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    應(yīng)用菌刺洗脫法高效分離猴頭菇單孢

    2018-12-12 03:25:26龔文兵謝純良周映君朱作華王亞惠彭源德
    食藥用菌 2018年6期
    關(guān)鍵詞:平皿單核猴頭菇

    龔文兵 謝純良 周映君 朱作華 王亞惠 彭源德

    (中國農(nóng)業(yè)科學(xué)院麻類研究所,湖南 長沙 410205)

    猴頭菇[Hericium erinaceus(Bull.) Pers],是一種極為重要的食藥用菌,因外形酷似猴頭而得名。猴頭菇進(jìn)入人們的飲食由來已久,《臨海水土異物志》中稱:“民皆好啖猴頭羹,雖五肉臛不能及之。”猴頭菇栽培起源于中國,是我國目前常規(guī)栽培的食藥用菌之一[1]。

    自1994年Kawagishi等[2]從猴頭菇菌絲體中發(fā)現(xiàn)一類鳥巢烷型二萜類化合物(猴頭菌素),并報道該類化合物具有促進(jìn)神經(jīng)生長因子合成活性以來,猴頭菇中的二萜類化合物受到了廣泛的關(guān)注。目前已經(jīng)從猴頭菇中分離到 25種鳥巢烷型二萜類化合物[3-4]。此外,猴頭菇中還含有其他類型的活性成分,包括多糖、甾體化合物、生物堿類化合物等,具有保肝護(hù)胃、抗癌、抗氧化等多種功效[4]。多年來圍繞猴頭菇的研究報道主要集中于活性物質(zhì)的提取與鑒定[5],而對其遺傳育種的研究嚴(yán)重滯后,導(dǎo)致新品種選育進(jìn)程緩慢,嚴(yán)重影響了猴頭菇產(chǎn)業(yè)的健康發(fā)展。

    優(yōu)良的菌種是食藥用菌產(chǎn)業(yè)可持續(xù)發(fā)展的基礎(chǔ),雜交育種是食藥用菌品種選育中應(yīng)用最廣泛、成效最顯著的育種方法之一[6]。猴頭菇是異宗結(jié)合擔(dān)子菌,減數(shù)分裂后產(chǎn)生有性擔(dān)孢子[7-8]??梢岳脝捂呔昱鋵M(jìn)行猴頭菇雜交育種,獲得性狀優(yōu)良的新品種。雜交育種中最關(guān)鍵的環(huán)節(jié)是通過單孢分離獲得單核體。與香菇等傘菌一樣,在猴頭菇中通常采用子實體懸掛法分離單孢[7,9]。其方法是將整個子實體置于無菌的孢子收集器中彈射孢子1天左右,制備孢子懸浮液,連續(xù)稀釋后接種于培養(yǎng)基,再獲得單孢菌株。由于猴頭菇子實體表面不光滑,擔(dān)孢子著生于裸露的菌刺上,采用子實體懸掛法分離單孢污染率較高,并且操作時間長。本試驗建立一種簡單快速的單孢分離方法,旨在推動猴頭菇的遺傳育種研究。

    1 試驗材料

    1.1 供試菌株

    供試菌株為猴頭菇雜交子HeC9,由‘常山猴頭菇’和‘猴頭911’的單核體菌株配對獲得?!I胶镱^’和‘猴頭 911’菌株由四川省農(nóng)業(yè)科學(xué)院土壤肥料研究所王波老師提供。

    1.2 供試培養(yǎng)基

    MEA培養(yǎng)基:麥芽浸粉 30.0 g,大豆蛋白胨3.0 g,瓊脂15.0 g,水1 000 mL。

    100 mg/mL氨芐青霉素配置:稱取5 g氨芐青霉素置于50 mL 離心管中,加入40 mL無菌水,充分混勻后定容至50 mL。采用0.22 μm 濾膜過濾,滅菌,分裝后置于-20 ℃下保存?zhèn)溆谩?/p>

    2 試驗方法

    2.1 孢子采集

    參照于海龍等[10]的方法進(jìn)行猴頭菇栽培,子實體八成熟時采收。在超凈工作臺上,用75%的酒精對猴頭菇子實體進(jìn)行消毒。分兩種方法收集單孢,一為子實體懸掛彈射法。選擇9個猴頭菇子實體進(jìn)行單孢分離,用滅菌的500 mL 燒杯作為孢子收集器收集單孢,孢子彈射時間為24 h。另一為菌刺洗脫法。將2 μL 100 mg/mL氨芐青霉素加入含有2 mL無菌水的離心管中,用無菌的鑷子挑取1個猴頭菇子實體上的9根菌刺,放入上述氨芐青霉素溶液中清洗數(shù)次,再將清洗后的菌刺放入含有2 mL 無菌水的離心管中搖晃數(shù)次,即制成猴頭菇孢子懸浮液(菌刺洗脫法)。每根菌刺制備1管孢子懸浮液。

    2.2 單孢分離

    采用連續(xù)稀釋法進(jìn)行猴頭菇孢子的分離。通過連續(xù)稀釋孢子液,使孢子分散到較低濃度,再取200 μL稀釋后的猴頭菇孢子懸浮液,用玻棒均勻涂布于含有氨芐青霉素的MEA培養(yǎng)基中(20 mL培養(yǎng)基中加入20 μL 100 mg/mL氨芐青霉素),然后將培養(yǎng)皿置于恒溫箱內(nèi),25 ℃避光培養(yǎng)。

    2.3 單核菌絲鑒定

    待孢子萌發(fā)至肉眼可見,即刻挑取單菌落,置于新培養(yǎng)基中繼續(xù)培養(yǎng)。待培養(yǎng)皿中的菌落長到1~2 cm時,置于顯微鏡下觀察,沒有鎖狀聯(lián)合即是由擔(dān)孢子萌發(fā)而生成的單核菌絲。

    采用子實體懸掛彈射法分離單孢作為對照,選取整個猴頭菇子實體制備孢子懸浮液,再用無菌水連續(xù)稀釋進(jìn)行單孢分離[9]。

    3 結(jié)果與分析

    3.1 兩種單孢分離方法的比較

    試驗結(jié)果表明,子實體懸掛彈射法中,2個子實體在孢子收集器中感染真菌,棄用;4個子實體獲得了孢子懸浮液,經(jīng)連續(xù)稀釋后涂布于MEA培養(yǎng)基,所有的平皿全部感染細(xì)菌;僅有3個猴頭菇子實體獲得了單菌落,成功率為33.3%。在菌刺洗脫法中,隨機(jī)選擇1個猴頭菇子實體上的9根菌刺制備了9組孢子懸浮液,經(jīng)過稀釋、涂平皿后,有1組孢子懸浮液平皿感染細(xì)菌,其余8組獲得了單菌落,成功率為88.9%。

    單孢分離能否成功,與操作難易程度、操作者的分離技術(shù)等相關(guān)。新鮮猴頭菇從開放的環(huán)境中采收,子實體上的雜菌較多,尤其是細(xì)菌。子實體懸掛彈射法中,雖然用75%的酒精對猴頭菇子實體進(jìn)行了消毒,但由于子實體較大,表面不光滑,菌刺較多,難以消毒徹底。而菌刺洗脫法只需對挑取的單根菌刺進(jìn)行抑菌消毒處理,消毒效果要好得多,這是菌刺洗脫法能夠顯著降低污染率的主要原因。此外,與子實體懸掛彈射法比較,菌刺洗脫法無需專門的孢子收集器,直接用無菌水將猴頭菇菌刺上的孢子洗下來,操作簡單,也不用等待孢子彈射,縮短了單孢分離的時間。

    3.2 稀釋濃度對挑取單菌落的影響

    獲得孢子懸浮液后,采用連續(xù)稀釋法進(jìn)行猴頭菇孢子的分離。菌刺洗脫法中,稀釋了3個濃度梯度(10-1、10-2、10-3)。在子實體懸掛彈射法中,稀釋了 6 個濃度梯度(10-1、10-2、10-3、10-4、10-5、10-6)。每種濃度孢子懸浮液涂布5個含有MEA培養(yǎng)基的平皿。涂皿結(jié)果(表 1)表明,菌刺洗脫法中,10-1濃度的孢子懸浮液所涂平皿,萌發(fā)的單菌落很密集,單個平皿中的單菌落數(shù)大于等于100個,難以挑取單菌落到新的培養(yǎng)基上。10-2濃度的孢子懸浮液,孢子萌發(fā)的單菌落數(shù)量比較適中,單個平皿的單菌落數(shù)多介于 10~50個之間,易于挑取單菌落。10-3濃度的孢子懸浮液所涂平皿單菌落偏少,單個平皿單菌落不足10個。子實體懸掛彈射法中,4個稀釋濃度(10-1、10-2、10-3、10-4)的孢子懸浮液所涂平皿上單菌落密集,難以挑取單菌落。10-5濃度的孢子懸浮液所涂平皿,孢子萌發(fā)的單菌落數(shù)量比較適中。10-6濃度的孢子懸浮液所涂的平皿上單菌落較少(表1)。這可能是由于猴頭菇單根菌刺上的孢子數(shù)量遠(yuǎn)遠(yuǎn)低于其整個子實體上的孢子數(shù)量。孢子懸浮液的稀釋倍數(shù)影響后續(xù)挑取單菌落的難易程度??梢栽谕棵笄埃℃咦討腋∫哼M(jìn)行鏡檢,視野中有3~5個孢子的懸浮液濃度較適宜。

    表1 稀釋濃度與單菌落數(shù)量的關(guān)系

    3.3 單核菌絲鏡檢結(jié)果

    利用菌刺洗脫法,總共獲得了240個單菌落。對這些萌發(fā)的菌株進(jìn)行顯微鏡觀察鑒定,若無鎖狀聯(lián)合的可初步認(rèn)為是單孢萌發(fā)而生成的單核菌絲,有鎖狀聯(lián)合的為雙核菌絲。結(jié)果顯示,單核菌絲較雙核菌絲細(xì),挑取的240個菌株中,222個是單核菌株(圖1),其余18個菌株是具有鎖狀聯(lián)合的雙核菌株(圖2),采用菌刺洗脫法分離獲得的單核菌株比例為92.5%。萌發(fā)的雙核菌絲可能是由于挑取的菌落中包含了可以配對的單孢。

    圖1 猴頭菇單核菌絲

    圖2 猴頭菇雙核菌絲

    4 結(jié) 論

    由于猴頭菇子實體表面布滿菌刺,而擔(dān)孢子著生于裸露的菌刺上,采用傳統(tǒng)的子實體懸掛法分離單孢成功率不高。本研究建立了一種簡單易行的猴頭菇單孢分離方法,對推動猴頭菇遺傳育種研究具有積極意義。與子實體懸掛彈射法相比,最大的不同在于本方法是利用易于消毒的猴頭菇菌刺,將菌刺上的單孢直接洗下來,非常簡單、方便,不需專門的孢子收集器。在降低污染率的同時,也縮短了單孢分離的時間,是一種切實可行的單孢分離手段。除了猴頭菇,本方法還可以推廣到其他食藥用菌品種,挑取小塊著生孢子的組織進(jìn)行消毒抑菌處理,將孢子沖洗下來后再分離單孢,尤其適合子實體表面不光滑,難以進(jìn)行消毒的菇類。

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