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    親水親脂-離子液體涂層復(fù)合固相萃取填料在黃曲霉毒素M1檢測中的應(yīng)用

    2018-10-22 07:09:08尚欣春沙芮錢瀅文洪霞
    中國乳品工業(yè) 2018年9期
    關(guān)鍵詞:吡咯烷酮萃取柱共聚物

    尚欣春,沙芮,錢瀅文,洪霞

    (1.甘肅省商業(yè)科技研究所,蘭州 730010;2.甘肅中商食品質(zhì)量檢驗(yàn)檢測有限公司,蘭州 730010)

    0 引 言

    黃曲霉毒素M1屬于黃曲霉毒素(Aflatoxins)一類結(jié)構(gòu)相似的化合物中的一種,該類毒素是由常見的黃曲霉菌(Asperillus Flavus)和寄生曲霉菌(Asperillus Parasiticus)產(chǎn)生的代謝產(chǎn)物,可以由黃曲霉毒素B1在體內(nèi)的肝微粒體單氧化酶系催化下,生成AFM 1,也可由一些黃曲霉菌和寄生曲霉直接產(chǎn)生[1]。AFM 1的呋喃環(huán)環(huán)氧結(jié)構(gòu)與體內(nèi)DNA嘌呤殘基共價(jià)結(jié)合,從而造成DNA的某些損傷,引起DNA結(jié)構(gòu)和功能的改變,產(chǎn)生癌變。由于缺乏行之有效的防治和去毒方法,因此針對食品特別是乳制品,制定嚴(yán)格的AFM 1限量標(biāo)準(zhǔn)就尤為重要,中國對嬰兒乳品中AFM 1的限量標(biāo)準(zhǔn)為不得檢出,及牛乳中0.5μg/kg。限量標(biāo)準(zhǔn)的實(shí)施必須建立靈敏、準(zhǔn)確、快捷的檢測方法,自發(fā)現(xiàn)牛奶中含有AFM 1以來,對AFM 1的檢測方法各國科學(xué)家做了大量的研究[2],取得了很大的進(jìn)展,現(xiàn)分類介紹如下。

    薄層色譜法(TLC)樣品經(jīng)提取、濃縮、薄層分離后,AFM 1在波長的紫外光下產(chǎn)生藍(lán)紫色熒光,根據(jù)其在薄層板上顯示熒光的最低檢出量與標(biāo)準(zhǔn)溶液的熒光強(qiáng)度相比較來測定含量。TLC操作復(fù)雜,AFM 1標(biāo)準(zhǔn)品濃度較高,潛在的污染性較高,特異性較差,靈敏度也相對較差,檢測耗時(shí)長,檢出限量為0.3μg,樣品回收率為67%(鮮奶),和80%(奶粉),不適合大批量樣品檢測[3-4]。需提取凈化的分析方法樣品前處理操作煩瑣,復(fù)雜,費(fèi)時(shí),勞動(dòng)強(qiáng)度大。ELISA法相比而言,操作簡便,快捷,污染較小,靈敏度也較高,適合批量樣品的普檢和篩選,但存在假陽性和假陰性的可能,且只能半定量[5]。高效液相色譜法(HPLC)自動(dòng)化程度高,穩(wěn)定性好,靈敏度高,但樣品前處理中一般采用免疫親和柱、C18固相萃取柱、HLB固相萃取柱等。均有不同特點(diǎn),免疫親和柱特異性好,但成本高,操作繁瑣[6-8];C18柱操作要求高,且目標(biāo)物容易殘留在柱體內(nèi),影響回收率;以二乙烯苯-N-乙烯吡咯烷酮共聚物為代表的聚合物基質(zhì)SPE填料(HLB)自出現(xiàn)以來就備受分析者的青睞。這種吸附劑是由親脂性的二乙烯苯和親水性的N-乙烯吡咯烷酮按照一定比例共聚而成,同時(shí)具有反相吸附及正相保留的特征,因此適用于極性及非極性化合物的分析。同時(shí),因?yàn)楸江h(huán)和N-乙烯吡咯烷酮官能團(tuán)作為該填料的骨架結(jié)構(gòu)存在,不會(huì)因干枯而發(fā)生團(tuán)聚,因此在實(shí)際使用過程中,既可以免去活化步驟,又可以不用擔(dān)心柱床干枯造成回收率下降。其柱回收率,穩(wěn)定性都很良好。雖然親水親脂共聚物微球在檢測中應(yīng)用較多,但使用方法均為滴加式的萃取柱,上樣、淋洗、洗脫時(shí)液體只能緩慢滴落,一般固相萃取時(shí)間為20~30 min[9]。而如何以共聚物微球?yàn)楣滔噍d體,在其表面進(jìn)一步修飾其他特殊物質(zhì),加速其萃取速度同樣值得探索[10-15]。

    離子液體是一種結(jié)構(gòu)及性質(zhì)可塑性很強(qiáng)的室溫熔融鹽,在合成催化,分離萃取,電化學(xué)等方面應(yīng)用很廣[16-17]。其中咪唑類離子液體對具有共軛結(jié)構(gòu)的物質(zhì)有良好的吸附特性。而將離子液體作為涂層,涂覆在二乙烯苯-N-乙烯吡咯烷酮共聚物固相載體表面形成固載化離子液體,同樣能顯現(xiàn)出不同性質(zhì)[18-19]。如何在此基礎(chǔ)上探索對乳制品中AFM 1具有快速、高效、穩(wěn)定吸附的新型固相萃取填料,尚未有報(bào)道。

    1 材料與方法

    1.1 材料與試劑

    N-甲基咪唑,分析純,阿拉丁試劑上海有限公司;1-氯正辛烷,優(yōu)級(jí)純,上海麥克林生化科技有限公司;六氟磷酸鉀,分析純,阿拉丁試劑上海有限公司;AFM 1標(biāo)準(zhǔn)品,標(biāo)準(zhǔn)品(97.5%),德國Dr.Ehrenstorfer公司;聚乙烯醇,分析純(500 U/mL),阿拉丁試劑上海有限公司;N-乙烯吡咯烷酮,色譜純,北京百靈威科技有限公司;二乙烯苯,分析純,阿拉丁試劑上海有限公司;偶氮二異丁腈,分析純,阿拉丁試劑上海有限公司;柱層析用200-300目硅膠,分析純,天津光復(fù)科技發(fā)展有限公司;中性氧化鋁,分析純,天津光復(fù)科技發(fā)展有限公司;大孔樹脂,分析純,天津光復(fù)科技發(fā)展有限公司;弗羅里硅土,分析純,天津光復(fù)科技發(fā)展有限公司;C18固相萃取填料,分析純,天津光復(fù)科技發(fā)展有限公司;牛奶陰性樣品,蘭州莊園乳業(yè)有限責(zé)任公司。

    1.2 儀器與設(shè)備

    液相色譜儀,島津20A,配熒光檢測器,島津科技有限公司;旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀,RE-52AA型,上海亞榮生化儀器廠;離心機(jī),RX-II型,天美中國科學(xué)儀器有限公司。

    1.3 方法

    1.3.1 離子液體合成

    根據(jù)文獻(xiàn)[16]修改如下:1-辛基-3-甲基咪唑氯化鹽的合成([C8MIM]Cl):稱取0.25 mol(20.53 g)N-甲基咪唑和0.258 mol(23.88 g)1-氯正辛烷于100 mL燒瓶中,加熱回流24 h,用熱乙酸乙酯多次洗滌反應(yīng)后的液體,棄去乙酸乙酯,70℃旋轉(zhuǎn)蒸發(fā),得到淡黃色粘稠液體,備用;1-辛基-3-甲基咪唑六氟磷酸鹽的合成([C8MIM][PF6]):稱取1-辛基-3-甲基咪唑氯化鹽35 g溶于150 mL蒸餾水中,加入六氟磷酸鉀48 g,攪拌0.5 h,分為兩層,棄去上層后,用蒸餾水反復(fù)洗滌除去氯離子,在洗滌過離子液體的水中滴加0.1 mol/L的硝酸銀溶液,直到不產(chǎn)生白色沉淀,證明氯離子洗滌干凈。70℃旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)去除水分,得到淡黃色黏稠液體。將該液體溶于200 mL色譜純甲醇中,加入10 g活性炭脫色。取上清液過大孔樹脂固相萃取柱,接收全部流出液,70℃旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)去除多余溶劑。得到無色透明黏稠液體,備用。

    1.3.2 固相載體二乙烯苯-N-乙烯吡咯烷酮共聚物微球合成

    根據(jù)文獻(xiàn)[11]修改如下:向250份三口燒瓶中加入75 mL蒸餾水和1 g聚乙烯醇粉末充分?jǐn)嚢枞芙庾鳛榉稚⑾鄠溆?。精密量?5 mL甲苯5 mL正辛烷9 gN-乙烯吡咯烷酮和15 g二乙烯苯至小燒杯中加入0.15 g偶氮二異丁腈混勻后倒入三口燒瓶中快速攪拌30 min加熱至80℃冷凝回流,1 500 r/min攪拌反應(yīng)12 h后停止反應(yīng),用水和甲醇清洗產(chǎn)物,于80℃下真空干燥4 h得二乙烯苯-N-乙烯吡咯烷酮共聚物微球,該共聚物微球粒徑大小為30~50μm。

    1.3.3 離子液體固載化

    秤取干燥的二乙烯苯-N-乙烯吡咯烷酮共聚物微球10 g,加入1-辛基-3-甲基咪唑六氟磷酸鹽離子液體4 g,甲醇15 mL,超聲處理30 min。于60℃下真空干燥2 h得到固相萃取填料。

    1.3.4 該填料固相萃取柱裝填

    稱取400 mg固相萃取填料于注射式固相萃取套管中,壓實(shí)填料,加蓋玻璃纖維墊片,給套管加蓋。得到AFM 1注射式超快速固相萃取柱。如圖1所示。

    圖1 AFM1注射式超快速固相萃取柱

    1.3.5 試劑準(zhǔn)備

    105 g/L亞鐵氰化鉀水溶液,220 g/L乙酸鋅3%乙酸水溶液,1 mol/L p H 7.0乙酸銨緩沖液。

    1.3.6 樣品前處理方法

    稱取發(fā)酵乳及固體乳粉、乳酪樣品5 g,加30 mL水加熱溶解;液態(tài)乳樣品直接稱取35 g,在樣品液中加入5 mL亞鐵氰化鉀溶液,5 mL乙酸鋅溶液,充分搖勻后再加入5 mL緩沖鹽溶液,于5 000 r/min離心3 min。得到沉淀和上清液,上清液待凈化富集。

    1.3.7 固相萃取過程及檢測方法

    圖2 AFM1標(biāo)準(zhǔn)及樣品色譜圖

    取自制固相萃取柱,用注射器向萃取柱中加入得到的所有樣品上清液,棄去流出液??刂戚腿∷俣刃∮?5 mL/min,即單個(gè)樣品上清液全部流出所需時(shí)間為2 min。上清液全部留出后,用注射器加入5 mL蒸餾水淋洗,棄去流出液,并通過10 mL空氣,將萃取柱中殘留水吹出。用注射器加入2 mL甲醇,并通過5 mL空氣,吹出萃取柱中液體,收集所有流出液,將流出液定容至2.00 mL。過0.45μm濾膜。進(jìn)行高效液相色譜儀測定。色譜條件:色譜柱:C18 4.6×250 mm分析柱;流動(dòng)相:水+乙腈(v)=60+40;流速:1 mL/min;柱溫:35℃;進(jìn)樣量:20μL;激發(fā)波長:365 nm,發(fā)射波長:425 nm。得到標(biāo)準(zhǔn)色譜圖和樣品色譜圖,如圖2所示。

    2 結(jié)果與討論

    2.1 離子液體對AFM 1吸附pH條件

    分別用0.5 mol/L p H值為1.0,2.0,3.0,4.0,5.0,6.0,7.0,8.0,9.0,10.0,11.0的乙酸銨緩沖液,配制0.1 μg/mL的AFM 1標(biāo)準(zhǔn)溶液,按1.3.7方法處理上述11中溶液,進(jìn)入液相色譜儀測定。結(jié)果如圖3所示。

    由圖3可知,當(dāng)樣品液p H<6時(shí),酸性漸強(qiáng),AFM 1容易與H+結(jié)合生成正離子鹽,吸附能力減弱;當(dāng)p H>8時(shí),堿性漸強(qiáng),AFM 1容易生成負(fù)離子鹽,吸附能力減弱。該填料對正負(fù)離子鹽類吸附效果不佳,僅對有共軛結(jié)構(gòu)的AFM 1有良好吸附。所以在樣品前處理步驟加入pH 7.0的緩沖溶液。

    圖3 固相萃取柱對不同pH樣品處理液的吸附效果

    2.2 填料中離子液體與固相載體比例及萃取速度對吸附效果的影響

    按1.3.3方法,制作離子液體與固相載體質(zhì)量比分別為 0∶10,0.5∶10,1∶10,2∶10,3∶10,4∶10,5∶10,7∶10,10∶10,20∶10,的固相萃取填料,并制作固相萃取柱,使用上述固相萃取柱,按照1.3.6和1.3.7方法選擇不同萃取速度處理50 ng/g的加標(biāo)純牛奶陰性樣品,所測得結(jié)果如表1所示。選擇檢測結(jié)果最接近50 ng/g,且消耗時(shí)間最短,試劑最少的條件為最優(yōu)條件。

    由表1可知,僅使用固相載體,不固載離子液體時(shí),雖然固相載體對AFM 1有一定的吸附效果,且隨過柱時(shí)間的增加吸附效果增加,但是增加的效果不夠理想,所以單純使用二乙烯苯-N-乙烯吡咯烷酮共聚物微球吸附AFM 1,樣品前處理耗時(shí)過長。隨著離子液體比例增加,固相萃取柱對目標(biāo)物的吸附效果也明顯增加,當(dāng)比例達(dá)到4∶10的時(shí)候,繼續(xù)增加離子液體比例,吸附效果增加緩慢,反而會(huì)增加檢測成本,所以綜合考慮選擇最佳條件為,離子液體與固相載體比例為4∶10,30 mL樣液過柱時(shí)間為2 min。

    2.3 固相萃取柱中填料用量對吸附效果的影響

    分別稱取 100 mg,200 mg,300 mg,400 mg,500 mg,600 mg,700 mg,800 mg,1000 mg固相萃取填料,按1.3.4方法制作含有不同質(zhì)量填料的固相萃取小柱,按照1.3.6和1.3.7方法處理50 ng/g的加標(biāo)純牛奶陰性樣品,所測得結(jié)果如圖4所示。

    由圖4可知,當(dāng)填料質(zhì)量<400 mg時(shí)由于樣品液需要快速過柱,填料過少不能有效的吸附目標(biāo)物;當(dāng)400 mg≤填料質(zhì)量≤600 mg時(shí),填料具有良好吸附;當(dāng)600 mg<填料質(zhì)量時(shí),由于填料過多,在洗脫步驟,2 mL洗脫液不能將所有目標(biāo)物洗脫,所以檢測結(jié)果會(huì)偏低??紤]檢測成本,選擇每只固相萃取柱含有400 mg填料。

    表1 不同離子液體與載體比例及不同萃取速度對萃取效果的影響 ng/g

    圖4 填料質(zhì)量對萃取效果影響

    2.4 多種固相載體對比

    選用硅膠,中性氧化鋁,大孔樹脂,弗羅里硅土,C18固相萃取填料及本實(shí)驗(yàn)合成的共聚物微球分別作為固相載體,按1.3.3方法制作離子液體固載化填料及固相萃取柱。按照1.3.6和1.3.7方法處理50ng/g的加標(biāo)純牛奶樣品,所測得結(jié)果及樣品液經(jīng)過固相萃取柱時(shí)的現(xiàn)象如表2所示。

    表2 不同材料作為離子液體的固相載體及其萃取效果

    由表2可知,硅膠、中性氧化鋁、弗羅里硅土為載體制作的固相萃取柱在萃取樣液時(shí)均流出乳白色液體懸濁液,待懸濁液分層后,下層為少量離子液體。說明這三種載體與離子液體之間作用力很微弱,外力作用下離子液體很容易從載體上脫落,導(dǎo)致吸附能力差,檢測結(jié)果偏低。大孔樹脂為載體的固相萃取柱在萃取樣液時(shí)均流出清澈液體,但上樣時(shí)阻力很小,觀察發(fā)現(xiàn)同樣400 mg大孔樹脂-離子液體填料比其他填料體積大,說明該填料非常松散,無法將目標(biāo)物完全萃取。C18填料為載體的固相萃取柱在萃取樣液時(shí)均流出清澈液體,但上樣時(shí)阻力很大,因?yàn)樗芤号cC18填料兼容性很差,不利于萃取進(jìn)行。而親水-親脂的共聚物微球-離子液體填料,既滿足載體與離子液體之間的作用力很牢固,同時(shí)滿足與上樣液兼容性良好。

    2.5 固相萃取柱最大吸附上限

    按1.3.3方法制作固相萃取柱。用p H為7的乙酸銨緩沖液分別配制含有AFM 1含量為100 ng,200 ng,500 ng,1 000 ng,2 000 ng,4 000 ng,5 000 ng,5 500 ng,6 000 ng,7 000 ng,8000 ng的溶液30 mL。按照1.3.6和1.3.7方法處理上述溶液,所測得結(jié)果如圖5所示。

    圖5 一定質(zhì)量的填料可有效吸附黃曲霉毒素M1最大質(zhì)量

    由圖5可知,當(dāng)樣液中AFM 1含量≤5 000 ng時(shí),400 mg容量的固相萃取柱能快速、穩(wěn)定、高效的萃取其中目標(biāo)物。國家標(biāo)準(zhǔn)限量遠(yuǎn)遠(yuǎn)小于5 000 ng,所以該固相萃取柱的柱容量也完全滿足正常檢測需要。

    2.6 方法加標(biāo)回收率及方法穩(wěn)定性實(shí)驗(yàn)

    按照1.3.6和1.3.7方法處理三個(gè)加標(biāo)水平的純牛奶陽性樣品,每個(gè)樣品6平行,回收率及RSD值結(jié)果圖表3所示。

    由表3可知,該方法回收率為90.1%~92.7%,RSD%≤2%,證明該方法結(jié)果穩(wěn)定,滿足檢測要求。

    2.7 方法線性范圍、線性方程、檢出限參數(shù)

    以線性范圍評(píng)價(jià)該方法的檢測濃度范圍,當(dāng)3倍信噪比對應(yīng)的濃度為儀器檢出限,以最低檢出限評(píng)價(jià)該方法靈敏度,結(jié)果見表4。

    由表4可知,該方法線性良好。方法采用濃縮的方式處理樣品,固體乳樣品濃縮2.5倍,液體乳樣品濃縮17.5倍,所以固體乳樣品方法檢出限為0.4 ng/g,液體乳樣品方法檢出限為0.06 ng/g。該方法靈敏度高,適合AFM 1的痕量檢測。

    表3 黃曲霉毒素M1 3個(gè)加標(biāo)水平,實(shí)際樣品回收率及RSD值實(shí)驗(yàn)結(jié)果

    表4 標(biāo)準(zhǔn)曲線的線性范圍、回歸方程、相關(guān)系數(shù)、檢出限

    2.8 方法實(shí)際應(yīng)用

    在市場及超市隨機(jī)抽取50份樣品,其中純牛奶20份,酸奶10份,乳飲料10份,奶糖4份,奶油3份,奶酪3份。按照1.3.6和1.3.7方法處理,并檢測其中AFM 1含量。50份樣品中僅有一份純牛奶樣品出現(xiàn)漲袋現(xiàn)象,且樣品有沉淀出現(xiàn),該樣品AFM 1含量為1.53 ng/g。其余樣品均未檢出含有AFM 1。

    3 結(jié) 論

    提出超快速固相萃取的想法,固相萃取過程僅需2 min。并結(jié)合親水親脂共聚物微球-離子液體涂層,形成復(fù)合固相萃取填料在pH為6~8時(shí),對乳及乳制品樣品處理液中AFM 1吸附能力強(qiáng),吸附速度快,吸附效果穩(wěn)定。整個(gè)試驗(yàn)操作簡便快捷。克服了常規(guī)液相色譜法中操作繁瑣,萃取柱高成本,前處理耗時(shí)長的缺點(diǎn)。同時(shí)該方法回收率、精密度良好,準(zhǔn)確度高,重顯性好,在實(shí)際樣品中應(yīng)用良好。為超快速固相萃取及AFM 1檢測方法提供參考。

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