汪 靜 黃利紅
(華中科技大學同濟醫(yī)學院附屬普愛醫(yī)院婦產(chǎn)科,湖北 武漢 430014)
p53是哺乳動物細胞內(nèi)重要的轉(zhuǎn)錄調(diào)控因子,同時也是研究最廣泛的抑癌基因,p53在致DNA損傷因子、氧化應激、熱休克、紫外照射等壓力刺激下被激活,進而啟動細胞DNA損傷修復、誘導細胞周期阻滯和細胞凋亡以維持胞內(nèi)遺傳信息的穩(wěn)定性〔1〕。研究發(fā)現(xiàn),在約50%的人類癌癥細胞中,p53基因發(fā)生變異,造成p53失活〔2〕。在另外近50%的癌癥細胞中,p53基因并沒有發(fā)生變異,但活性則被其下游靶基因MDM2的負反饋作用而被抑制,使細胞因無法修復受損基因而進入惡性分裂、誘變癌癥〔3〕。研究證實,MDM2基因的過表達與肺癌、卵巢癌、膀胱癌及肝癌等惡性腫瘤的發(fā)生與發(fā)展密切相關〔4〕。針對MDM2在N端的p53結(jié)合域的分子抑制劑的研發(fā)是近年來腫瘤藥物開發(fā)的熱門〔5〕。MI-219是一種高效MDM2抑制劑,可以有效阻斷MDM2對p53的降解作用,激活細胞內(nèi)野生型p53的活性,誘導細胞周期阻滯和細胞凋亡,臨床前研究表明其在動物體內(nèi)可以作為癌癥治療的候選藥物〔6〕。因此,研究MI-219發(fā)揮作用的詳細分子機制有利于對其進一步開發(fā)和利用。卵巢癌是女性最常見的惡性腫瘤之一,在女性患者中,其發(fā)病率僅次于子宮內(nèi)膜癌,在全球范圍內(nèi)每年以2%的速度遞增。現(xiàn)階段卵巢癌的治療仍以手術為主,配合化療,但是化療療效則一直受制于耐藥和化療藥物副作用。因此,探索新的治療靶點并開發(fā)高效、靶向、低毒的優(yōu)化方案是現(xiàn)階段卵巢癌治療的首選舉措。本研究擬探討MI-219與常用化療藥物阿霉素(ADM)聯(lián)用對人卵巢癌耐阿霉素細胞株A2780/ADM增殖及凋亡的影響。
1.1主要試劑 胎牛血清、DMEM培養(yǎng)基均為Hyclone公司產(chǎn)品。ADM(注射用鹽酸多柔比星)為山西普德藥業(yè)股份有限公司產(chǎn)品(國藥準字:H14023143)。MI-219為美國Selleck公司產(chǎn)品(目錄號:S8059)。四甲基氮唑鹽(MTT)購自美國Sigma-Aldrich公司。二喹啉甲酸(BCA)蛋白定量試劑盒、RIPA裂解液和酶聯(lián)免疫吸附試驗(ELISA)試劑盒由武漢博士德生物工程有限公司提供,凋亡檢測試劑盒為杭州聯(lián)科生物技術有限公司產(chǎn)品。胞質(zhì)蛋白分離試劑盒碧云天生物技術研究所提供。兔抗人MDM2、phospho-p53、XIAP、Caspase3、Caspase9及鼠抗人β-actin一抗,羊抗兔、羊抗鼠二抗均購自南京巴傲德生物科技有限公司。其他常用化學試劑均為國產(chǎn)分析純。
1.2方法
1.2.1細胞培養(yǎng) 人卵巢癌耐ADM細胞株A2780/ADM購自美國ATCC細胞庫,常規(guī)培養(yǎng)于含10%胎牛血清、100 U/ml青霉素、100 μg/ml鏈霉素的RPMI1640培養(yǎng)液中,在37℃,體積分數(shù)為5%的CO2飽和濕度培養(yǎng)箱中。
1.2.2MTT試驗 取對數(shù)生長期的耐藥細胞A2780/ADM,以0.25%胰蛋白酶消化制備成單細胞懸液(2×105),接種于96孔細胞培養(yǎng)板中。首先篩選MI-219無毒/低毒濃度范圍,以倍比稀釋的方法由高到低分別加入5.000 μmol/L、2.500 μmol/L、1.250 μmol/L和0.625 μmol/L濃度的MI-219,對照組不加藥物只加培養(yǎng)基,每組設6個復孔,藥物作用24 h后,棄上清,每孔加入100 μl MTT 溶液(終濃度為0.05 mg/ml),繼續(xù)培養(yǎng)4 h,小心吸去各孔內(nèi)液體,每孔加入150 μl 二甲基亞砜(DMSO),于Synergy 2 型多功能酶標儀讀取吸光度值(A570)。細胞活性(%)=〔處理組OD值/空白組OD值〕×100。計算出無毒、低毒濃度MI-219后,再次制備成A2780/ADM細胞懸液,接種于96孔細胞培養(yǎng)板,細胞隨機分為4組:①對照組(不加任何處理);②ADM組(0.625 mg/L ADM);③ADM+0.625 μmol/L MI-219組;④ADM+1.250 μmol/L MI-219組。處理步驟同上。
1.2.3流式細胞術分析細胞凋亡 選處于對數(shù)生長期的A2780/ADM細胞制備單細胞懸液,并計數(shù),在加藥前1 d,以每孔2.0×106個細胞接種于6孔培養(yǎng)板中。按細胞1.2.2方法經(jīng)ADM或ADM+MI-219處理24 h后,PBS洗滌2次,0.25%胰蛋白酶消化,3 000 r/min離心5 min收集細胞,用PBS輕輕重懸細胞并計數(shù),取5.0×105個重懸的細胞,3 000 r/min離心5 min,棄上清,按說明書要求加入500 μl 上樣緩沖液輕輕混勻;后加入5 μl Annexin V-FITC和10 μl PI溶液混勻,室溫避光作用15~20 min,于流式細胞儀上檢測細胞凋亡率。Cellquest軟件分析檢測結(jié)果。
1.2.4Western印跡檢測 加藥前1 d選對數(shù)生長期的A2780/ADM細胞制備單細胞懸液,以每瓶5.0×106個細胞接種于25 cm2細胞培養(yǎng)瓶中。按1.2.2方法分組及處理24 h后,預冷PBS洗滌2次,胰酶消化,離心收集細胞。RIPA裂解液處理細胞,提取上清液,BCA蛋白定量試劑盒測量蛋白濃度。取等量蛋白樣品(每孔30 μg)與蛋白上樣緩沖液按4∶1比例混勻,95℃水浴變性10 min。經(jīng)12% SDS-聚丙烯酰胺凝膠中電泳2.5 h,半干轉(zhuǎn)膜儀轉(zhuǎn)移至0.45 μmol/L PVDF膜,后經(jīng)5%脫脂奶粉封閉1 h。經(jīng)一抗、二抗孵育后,加入電化學發(fā)光(ECL)超敏發(fā)光液顯色,采用多功能凝膠成像分析儀檢測蛋白表達水平,以β-actin作為等量蛋白上樣對照,通過Genetool凝膠圖像分析軟件對各組蛋白條帶的密度值進行比較分析。
1.2.5ELISA試驗分析胞質(zhì)Cytochrome C水平 加藥前1 d選對數(shù)生長期的A2780/ADM細胞制備單細胞懸液,以每瓶5.0×106個細胞接種于25 cm2細胞培養(yǎng)瓶中。經(jīng)1.2.2方法分組及處理24 h后,參照胞質(zhì)蛋白分離試劑盒說明書分離各組胞質(zhì)蛋白,BCA蛋白定量試劑盒測量蛋白濃度。取10 μg胞質(zhì)蛋白稀釋至100 μl加入進ELISA試劑盒的樣本孔中,按說明書要求,經(jīng)洗板、加抗體、洗板、加酶、洗板、顯色、終止,最后于Synergy 2 型多功能酶標儀讀取吸光度值(A450)。
1.3統(tǒng)計學處理 采用SPSS19.0軟件進行方差齊性檢驗和t檢驗。
2.1細胞活力檢測結(jié)果 A2780/ADM細胞經(jīng)0.625、1.250、2.500及5.000 μmol/L MI-219處理24 h后,各處理組A2780/ADM細胞增殖率呈劑量依賴性降低,分別為:97%、86%、72%和61%,其中5.000 μmol/L、2.500 μmol/L、1.250 μmol/L處理組與對照組(100%)相比有統(tǒng)計學差異(P<0.05)。確定0.625 μmol/L MI-219為非細胞毒性劑量(生存率>95%)、1.250 μmol/L MI-219為低細胞毒性劑量(生存率>85%)。MI-219和ADM聯(lián)合處理對A2780/ADM細胞增殖率影響結(jié)果顯示:無論ADM單獨處理或與MI-219聯(lián)合處理均可顯著降低A2780/ADM細胞增殖率(P<0.05);ADM組細胞增殖率為87%;0.625 mg/L ADM+0.625 μmol/L MI-219組,A2780/ADM細胞增殖率為76%;ADM+1.250 μmol/L MI-219組細胞增殖率為61%;聯(lián)合處理組細胞增殖率均顯著低于ADM組(P<0.05)。
2.2細胞凋亡檢測結(jié)果 ADM組細胞凋亡率為14%;ADM+0.625 μmol/L MI-219組細胞凋亡率為26%;當0.625 mg/L ADM與1.250 μmol/L MI-219共同處理時,A2780/ADM細胞凋亡率為41%;聯(lián)合處理組細胞凋亡率均顯著高于ADM組(P<0.01)。
2.3Western印跡結(jié)果 在ADM組、ADM+0.625 μmol/L MI-219組、ADM+1.250 μmol/L MI-219組中,MDM2和XIAP蛋白表達逐漸減少,在ADM+1.250 μmol/L MI-219組中表達最低,且以上蛋白在聯(lián)合處理組中的表達也明顯低于ADM組;而活化型p53、Caspase3、Caspase9表達在ADM組、ADM+0.625 μmol/L MI-219組、ADM+1.250 μmol/L MI-219組中則明顯增加,在ADM+1.250 μmol/L MI-219組中表達量最高,且以上蛋白在聯(lián)合處理組中的表達也明顯高于ADM組。見圖1,表1。所有組中β-actin表達水平無變化,說明實驗結(jié)果可信。
1~4:空白組、ADM組、ADM+0.625 μmol/L MI-219組及ADM+1.250 μmol/L MI-219組圖1 Western 印跡檢測各組細胞MDM2、XIAP、活化型p53、Caspase3和Caspase9表達
表1 各組Western印跡檢測各蛋白表達水平均數(shù)比較(n=3)
與ADM組比較:1)P<0.05;與其他組比較:2)P<0.05
2.4ELISA分析胞質(zhì)Cytochrome C水平 ADM單獨處理或與MI-219聯(lián)合處理均可顯著增加胞質(zhì)Cytochrome C水平,ADM組吸光值約為1.29;ADM+0.625 μmol/L MI-219組吸光值約為1.90;當ADM+1.25 μmol/L MI-219組吸光值約為2.80;聯(lián)合處理組吸光值均顯著高于ADM,與空白組(吸光值約為0.47)(均P<0.01)。
MDM2作為p53的靶基因可以通過兩種機制調(diào)節(jié)p53,首先,通過其N端p53 結(jié)合域與p53 轉(zhuǎn)錄激活結(jié)構域結(jié)合阻礙后者發(fā)揮轉(zhuǎn)錄激活作用,其次,MDM2作為E3泛素化酶,可以介導p53的泛素化降解及其核移位過程〔7~9〕。同時,MDM2還可以在蛋白質(zhì)翻譯水平上調(diào)XIAP,而后者則通過下調(diào)Caspase3和Caspase9的活性來抑制細胞凋亡〔10,11〕。無論是p53活性被抑制還是XIAP過表達均可導致細胞進入惡性分裂而誘變癌癥。因此,MDM2小分子抑制劑的研發(fā)是抗癌藥物設計的熱門靶點之一。本研究提示MI-219是有效的抗腫瘤化合物。當非細胞毒性劑量的MI-219與ADM聯(lián)合作用時可顯著增加后者的增殖抑制作用,低細胞毒性劑量的MI-219與ADM聯(lián)合作用時對細胞增殖的抑制作用更為明顯。兩種劑量的MI-219與ADM聯(lián)用時可明顯抑制MDM2和XIAP蛋白表達,而活化型p53、Caspase3和Caspase9表達量及Cytochrome C水平則明顯升高。因為Cytochrome C的釋放是線粒體依賴性細胞凋亡的關鍵事件,因此,提示MI-219通過抑制MDM2的活性進而促進野生型p53的活化及凋亡抑制因子XIAP的下調(diào),增強了卵巢癌耐藥細胞株A2780/ADM對ADM的敏感性。