    研究蛋白質(zhì)的結(jié)構(gòu)是了解蛋白質(zhì)的生物學(xué)功能的重要途徑。氨基酸序列對(duì)蛋白質(zhì)構(gòu)象起著決定性的作用,很多同源性的氨基酸序列就可以決定同一蛋白構(gòu)象,這是蛋白質(zhì)三維結(jié)構(gòu)預(yù)測(cè)的理論基礎(chǔ)[19]。目前研究蛋白質(zhì)空間結(jié)構(gòu)方法包括X射線晶體衍射技術(shù)和核磁共振技術(shù),均屬于生物學(xué)實(shí)驗(yàn)方法,它們能夠準(zhǔn)確測(cè)定蛋白三維結(jié)構(gòu),但同時(shí)也存在許多技術(shù)難點(diǎn),尤其是膜蛋白晶體結(jié)構(gòu)難以獲得,使得OSCs蛋白方面的研究進(jìn)展十分緩慢[20]。為了加快新蛋白質(zhì)的結(jié)構(gòu)測(cè)定及其與化合物的相互作用方式,當(dāng)前通過PDB蛋白結(jié)構(gòu)信息庫中搜索已知結(jié)構(gòu)的同源蛋白質(zhì)作為模板,利用同源建模軟件對(duì)新蛋白進(jìn)行結(jié)構(gòu)建模是最為常用且有效的一種蛋白質(zhì)結(jié)構(gòu)預(yù)測(cè)方法。隨著生物信息學(xué)的快速發(fā)展及其在生物學(xué)研究中的突出作用,蛋白質(zhì)同源模建技術(shù)已經(jīng)成為一種可靠性高且被廣泛認(rèn)可的蛋白結(jié)構(gòu)預(yù)測(cè)技術(shù)。任何一對(duì)氨基酸序列長度大于80的蛋白質(zhì),如果兩者的序列同源性超過30%,則可認(rèn)為它們具有相似的三維結(jié)構(gòu),即蛋白質(zhì)的基本折疊相同[21]。本研究中所用的環(huán)阿屯醇合酶基因CAS的編碼區(qū)能夠編碼765個(gè)氨基酸,在 PDB 數(shù)據(jù)庫中搜索發(fā)現(xiàn)蛋白1W6J和1W6K與CAS的氨基酸序列同源性高達(dá)49%。因此符合蛋白同源建模的條件,可以以此二者為模板對(duì)CAS的三維結(jié)構(gòu)模型進(jìn)行預(yù)測(cè)。

    關(guān)于OSCs晶體結(jié)構(gòu)及催化機(jī)制的研究較少,Thoma等[22]首次報(bào)道了人氧化鯊烯環(huán)化酶LaS的晶體結(jié)構(gòu),發(fā)現(xiàn)Asp455、Cys456、Cys533是催化環(huán)化形成的活性位點(diǎn),而His232則是終止反應(yīng)的關(guān)鍵。Wu等[23]通過蛋白同源建模發(fā)現(xiàn),釀酒酵母ERG7的His234可與LaS His232疊合,后續(xù)通過實(shí)驗(yàn)驗(yàn)證,該位點(diǎn)為催化氧化鯊烯環(huán)化形成多種不同結(jié)構(gòu)產(chǎn)物的關(guān)鍵位點(diǎn);Ma等[24]通過對(duì)黃瓜中的Bi蛋白進(jìn)行同源建模比對(duì)分析,推測(cè)Leu146和Tyr439為形成不同環(huán)化產(chǎn)物的活性位點(diǎn);Hoshino等[17]也通過與LaS和SHC的同源建模闡述了催化β-AS形成的活性位點(diǎn)。以同源建模為基礎(chǔ),分子對(duì)接則可以找到配體小分子與蛋白受體在其活性區(qū)域相結(jié)合時(shí)能量最低的構(gòu)象,Major等[25]利用此技術(shù)分析了三萜類化合物BPP形成的機(jī)制。所以,利用同源建模、分子對(duì)接等計(jì)算機(jī)軟件模擬技術(shù)已成為相關(guān)氧化鯊烯環(huán)化酶的活性位點(diǎn)及催化機(jī)制研究的有力工具。本研究用同源建模軟件對(duì)CAS蛋白結(jié)構(gòu)與其對(duì)應(yīng)底物2,3-氧化鯊烯和相應(yīng)碳正離子中間體的相互作用模式進(jìn)行模擬,結(jié)果表明CAS酶上的Asp491、Cys492、Cys570、Tyr540、His265殘基是催化環(huán)化的關(guān)鍵氨基酸。這些研究對(duì)進(jìn)一步運(yùn)用生物實(shí)驗(yàn)手段研究其結(jié)構(gòu)和功能,為設(shè)計(jì)高活性的酶以及調(diào)控次級(jí)代謝通路有重要意義。

    隨著分子生物學(xué)研究的突飛猛進(jìn),點(diǎn)突變技術(shù)成為一項(xiàng)重要的分子生物學(xué)實(shí)驗(yàn)技術(shù)手段,在生物和醫(yī)學(xué)領(lǐng)域中的應(yīng)用非常廣泛。通過同源建模和分子對(duì)接找到影響催化作用的活性位點(diǎn)氨基酸殘基,可很好地指導(dǎo)突變研究。定點(diǎn)突變技術(shù)已廣泛地應(yīng)用于蛋白質(zhì)改造及結(jié)構(gòu)—功能關(guān)系研究中,如利用點(diǎn)飽和突變技術(shù)鑒定蛋白質(zhì)功能位點(diǎn),提高酶比活力,改善酶熱穩(wěn)定性、底物結(jié)合特異性及立體異構(gòu)特異性等多方面性質(zhì)[26]。通過定點(diǎn)突變實(shí)驗(yàn),β-AS活性位點(diǎn)氨基酸的鑒別,催化機(jī)理、骨架形成的必須結(jié)構(gòu)單位等研究已經(jīng)取得了顯著進(jìn)展,且還獲得了幾十種具有藥用潛力的目標(biāo)化合物[17]。所以下一步,通過運(yùn)用點(diǎn)突變技術(shù)對(duì)CAS關(guān)鍵活性位點(diǎn)進(jìn)行定向改造,可獲得具有巨大商業(yè)價(jià)值的目標(biāo)產(chǎn)物,同時(shí)通過改善酶活力、擴(kuò)大催化閾值可為中藥化學(xué)成分的高效合成提供新技術(shù)。

    4 結(jié)論

    本文通過同源建模和分子對(duì)接技術(shù),對(duì)CAS酶催化2,3-氧化鯊烯生成環(huán)阿屯醇的機(jī)制進(jìn)行了探討。結(jié)果表明,Asp491、Cys492、Cys570、Tyr540、His265是CAS酶的關(guān)鍵催化位點(diǎn),其中位于活性空腔頂部的Asp491、Cys492、Cys570通過質(zhì)子化2,3-氧化鯊烯上的環(huán)氧基來激活催化反應(yīng),而位于活性口袋底部的Tyr540、His265則通過對(duì)底物去質(zhì)子化形成產(chǎn)物來終止反應(yīng)。此外,活性空腔內(nèi)存在大量的疏水氨基酸,則通過疏水作用穩(wěn)定反應(yīng)物、中間體結(jié)合在活性空腔。據(jù)此推測(cè)CAS酶催化機(jī)制為:Asp491質(zhì)子化2,3-氧化鯊烯引發(fā)四個(gè)環(huán)化反應(yīng)形成C20正離子中間體,然后中間體經(jīng)過一系列的碳正離子重排形成C11正離中間體,最后通過His265與Tyr540去質(zhì)子化使得C27與C11原子間形成單鍵生成產(chǎn)物環(huán)阿屯醇。

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