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    黑木耳多糖AAP-10對免疫抑制小鼠的免疫調(diào)節(jié)作用

    2018-10-29 02:39:20許海林吳小勇黃延盛寧初光
    食品科學(xué) 2018年19期
    關(guān)鍵詞:廓清黑木耳免疫抑制

    甘 霓,許海林,吳小勇*,尹 輝,黃延盛,寧初光

    (1.廣東藥科大學(xué)公共衛(wèi)生學(xué)院,廣東 廣州 510310;2.廣東藥科大學(xué)食品科學(xué)學(xué)院,廣東 中山 528453;3.廣東藥科大學(xué)基礎(chǔ)學(xué)院,廣東 廣州 510006;4.無限極(中國)有限公司,廣東 新會 529156)

    黑木耳(Auricularia auricula-judae)是一種大型食用真菌,是人工種植最早的商品菌類之一。目前我國黑木耳的年產(chǎn)量估計在300萬 t左右,黑木耳資源非常豐富。黑木耳的碳水化合物含量較高,一般占其子實體干質(zhì)量的60%以上,且大部分為非淀粉多糖[1]。相關(guān)研究表明黑木耳多糖具有免疫調(diào)節(jié)、降血糖、降血脂、抗腫瘤、抗凝血等多種藥理活性[2-7],被認為是黑木耳的主要功能因子之一。

    天然多糖作為一種生物大分子,在組成、結(jié)構(gòu)方面存在多樣性;產(chǎn)地、菌種及提取、制備方法不同,得到的多糖在組成、結(jié)構(gòu)方面會存在一定的差異,進而影響其生物活性[8-12]。本課題組的前期研究發(fā)現(xiàn),產(chǎn)自浙江龍泉地區(qū)的一種黑木耳不僅多糖含量較高,且其粗多糖具有增強小鼠非特異性免疫的功效[13]。為進一步開發(fā)該黑木耳多糖,本研究采用分級醇沉的方法從該黑木耳中獲得水溶性多糖AAP-10,并重點研究了其對免疫抑制小鼠的免疫調(diào)節(jié)作用。

    1 材料與方法

    1.1 動物、材料與試劑

    近交系BALB/c小鼠,雌性,體質(zhì)量18~22 g,合格證號:SCXK(粵)2013-0020,購自廣州中醫(yī)藥大學(xué)(大學(xué)城)實驗動物中心。

    黑木耳產(chǎn)自浙江龍泉,由無限極(中國)有限公司提供。

    水解蛋白酶(novozym37071) 諾維信(中國)生物技術(shù)有限公司;刀豆蛋白(concanavalin A,ConA)、噻唑藍(3-(4,5-dimethylthiazol-2-yl)-2,5-diphenyltetrazolium bromide,MTT)、葡萄糖、甘露糖等單糖標(biāo)準(zhǔn)品 美國Sigma公司;DEAE-52纖維素柱、Sephacryl S-400凝膠柱、葡聚糖標(biāo)準(zhǔn)品(重均分子質(zhì)量分別為670、270、80、25、12、5 kDa) 上海玉博生物科技有限公司;RPMI 1640培養(yǎng)基、新生牛血清 美國GIBCO公司;印度墨汁 上海億欣生物科技有限公司;其他化學(xué)試劑均為分析純。

    1.2 儀器與設(shè)備

    752型紫外-可見分光光度計 上海棱光技術(shù)有限公司;1260高效液相色譜儀 美國安捷倫公司;ELx808酶標(biāo)儀 美國BioTek公司;CO2培養(yǎng)箱 上海安競實驗設(shè)備有限公司;BT100S/YZ15恒流泵 上海精科實業(yè)有限公司。

    1.3 方法

    1.3.1 黑木耳多糖的制備

    取50.00 g粉碎過篩的黑木耳粉,按課題組前期優(yōu)化得到的黑木耳多糖提取最佳工藝進行黑木耳多糖提取[13],重復(fù)提取3 次,合并3 次提取液,適當(dāng)濃縮后調(diào)節(jié)pH值至7.0,按底物質(zhì)量的1%加入水解蛋白酶,于55 ℃下攪拌酶解12 h以分解提取液中的游離蛋白。酶解結(jié)束后沸水浴加熱保溫20 min,滅酶,向其中緩慢加入一定量的無水乙醇,直至體系中乙醇的質(zhì)量分數(shù)達到10%,適當(dāng)攪拌使乙醇分布均勻后置于4 ℃冰箱中醇沉12 h,4 000 r/min離心10 min,收集沉淀物,用蒸餾水將其完全溶解。先用流動自來水透析24 h,再用蒸餾水透析48 h,期間每12 h換一次水,截留液冷凍干燥,得到一種初步精制的黑木耳多糖,命名為AAP-10。準(zhǔn)確稱質(zhì)量,記錄AAP-10凍干粉的質(zhì)量,以凍干粉質(zhì)量與黑木耳粉質(zhì)量之比計算黑木耳的多糖得率。

    1.3.2 黑木耳多糖的纖維素柱層析和凝膠柱層析

    準(zhǔn)確稱取AAP-10凍干粉0.30 g,溶于100 mL蒸餾水中,取經(jīng)0.45 μm濾膜過濾后的多糖溶液10 mL,過DEAE-52纖維素柱,用1.5 g/L NaCl溶液洗脫,洗脫劑流速為1.0 mL/min,自動部分收集器每5 min收集一管溶液,以苯酚-硫酸法跟蹤檢測多糖含量。以管號為橫坐標(biāo),吸光度為縱坐標(biāo),繪制APP-10過DEAE-52纖維素柱的洗脫曲線,收集并合并同一部分。取收集到的主要洗脫部分5.00 mL,直接過Sephacryl S-400凝膠柱,用1.5 g/L NaCl溶液洗脫,采用與DEAE-52纖維素柱類似操作,繪制AAP-10過Sephacryl S-400凝膠柱的洗脫曲線。

    1.3.3 黑木耳多糖理化性質(zhì)的測定

    參照文獻[13]的方法,測定1.3.2節(jié)中配制好的AAP-10凍干粉水溶液(過濾膜前)的多糖含量,計算AAP-10的純度。采用1-苯基-3-甲基-5-吡唑啉酮(1-phenyl-3-methyl-5-pyrazolone,PMP)柱前衍生高效液相色譜法測定多糖的糖基組成[14];以不同重均分子質(zhì)量的葡聚糖為標(biāo)準(zhǔn)品,采用高壓凝膠滲透色譜法測定多糖的分子質(zhì)量[15]。

    1.3.4 動物實驗

    取小鼠40 只,隨機分成5 組,分別為正常對照組、環(huán)磷酰胺(cyclophosphamide,CPA)模型組以及AAP-10低、中、高劑量給藥組,每組8 只。除正常對照組外,其余各組連續(xù)3 d每天按體質(zhì)量80 mg/kg腹腔注射CPA,建立免疫低下小鼠模型。隨后,多糖給藥組每天灌胃給藥,根據(jù)前期研究結(jié)果,確定AAP-10低、中、高劑量組的多糖給藥量分別為2.5、5.0、10.0 mg/(kg·d),灌胃量均為0.2 mL/只,正常對照組和CPA模型組每天灌胃等體積的生理鹽水。期間每天定時測動物體質(zhì)量,2 周后(第17天),各組隨機取一半動物進行相關(guān)指標(biāo)檢測,另一半動物繼續(xù)灌胃2 周后(第31天)進行相關(guān)指標(biāo)檢測。以臟器質(zhì)量與體質(zhì)量的比值表示臟器指數(shù);采用MTT法通過ConA誘導(dǎo)的小鼠脾淋巴細胞轉(zhuǎn)化實驗檢測小鼠脾淋巴細胞轉(zhuǎn)化增殖能力[16-17];通過小鼠碳廓清實驗檢測單核-巨噬細胞功能[18];采用乳酸脫氫酶測定法檢測自然殺傷(natural killer,NK)細胞活性[19]。

    1.4 數(shù)據(jù)統(tǒng)計分析

    實驗數(shù)據(jù)均以 ±s表示,運用SPSS 22.0軟件,采用單因素方差分析對組間差異進行比較,組內(nèi)比較采用t檢驗,以P<0.05表示差異顯著。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 AAP-10的基本理化性質(zhì)分析

    由50.00 g黑木耳子實體干粉得到4.47 g初步精制的AAP-10,多糖得率為8.94%。苯酚-硫酸法測得AAP-10的純度為97.58%,說明其純度較高;紫外-可見分光光度計掃描結(jié)果表明,AAP-10的水溶液在260、280 nm波長處都沒有吸收峰出現(xiàn),說明多糖凍干粉中不含核酸和蛋白質(zhì)。

    圖 1 AAP-10過DEAE-52層析柱的洗脫曲線Fig. 1 Elution prof i le of AAP-10 on DEAE-52 column

    圖 2 AAP-10過Sephacryl S-400凝膠柱的洗脫曲線Fig. 2 Elution prof i le of AAP-10 on Sephacryl S-400 column

    從圖1可以看出洗脫曲線只有一個峰,說明AAP-10中多糖的性質(zhì)較為接近。由圖2可知曲線只有一個單一對稱峰,說明黑木耳多糖AAP-10為分子質(zhì)量分布較均一的多糖。糖基組成分析結(jié)果表明,AAP-10主要由葡萄糖和甘露糖組成,物質(zhì)的量比為6∶1;分子質(zhì)量分析結(jié)果表明,AAP-10的分子質(zhì)量為6.56×105Da。

    2.2 AAP-10給藥對免疫抑制小鼠體質(zhì)量的影響分析

    CPA是一種應(yīng)用廣泛的化療藥物,屬于烷化劑類免疫抑制劑,常用于制備免疫抑制動物模型。一定劑量的CPA灌胃或注射,會引起動物體質(zhì)量下降、免疫器官質(zhì)量降低等生理反應(yīng)[20]。從圖3可以看出,注射CPA后,小鼠體質(zhì)量開始顯著下降,一直到第7天前后才開始停止下降并逐漸恢復(fù),其中AAP-10中劑量組恢復(fù)得最快,CPA模型組及AAP-10高劑量組恢復(fù)得較慢。

    圖 3 小鼠體質(zhì)量變化情況Fig. 3 Changes in body mass ofmice from each group

    表 1 AAP-10給藥對小鼠體質(zhì)量的影響Table 1 Effect of AAP-10 administration on body mass of mice

    從表1可以看出,在實驗第1天各組小鼠體質(zhì)量無明顯差異;與正常對照組相比,在第17天,CPA模型組小鼠體質(zhì)量顯著偏低(P<0.05);在第31天,CPA模型組和AAP-10高劑量組小鼠的體質(zhì)量均極顯著低于正常對照組(P<0.01),但AAP-10低、中劑量組小鼠體質(zhì)量與正常對照組間差異不顯著。實驗結(jié)果說明,一定劑量的AAP-10給藥可改善CPA注射導(dǎo)致的小鼠體質(zhì)量低于正常對照組的現(xiàn)象。

    2.3 AAP-10給藥對免疫抑制小鼠臟器指數(shù)的影響

    從表2可以看出,與正常對照組相比,CPA模型組及AAP-10給藥各組小鼠第17天的肝臟指數(shù)極顯著增大(P<0.01);AAP-10給藥各組小鼠第31天的肝臟指數(shù)與CPA模型組差異不明顯。CPA注射小鼠的體質(zhì)量略低于正常小鼠(表1),可能是導(dǎo)致其的肝臟指數(shù)高于正常對照組的原因之一。

    表 2 AAP-10給藥對小鼠臟器指數(shù)的影響Table 2 Effect of AAP-10 administration on liver index and spleen index of mice

    CPA模型組小鼠的脾臟指數(shù)與正常對照組間差異不顯著;由于注射CPA會導(dǎo)致小鼠體質(zhì)量下降,因此可以認為CPA注射導(dǎo)致了小鼠脾臟質(zhì)量低于正常小鼠。AAP-10給藥各組小鼠第17天的脾臟指數(shù)與正常組相比均極顯著升高(P<0.01),與肝臟指數(shù)的結(jié)果類似,推測與CPA注射導(dǎo)致小鼠的體質(zhì)量略低于正常小鼠有關(guān)。與CPA模型組相比,在第17天,AAP-10給藥各劑量組小鼠的脾臟指數(shù)均極顯著增加(P<0.01);而在第31天,僅有AAP-10低劑量組小鼠脾臟指數(shù)極顯著增加(P<0.01)。實驗結(jié)果表明,AAP-10給藥能在一定程度上升高CPA免疫抑制小鼠的脾臟指數(shù),即緩解了CPA注射對小鼠脾臟的負面影響。

    2.4 AAP-10給藥對免疫抑制小鼠脾淋巴細胞轉(zhuǎn)化增殖能力的影響分析

    表 3 AAP-10給藥對小鼠脾淋巴細胞轉(zhuǎn)化增殖能力的影響Table 3 Effect of AAP-10 administration on lymphocyte activity of mice

    從表3可以看出,與正常對照組相比,CPA模型組小鼠脾淋巴細胞轉(zhuǎn)化增殖能力極顯著下降(P<0.01),而AAP-10各劑量組小鼠脾淋巴細胞轉(zhuǎn)化增殖能力無顯著差異(P>0.05)。與CPA模型組相比,AAP-10各劑量組小鼠脾淋巴細胞轉(zhuǎn)化增殖能力均顯著提高(P<0.05,P<0.01),說明AAP-10能夠顯著提高免疫抑制小鼠的細胞免疫功能。

    2.5 AAP-10給藥對免疫抑制小鼠單核-巨噬細胞功能的影響分析

    單核-巨噬細胞屬于機體固有免疫系統(tǒng)重要成員,具有免疫防御、免疫監(jiān)視、免疫調(diào)節(jié)以及抗原遞呈等多種免疫功能。小鼠碳廓清實驗可用于評價小鼠單核-巨噬細胞吞噬廓清異體顆粒的能力,從而評價小鼠的非特異性免疫功能。

    表 4 AAP-10給藥對小鼠碳廓清能力的影響Table 4 Effect of AAP-10 administration on carbon clearance capacity of mice

    從表4可以看出,CPA模型組小鼠碳廓清能力極顯著低于正常對照組(P<0.01),說明CPA注射導(dǎo)致小鼠單核-巨噬細胞吞噬廓清異體顆粒的能力有所下降。在第31天,AAP-10各劑量組小鼠碳廓清能力與正常對照組相比存在顯著差異(P<0.05,P<0.01),但一定劑量的多糖可使吞噬指數(shù)增大。與CPA模型組比較,在第17天,AAP-10各劑量組均能極顯著提高CPA免疫抑制小鼠的碳廓清能力(P<0.01),但在第31天差異不顯著。從實驗結(jié)果可以看出,多糖給藥能改善CPA免疫抑制小鼠單核-巨噬細胞的吞噬廓清能力,說明AAP-10具有一定的免疫調(diào)節(jié)功能。

    2.6 AAP-10給藥對免疫抑制小鼠NK細胞活性的影響

    表 5 AAP-10給藥對小鼠NK細胞活性的影響Table 5 Effect of AAP-10 administration on NK cell activity of mice

    從表5可以看出,與正常對照組相比,CPA模型組小鼠的NK細胞活性雖有所下降,但差異不顯著(P>0.05);與CPA模型組相比,AAP-10各劑量組小鼠NK細胞活性在第17天均有顯著提高(P<0.05,P<0.01),但在第31天差異不顯著,可能是隨著時間的延長CPA對小鼠的負面影響逐漸減弱所致。

    3 討 論

    乙醇沉淀是將多糖從其水溶液中分離出來最常用的方法,該方法利用乙醇的脫水作用,降低多糖在水中的溶解度,使多糖沉淀析出。乙醇質(zhì)量分數(shù)不同,沉淀析出的多糖在組成結(jié)構(gòu)和功能方面會有一定的差別[21-23]。本研究利用質(zhì)量分數(shù)10%的乙醇溶液,從產(chǎn)自浙江龍泉地區(qū)的一種黑木耳的水提物中分離得到一種組成結(jié)構(gòu)和分子質(zhì)量分布較均一的多糖AAP-10,得率為8.94%,經(jīng)精制后純度達到97.58%。

    惡性腫瘤是威脅人類健康的重大疾病,近年來其發(fā)病率在全球范圍內(nèi)總體呈上升趨勢。據(jù)估計,我國2013年新發(fā)惡性腫瘤約368.2萬 例,死亡222.9萬 例,全國惡性腫瘤發(fā)病率為270.59/10萬 例,防控形勢非常嚴(yán)峻[24]。放化療是目前中晚期惡性腫瘤的主要治療方法,但副作用較大,且對有些惡性腫瘤療效并不理想。黑木耳多糖被報道具有明顯的抗腫瘤活性[25-26],在我國民間也有在將黑木耳作為腫瘤放化療病人輔食的做法。CPA是一種烷化劑,可干擾DNA及RNA功能,抑制DNA合成,發(fā)揮殺傷腫瘤細胞的作用,但對機體正常細胞也有殺傷作用,具有免疫抑制等毒副作用[27-28]。多糖能夠在一定程度上調(diào)節(jié)機體的免疫功能,拮抗CPA的毒副作用,發(fā)揮減毒增效作用[29-30]。脾臟是重要的外周免疫器官,是機體對血源性抗原產(chǎn)生免疫應(yīng)答的主要場所。本研究結(jié)果表明,一定劑量的AAP-10給藥能緩解CPA注射對小鼠脾臟的負面影響。此外,較低劑量(2.5~5.0 mg/(kg·d))的AAP-10給藥就能增強CPA免疫抑制小鼠的脾淋巴細胞轉(zhuǎn)化增殖能力、單核-巨噬細胞的吞噬廓清能力、NK細胞活性。因此可以認為,黑木耳多糖AAP-10具有增強CPA免疫抑制小鼠免疫功能的作用,且在保健食品、特殊醫(yī)學(xué)用途食品等領(lǐng)域具有良好的應(yīng)用前景。

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