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    冷凍保存對人類精子線粒體DNA的影響

    2018-11-15 11:26:44傅龍龍周芳安琪張開舒童越許劍鋒王曉尉郭穎李鴻袁冬盧文紅梁小薇谷翊群
    生殖醫(yī)學雜志 2018年11期
    關(guān)鍵詞:拷貝數(shù)完整性精液

    傅龍龍,周芳,安琪,張開舒,童越,許劍鋒,王曉尉,郭穎,李鴻,袁冬,盧文紅,梁小薇,谷翊群

    (1.國家衛(wèi)生計生委科學技術(shù)研究所 國家衛(wèi)生計生委男性生殖健康重點實驗室 男性臨床研究室/北京人類精子庫,北京 100081;2.北京協(xié)和醫(yī)學院研究生院,北京 100730;3.青島大學附屬醫(yī)院生殖中心,青島 266000)

    線粒體是精子內(nèi)除細胞核以外,唯一攜帶遺傳物質(zhì)的細胞器;與細胞核的遺傳系統(tǒng)構(gòu)成了一個整體。線粒體DNA(mitochondrion DNA,mtDNA)是一條雙鏈環(huán)狀的DNA,共含有16 569個堿基對,有自己的遺傳系統(tǒng)和自己的蛋白質(zhì)翻譯系統(tǒng),且部分遺傳密碼與核密碼有不同的編碼含義。人類線粒體基因組共編碼了37個基因,編碼13 種蛋白質(zhì),22種tRNA和2種rRNA[1]。這13種蛋白質(zhì)與核DNA編碼蛋白參與線粒體氧化磷酸化,是機體提供能量和物質(zhì)代謝的重要基礎(chǔ)。隨著mtDNA研究的不斷深入,mtDNA成為衡量線粒體功能的重要生物標記物[2];研究者在異常精液中發(fā)現(xiàn)mtDNA突變與缺失[3-5]與男性不育、精液質(zhì)量下降等生殖相關(guān)疾病密切相關(guān)。

    精液冷凍是輔助生殖技術(shù)發(fā)展的重要保障:為中重度少弱精子癥男性進行精液凍存,用于后期輔助生殖;凍存志愿者精液,為男方無精子癥夫婦提供精子;為放化療前腫瘤患者、輸精管絕育術(shù)前患者、移植患者等進行自體精液保存,保存生育力[6]。精子冷凍損傷是精子冷凍和復蘇過程中,由于滲透壓改變、細胞內(nèi)外冰晶形成、冷凍保護劑的毒性等因素,不可避免的都會發(fā)生一些物理和化學損傷。冷凍復蘇過程會降低精子質(zhì)量[7-8]:活力下降、受孕率減少,頂體完整性降低,精子線粒體膜電位降低。冷凍損傷是否會引起mtDNA水平的破壞,從而降低精子相關(guān)功能?本研究觀察冷凍保存前后人精子線粒體mtDNA拷貝數(shù)和完整性的變化。

    資料與方法

    一、研究對象和分組

    1.精液樣本收集:本研究得到國家衛(wèi)生計生委科學技術(shù)研究所倫理委員會通過,所有志愿者簽署知情同意書。標本來源于北京人類精子庫捐精志愿者,禁欲5~7 d后,手淫法取精留存于消毒干燥取精杯中,置于37℃水浴完全液化后,按照世界衛(wèi)生組織操作指導規(guī)范分析精液。選取符合捐精條件的正式志愿者為研究對象:精子濃度>60×106/ml,前向運動精子(PR)百分比>60%,PR復蘇率>60%。

    2.精液分組:收集研究對象精液,待精液完全液化后,每份精液樣品分為2份:1份進行精液冷凍復蘇處理,納入實驗組;1份為新鮮精液,納入研究對照組。

    二、研究方法

    除特殊說明,本實驗采用的相關(guān)試劑均來自于美國Sigma公司。

    1.精液冷凍及復蘇:本研究中,實驗組采用北京精子庫精液操作流程進行精液冷凍復蘇[9]:1份體積甘油-卵黃-檸檬酸鹽(自制)冷凍保護劑逐滴加入到2份體積精液中,充分混勻裝入冷凍管,在30~35℃孵育10 min。將冷凍管放入程控冷凍儀中(Planner,英國),進行冷凍降溫。精液于液氮保存2周后復蘇:37℃水浴快速復溫5~10 min。對實驗組和研究對照組精子均進行精子活力、mtDNA拷貝數(shù)和完整性檢測。

    2.Markler計數(shù)板聯(lián)合CASA法評估精子活力:采用Makler板(Sefi Instruments,以色列),在400倍光學顯微鏡下最少計數(shù)200個精子。計數(shù)精子總數(shù)和PR精子數(shù),計算精子濃度和PR百分比。并采用計算機輔助精子動態(tài)圖像檢測系統(tǒng)CASA(IVOS,Hamilton Thorn Research,美國)分析運動參數(shù):平均路徑速率(Average path velocity,VAP)、直線速率(Straight-line velocity,VSL)和曲線速率(Curvilinear velocity,VCL)。

    3.精子總DNA提?。撼浞只靹蚓汉?,根據(jù)每份標本收集精子數(shù)為20×106個的標準,取相應體積的精液。將所取精液,與PBS液以體積比1∶2的比例進行混勻,1 000 g離心5 min,小心吸取并丟棄上清液。再加入1 ml PBS液,輕柔吹打,重懸精子后,1 000 g離心5 min,并重復兩次。留取精子沉淀團,使用DNA提取試劑盒(北京天根生化)提取精子基因組DNA,稀釋至10 ng/μl,-80°凍存?zhèn)溆谩?/p>

    4.實時熒光定量PCR(qPCR)檢測mtDNA拷貝數(shù):選取mtDNA編碼的16SrRNA為目的基因[10],以核編碼β-actin為內(nèi)參基因,半定量檢測mtDNA拷貝數(shù)。兩基因引物由Invitrogen(上海)公司合成,引物序列詳見表1。使用ABI PRISM 7500熒光定量PCR儀(Applied Biosystems,美國)進行擴增,獲得各樣品所擴展基因的CT值、擴增曲線和溶解曲線。擴展反應體系為20 μl:2×UltraSYBR Mixture(With ROX)(北京康為世紀)10 μl、上游引物(10 μmol/L)0.4 μl、下游引物(10 μmol/L)0.4 μl、DNA模板2 μl。擴增程序為:95℃10 min,(95℃15 s,60℃ 60 s)×45個循環(huán)。同時在60~95℃進行溶解曲線分析,根據(jù)溶解曲線圖,評價引物特異性。采用基因的CT值,對mtDNA 拷貝數(shù)進行相對定量[9]:mtDNA拷貝數(shù)=2-△ct,其中△ct=CT16srRNA-CTβ-actin。

    表1 引物序列

    5.長鏈PCR方法檢測精子mtDNA完整性:采用長鏈PCR方法擴增mtDNA 8 700 bp片段。引物由Invitrogen(上海)公司合成,詳見表1。使用A100 PCR儀擴增,反應體系20 μl:2×Es Taq MasterMix(Dye)10 μl、上游引物(10 μmol/L)0.4 μl、下游引物(10 μmol/L)0.4 μl、DNA模板(10 ng/μl)2 μl,加入滅菌蒸餾水至20 μl。擴增程序為:95℃ 5 min,(95℃ 30 s,62℃ 60 s,72℃ 1 min)×30個循環(huán),72℃延伸5 min。以8 700 bp片段產(chǎn)物評價精子mtDNA的完整性;采用Quantity One v.4.6.2軟件讀取8 700 bp條帶電泳強度值。為了消除mtDNA數(shù)量的影響,將長鏈PCR擴增后的8 700 bp條帶的電泳強度值與相對應的拷貝數(shù)進行標準化處理:電泳強度值/mtDNA拷貝數(shù)。

    三、統(tǒng)計學分析

    結(jié) 果

    一、一般資料

    共納入22例符合北京人類精子庫捐精條件的正式志愿者。納入志愿者年齡為(27.8±3.0)歲,禁欲天數(shù)(6.1±0.9)d。志愿者精液體積為(5.0±1.5)ml,精子濃度(75.8±15.8)×106/ml,前向運動精子百分比為(68±6)%。采用北京精子庫精液操作流程進行精液冷凍,22名志愿者總活動精子復蘇率為(72±8)%。

    二、冷凍保存對人精子的影響

    1.冷凍保存對精子活力影響:冷凍復蘇后前向運動精子百分比顯著降低(P<0.05);冷凍保存后精子活力明顯降低,VSL、VCL和VAP均顯著低于新鮮精液組(P<0.05)(表2)。

    2.冷凍保存對人精子mtDNA拷貝數(shù)的影響:按照mtDNA拷貝數(shù)=2-△ct,△ct= CT16srRNA-CTβ-actin,計算各樣本mtDNA拷貝數(shù)。新鮮精液組精子mtDNA拷貝數(shù)為(5.66±5.53),冷凍復蘇組精子mtDNA拷貝數(shù)為(10.12±8.41),配對樣本t檢驗顯示冷凍復蘇組精子mtDNA拷貝數(shù)較新鮮精液精子顯著增加(P<0.05)。

    表2 冷凍保存對精子活力及運動參數(shù)量影響

    注:與新鮮對照組相比,*P<0.05

    3.冷凍保存對人精子mtDNA完整性的影響:以8 700 bp條帶擴展相對強度值計算mtDNA完整性,冷凍復蘇后精子組與新鮮精液精子組無統(tǒng)計學差異[(29.69±15.04)vs.(32.78±16.0),P=0.077],暫不認為冷凍復蘇會降低精子mtDNA的完整性。

    討 論

    精子冷凍保存技術(shù)發(fā)展至今,已有幾十年的歷史,其在輔助生殖技術(shù)中起到了至關(guān)重要的作用,且到目前為止,精液冷凍也是目前唯一有效的男性生育力保存的方式。隨著冷凍方法和冷凍保護劑的不斷改良,精子的存活率有了一定提高,但對精子功能等仍然會造成了一些不可逆轉(zhuǎn)的影響。本研究結(jié)果中也發(fā)現(xiàn),精液冷凍明顯降低精子活力、減少RP百分率、降低精子運動參數(shù)。但活力和形態(tài)的改變,很難全面評估冷凍復蘇后的精子質(zhì)量;因此尋求多指標評價精子質(zhì)量,篩選優(yōu)質(zhì)精子進行后期輔助生殖尤為重要。

    凍融后精子遺傳物質(zhì)的改變一直受到相關(guān)領(lǐng)域研究者的關(guān)注[11]。我們團隊早期研究發(fā)現(xiàn)精子冷凍會增加核DNA碎片[12],此后在越來越多的證據(jù)得到相類似結(jié)果[13]。我們對冷凍損傷對人精子DNA甲基化相關(guān)影響也進行相關(guān)探索[9]。

    mtDNA是核DNA以外的遺傳物質(zhì),mtDNA拷貝數(shù)和完整性是評價精子功能的重要指標之一。mtDNA拷貝數(shù)與常規(guī)精液參數(shù)如精子濃度、精子總數(shù)、精子活率及正常形態(tài)精子率呈負相關(guān)[4-5,14];它對成功受精和胚胎形成具有極大的重要性,與胚胎發(fā)育密切相關(guān)[15]。mtDNA完整性也與精子質(zhì)量相關(guān)[3-5]:精液質(zhì)量越高,mtDNA完整性越好;精液質(zhì)量越差,mtDNA完整性越差。冷凍技術(shù)是否會對精子mtDNA的完整性和拷貝數(shù)產(chǎn)生影響,鮮有報道。

    本研究初步探討了冷凍保存對于人類線粒體DNA完整性和拷貝數(shù)的影響,采用qPCR和長鏈PCR技術(shù)分別檢測冷凍前后精子mtDNA的拷貝數(shù)和完整性,以進一步研究冷凍損傷導致精子功能降低的相關(guān)因素。不同的實驗方法,所測的結(jié)果存在差異[16]。本實驗采用的qPCR不僅可以半定量,而且特異度高,可以排除假基因的干擾;且相比于二次測序技術(shù)[17]操作簡單,對樣本制備和數(shù)據(jù)處理的要求較低,易于大量使用和推廣。本實驗中22例合格供精志愿者新鮮精液mtDNA拷貝數(shù)及完整性檢測結(jié)果,與Zhang等[5]研究結(jié)果相近。精子冷凍復蘇后mtDNA拷貝數(shù)增加,這與卵母細胞冷凍相關(guān)研究相一致[18-19]。本研究通過長鏈PCR測量mtDNA完整性,并在每個精子樣品中用mtDNA拷貝數(shù)歸一化,進行量化比較。但目前結(jié)果暫未發(fā)現(xiàn)凍融后精子mtDNA完整性發(fā)現(xiàn)明顯變化。國內(nèi)蔡學泳等[20]關(guān)于冷凍保存對人類卵母細胞線粒體DNA缺失的研究也發(fā)現(xiàn)卵母細胞mtDNA缺失率和mtDNA拷貝數(shù)在冷凍處理前后均無統(tǒng)計學差異。不同于核DNA的穩(wěn)固,mtDNA多以拷貝的形式存在于線粒體中,且沒有組蛋白的保護,線粒體DNA修復的途徑也并不完善;因此,線粒體中的氧化損傷比細胞核中的氧化損傷高,mtDNA所累積的突變是細胞核基因組的10~50倍[21]。

    目前研究認為冷凍復蘇過程中,精子內(nèi)氧自由基和抗氧化劑防御體系平衡的喪失,過量的ROS產(chǎn)生,是引起精子冷凍損傷的重要因素。不同于其他細胞結(jié)構(gòu),成熟精子胞質(zhì)少,且線粒體集中分布于精子中段,所以精子抗氧化能力減弱且缺乏修復能力,極易受到ROS損傷[22]。相關(guān)臨床研究也顯示[23]:ROS會引起精子功能降低與男性不育、女性復發(fā)性流產(chǎn)、兒童先天畸形等生殖相關(guān)疾病,存在密切相關(guān)性。本研究結(jié)果顯示,在捐精合格志愿者人群中,冷凍過程會增加mtDNA拷貝數(shù),但對mtDNA完整性的影響不大??赡艿脑蚴荹20,24]:ROS刺激引起線粒體呼吸鏈功能受損,ATP合成受到抑制,為了彌補損傷后的功能缺陷,拷貝數(shù)代償性增加;但目前冷凍過程中ROS的蓄積,尚未引起mtDNA完整性的改變。

    我們研究了現(xiàn)有冷凍復蘇技術(shù)對精子mtDNA拷貝數(shù)和完整性的影響,但受到條件限制,本實驗凍存時間尚未達到臨床保存所需時間要求。后期需要進一步擴大研究人群、增加樣本量、延長冷凍及納入精子參數(shù)相關(guān)性研究,為精子冷凍損傷的機制進行進一步研究。

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