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    羊口瘡病毒F1L、B2L基因重組腺病毒構(gòu)建及對小鼠的免疫效果分析

    2018-09-03 03:26:00戴建軍張德福吳彩鳳張樹山
    畜牧獸醫(yī)學(xué)報 2018年8期
    關(guān)鍵詞:腺病毒質(zhì)粒淋巴細(xì)胞

    陳 曉,葛 雷,戴建軍*,李 麗,張德福,吳彩鳳,張樹山

    (1.上海市農(nóng)業(yè)科學(xué)院畜牧獸醫(yī)研究所,上海 201106;. 錦州醫(yī)科大學(xué)畜牧獸醫(yī)學(xué)院,錦州 121001;3. 上海市農(nóng)業(yè)遺傳育種重點實驗室動物遺傳工程研究室,上海 201106)

    羊口瘡是以山羊和綿羊為易感動物的高度傳染性人畜共患病,近年來打破地域界限,嚴(yán)重制約畜牧業(yè)經(jīng)濟發(fā)展[1]。該病由羊口瘡病毒(orf virus, ORFV)所致,為痘病毒科副痘病毒屬雙鏈線性DNA病毒[2]。ORFV編碼的許多毒力因子能夠在免疫系統(tǒng)中發(fā)揮其干擾宿主的能力[3],這種免疫逃避機制促使病程反復(fù)持續(xù),盛行局面難以控制。在感染動物中除羊外,還包括馬鹿、羚羊、麝牛、駱駝、松鼠、海豹、犬貓以及人[4]。與患病動物或其污染物接觸感染后,病毒首先侵襲上皮細(xì)胞破壞其完整性,其次迅速完成復(fù)制,最終患處會出現(xiàn)菜花樣增生的典型病灶[5]。通常在口唇、外陰、蹄部可見水泡和膿皰破潰后形成的結(jié)痂病變[6],痊愈后,宿主痂皮內(nèi)殘存的病毒顆粒仍保持感染力,可作為傳染源導(dǎo)致疾病再度復(fù)發(fā)。

    目前ORFV的預(yù)防措施現(xiàn)仍以免疫弱毒疫苗為主,存在毒力返強的可能,且實際免疫效果并不是十分理想,因此新型疫苗的研制意義重大[7]。腺病毒載體系統(tǒng)作為重組腺病毒載體活疫苗應(yīng)用研究的理想載體,其優(yōu)勢表現(xiàn)在感染能力強、宿主范圍廣、免疫方式多、載體容量大、病毒滴度高、安全性和免疫性好等諸多方面[8]。本研究從前期分離的ORFV上海株中擴增F1L和B2L保護性抗原基因,構(gòu)建串聯(lián)表達(dá)該雙基因的重組腺病毒,并通過小鼠免疫試驗初步評價其免疫特性,為ORFV新型疫苗的研發(fā)奠定基礎(chǔ)。

    1 材料與方法

    1.1 細(xì)胞、病毒、主要試劑及實驗動物

    腺病毒表達(dá)系統(tǒng)(含CMV啟動子、T2A、P2A肽及EGFP熒光蛋白等)、大腸桿菌stbl3株、HEK-293細(xì)胞和轉(zhuǎn)染試劑Polybrene均為廣州賽業(yè)生物科技有限公司產(chǎn)品;ORFV-F416上海分離株、MDBK細(xì)胞、羊抗ORFV血清由本實驗室保存;限制性內(nèi)切酶HindⅢ、XhoⅠ購自Thermo公司,限制性內(nèi)切酶PacⅠ購自NEW ENGLAND BioLabs;Alexa Fluor 647-兔抗山羊IgG購自Jackson ImmunoResearch;Mouse IgG ELISA Kit 購自上海研生實業(yè)有限公司;6~8周齡ICR雌性小鼠,購于北京維通利華實驗動物技術(shù)有限公司。

    1.2 引物設(shè)計與基因擴增

    F1L和B2L基因的引物信息見表1。經(jīng)PCR擴增和測序,獲得ORFV-F416上海分離株的F1L和B2L基因序列。

    表1 擴增F1L和B2L基因的引物序列

    1.3 重組穿梭質(zhì)粒與重組腺病毒的構(gòu)建

    F1L和B2L基因經(jīng)測序比對后,與腺病毒穿梭載體pAd-CMV、T2A、P2A和EGF基因連接,轉(zhuǎn)化DH5α感受態(tài)株,提取陽性克隆,將PCR、HindⅢ和XhoⅠ雙酶切鑒定正確的重組質(zhì)粒命名pAd-CMV-F1L-T2A-B2L-P2A-EGFP。PacⅠ內(nèi)切酶線性化pAd-CMV-F1L-T2A-B2L-P2A-EGFP,與骨架質(zhì)粒pAdEasy-1轉(zhuǎn)入大腸桿菌stbl3感受態(tài)株實現(xiàn)同源重組并提取質(zhì)粒,經(jīng)PCR、酶切鑒定正確的重組質(zhì)粒命名pAdEasy-CMV-F1L-T2A-B2L-P2A-EGFP。該質(zhì)粒與Polybrene共轉(zhuǎn)染細(xì)胞融合度為70%~85%的HEK-293細(xì)胞,培養(yǎng)至細(xì)胞內(nèi)可見細(xì)胞病變效應(yīng)(CPE)及大范圍的熒光綠團,-80 ℃反復(fù)凍融收獲重組病毒,命名為pAV-CMV-F1L-T2A-B2L-P2A-EGFP。同理,制備不含ORFV目的基因的重組腺病毒pAV-CMV-EGFP為對照。

    1.4 重組腺病毒MDBK細(xì)胞內(nèi)擴增與滴度測定

    pAV-CMV-F1L-T2A-B2L-P2A-EGFP和pAV-CMV-EGFP分別轉(zhuǎn)染MDBK細(xì)胞,待細(xì)胞出現(xiàn)CPE和綠色光團后反復(fù)凍融3次收毒,以3 000 r·min-1離心10 min取上清,并以10-1~10-10梯度稀釋病毒上清,接種于96孔板內(nèi)單層MDBK細(xì)胞,每個稀釋度對應(yīng)縱排8個孔,末端兩縱排為對照孔,37 ℃、5% CO2培養(yǎng)箱內(nèi)吸附2 h后,棄上清補加5% FBS的細(xì)胞維持液,于相同條件下繼續(xù)培養(yǎng)5 d,按Karber 法測定病毒液效價。

    1.5 重組腺病毒表達(dá)后檢測

    1.5.1 重組腺病毒F1L、B2L基因檢測 使用病毒基因組試劑盒提取重組腺病毒(pAV-CMV-F1L-T2A-B2L-P2A-EGFP、pAV-CMV-EGFP)DNA,PCR鑒定目的基因。

    1.5.2 重組腺病毒間接免疫熒光(IFA)檢測 轉(zhuǎn)染后的MDBK細(xì)胞經(jīng)固定、透化、封閉、一抗(羊抗ORFV血清)、二抗(Alexa Fluor 647-兔抗山羊IgG)孵育及清洗干燥后,熒光顯微鏡下觀察熒光生成情況。

    1.6 重組腺病毒免疫小鼠及免疫效果評價

    1.6.1 小鼠免疫接種 將20只ICR雌性小鼠隨機分2組,每組10只,分別在同一位置肌內(nèi)注射ORFV重組腺病毒和PBS。初免后間隔2周實施二免。免疫方案見表2。各組小鼠在0~5周斷尾采血,分離所獲血清經(jīng)56 ℃ 30 min滅活,-20 ℃存放備用。

    表2 小鼠免疫方案

    1.6.2 免疫小鼠IgG抗體水平檢測 使用小鼠IgG ELISA定量檢測試劑盒檢測免疫0~5周小鼠的IgG抗體水平。通過標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)量濃度(800、400、200、100、50 ng·mL-1)與OD值計算標(biāo)準(zhǔn)曲線的直線回歸方程。

    1.6.3 免疫小鼠MTT法測定脾淋巴細(xì)胞增殖 每組各取二免后第3周小鼠2只,頸椎脫臼處死,無菌分離脾制備小鼠脾淋巴細(xì)胞懸液。用RPMI-1640培養(yǎng)基調(diào)整細(xì)胞濃度為2×105·mL-1,以每孔100 μL接入96孔板內(nèi),培養(yǎng)孔內(nèi)各加入50 μL 刀豆素(ConA 5 μg·mL-1)、50 μL滅活ORFV及50 μL RPMI-1640培養(yǎng)液,每孔各3個重復(fù),另設(shè)3個空白對照孔。各孔混勻后于37 ℃、5% CO2培養(yǎng)箱內(nèi)培養(yǎng)48 h,在臨結(jié)束前4 h加入10 μL MTT(5 mg·mL-1)繼續(xù)培養(yǎng)4 h后,每孔加入100 μL Formanzan溶液,培養(yǎng)箱內(nèi)再次孵育4 h,用酶標(biāo)儀在570 nm處測定各孔的OD值。

    1.6.4 小鼠攻毒試驗 2組小鼠在第5周使用ORFV-F416毒株細(xì)胞上清液(1×105.6TCID50)進行攻毒試驗,每只皮下接種500 μL,另取同期飼養(yǎng)的健康小鼠作為空白對照。逐日觀察小鼠的精神狀態(tài),并記錄各組小鼠發(fā)病情況和體重。

    1.7 數(shù)據(jù)的統(tǒng)計與分析

    2 結(jié) 果

    2.1 重組穿梭質(zhì)粒和重組腺病毒的構(gòu)建

    先構(gòu)建的ORFV重組腺病毒載體pAd-CMV-F1L-T2A-B2L-P2A-EGFP,經(jīng)PCR擴增,顯示F1L(1 026 bp)、B2L(1 134 bp)、F1L-T2A-B2L(2 223 bp)基因的大小與預(yù)期符合;HindⅢ和XhoⅠ雙酶切后出現(xiàn)35 283和2 203 bp兩條帶,表明ORFV目的基因成功插入腺病毒穿梭載體(圖1)。構(gòu)建重組腺病毒質(zhì)粒pAdEasy-CMV-F1L-T2A-B2L-P2A-EGFP,經(jīng)PacⅠ酶切鑒定,酶切后有約2和35 kb的片段,與預(yù)期大小符合(圖略)。

    重組腺病毒質(zhì)粒經(jīng)轉(zhuǎn)染HEK-293細(xì)胞,出現(xiàn)病變效應(yīng)綠色熒光,表明成功獲得重組腺病毒pAV-CMV-F1L-T2A-B2L-P2A-EGFP和pAV-CMV-EGFP。

    2.2 重組腺病毒MDBK細(xì)胞內(nèi)表達(dá)與毒力測定

    pAV-CMV-F1L-T2A-B2L-P2A-EGFP和pAV-CMV-EGFP分別感染MDBK細(xì)胞,研究其能否在細(xì)胞中表達(dá),結(jié)果轉(zhuǎn)染后72 h觀察到細(xì)胞圓縮、病變效應(yīng)明顯,熒光顯微鏡下細(xì)胞內(nèi)可見綠色光團,而對照組MDBK細(xì)胞生長良好,無CPE和熒光(圖2)。將純化后的重組腺病毒連續(xù)10倍10個梯度稀釋后,感染MDBK細(xì)胞,Karber法進行毒力計算,結(jié)果:pAV-CMV-F1L-T2A-B2L-P2A-EGFP的TCID50=1×10-5.375·mL-1;pAV-CMV-EGFP的TCID50=1×10-6.875·mL-1。

    M. DL2000相對分子質(zhì)量標(biāo)準(zhǔn);1. pAd-CMV-F1L-T2A-B2L-P2A-EGFP陰性對照;2. pAd-CMV-F1L-T2A-B2L-P2A-EGFP F1L基因;3. pAd-CMV-F1L-T2A-B2L-P2A-EGFP B2L基因;4. pAd-CMV-F1L-T2A-B2L-P2A-EGFP F1L-T2A-B2L基因;M1. DL10000 相對分子質(zhì)量標(biāo)準(zhǔn);5. HindⅢ單酶切產(chǎn)物;6. XhoⅠ單酶切產(chǎn)物;7. HindⅢ、XhoⅠ雙酶切產(chǎn)物M. DL2000 marker; 1. pAd-CMV-F1L-T2A-B2L-P2A-EGFP negative control; 2. pAd-CMV-F1L-T2A-B2L-P2A-EGFP F1L gene; 3. pAd-CMV-F1L-T2A-B2L-P2A-EGFP B2L gene; 4. pAd-CMV-F1L-T2A-B2L-P2A-EGFP F1L-T2A-B2L gene; M1. DL10000 marker; 5. HindⅢ single digestion products; 6. XhoⅠ single digestion products; 7. HindⅢ, XhoⅠ double digestion products圖1 重組腺病毒載體的 PCR鑒定和HindⅢ、XhoⅠ酶切鑒定Fig.1 PCR identification of recombinant adenovirus vector and HindⅢ, XhoⅠ digestion identification

    A. 感染前MDBK細(xì)胞;B. 感染后72 h的DMBK細(xì)胞;C. 感染后熒光下MDBK細(xì)胞A. Pre-infected MDBK cells; B. DMBK cells at 72 h after infection; C. MDBK cells after infection under fluorescence圖2 重組腺病毒感染MDBK細(xì)胞Fig.2 Recombinant adenovirus infects MDBK cells

    2.3 重組腺病毒表達(dá)后鑒定

    2.3.1 重組腺病毒F1L、B2L基因檢測 以MDBK細(xì)胞擴增的重組腺病毒DNA為底物,用F1L上下游引物、B2L上下游引物及F1L上游引物和B2L下游引物分別擴增F1L、B2L、F1L-T2A-B2L基因,結(jié)果見圖3。pAV-CMV-F1L-T2A-B2L-P2A-EGFP的DNA中擴增出F1L(1 026 bp)、B2L(1 134 bp)、F1L-T2A-B2L(2 223 bp),與預(yù)期大小一致,而pAV-CMV-EGFP無目的條帶出現(xiàn)。

    2.3.2 重組腺病毒間接免疫熒光檢測 結(jié)果見圖4,轉(zhuǎn)染pAV-CMV-F1L-T2A-B2L-P2A-EGFP的細(xì)胞樣品有紅色熒光,表明與抗體發(fā)生反應(yīng),F(xiàn)1L、B2L蛋白有表達(dá),而轉(zhuǎn)染pAV-CMV-EGFP的樣品并無該現(xiàn)象。

    M. DL2000相對分子質(zhì)量標(biāo)準(zhǔn);1. pAV-CMV-F1L-T2A-B2L-P2A-EGFP F1L基因;2. pAV-CMV-F1L-T2A-B2L-P2A-EGFP B2L基因;3. pAV-CMV-F1L-T2A-B2L-P2A-EGFP F1L-T2A-B2L基因;4. pAV-CMV-EGFP F1L基因;5. pAV-CMV-EGFP B2L基因;6. pAV-CMV-EGFP F1L-T2A-B2L基因M. DL2000 marker; 1. pAV-CMV-F1L-T2A-B2L-P2A-EGFP F1L gene; 2. pAV-CMV-F1L-T2A-B2L-P2A-EGFP B2L gene; 3. pAV-CMV-F1L-T2A-B2L-P2A-EGFP F1L-T2A-B2L gene; 4. pAV-CMV-EGFP F1L gene; 5. pAV-CMV-EGFP B2L gene; 6. pAV-CMV-EGFP F1L-T2A-B2L gene圖3 重組腺病毒F1L、B2L基因PCR鑒定Fig.3 PCR amplification for identifying F1L, B2L genes of the recombinant adenovirus

    A. 轉(zhuǎn)染pAV-CMV-F1L-T2A-B2L-P2A-EGFP;B. 轉(zhuǎn)染pAV-CMV-EGFPA. Transfection of pAV-CMV-F1L-T2A-B2L-P2A-EGFP; B. Transfection of pAV-CMV-EGFP圖4 IFA間接免疫熒光檢測Fig.4 IFA indirect immunofluorescence assay

    2.4 重組腺病毒免疫效果評價

    2.4.1 小鼠IgG酶聯(lián)免疫分析 IgG酶聯(lián)免疫分析結(jié)果見圖5:pAV-CMV-F1L-T2A-B2L-P2A-EGFP免疫組小鼠初免第1周抗體水平明顯升高,且與PBS組差異顯著(P<0.05),第2、3周抗體水平極顯著高于PBS組(P<0.01),二免后第4周達(dá)到峰值——(134.13±8.01) ng·mL-1,極顯著高于PBS組(P<0.01),第5周抗體水平開始下降,仍顯著高于PBS組(P<0.05);PBS組小鼠抗體水平穩(wěn)定無明顯波動。

    與PBS組比較, **.P<0.01, *.P<0.05,下同Compared with PBS group, **.P<0.01, *.P<0.05. The same as below圖5 小鼠血清IgG含量測定Fig.5 Determination of serum IgG in mice

    2.4.2 小鼠T淋巴細(xì)胞增殖結(jié)果 小鼠脾淋巴細(xì)胞經(jīng)非特異性刺激(ConA)、特異性刺激(滅活ORFV)和無刺激(RPMI-1640)處理后,淋巴細(xì)胞增殖情況如圖6所示。ConA刺激后,ORFV重組腺病毒組OD值高于PBS組,但兩者之間均無顯著差異(P>0.05);ORFV重組腺病毒組對特異性抗原ORFV表現(xiàn)出明顯的T淋巴細(xì)胞增殖能力,其OD值極顯著高于PBS組(P<0.01);無刺激組顯示,ORFV重組腺病毒組OD值極顯著高于PBS組(P<0.01)。ORFV重組腺病毒組在3種處理下脾淋巴細(xì)胞均出現(xiàn)增殖現(xiàn)象。

    1. pAV-CMV-F1L-T2A-B2L-P2A-EGFP; 2. PBS圖6 小鼠脾淋巴細(xì)胞增殖試驗Fig.6 Spleen lymphocyte proliferation test in mice

    2.4.3 小鼠攻毒保護效力 小鼠攻毒后第9~11天,PBS和pAV-CMV-F1L-T2A-B2L-P2A-EGFP兩組剩余的8只小鼠中分別有4只(50%)、1只(12.5%)小鼠出現(xiàn)精神沉郁、弓背,攻毒部位可見皮毛松亂,有啃咬現(xiàn)象。攻毒后6~8周內(nèi)PBS組小鼠體重明顯降低,整體采食量減少; pAV-CMV-F1L-T2A-B2L-P2A-EGFP組小鼠體重逐漸增加,接近空白對照組;而未攻毒組小鼠體重值趨于穩(wěn)定,說明ORFV重組腺病毒呈現(xiàn)一定的保護效果,見圖7。

    3 討 論

    羊口瘡作為一種病毒性傳染病已呈現(xiàn)全球性暴發(fā),毒株的類型日新月異,易感物種日益擴增,活病毒逃逸且尚無特效藥物治愈,這些現(xiàn)象致使病程持續(xù)蔓延,嚴(yán)重牽制著世界各地養(yǎng)羊業(yè)規(guī)模化的迅速良好發(fā)展。腺病毒基因表達(dá)載體其基因組能夠承載多種異源基因,對靜止和分裂期細(xì)胞均可轉(zhuǎn)染,目前廣泛用于基因疫苗的研究[9],在人和動物的腺病毒載體構(gòu)建及臨床應(yīng)用上均有成功的案例[10-13]。ORFV的F1L和B2L基因是兩個重要的保護性抗原基因,其中F1L蛋白可介導(dǎo)細(xì)胞免疫,引起機體產(chǎn)生免疫反應(yīng),被認(rèn)為是羊口瘡亞單位疫苗研制的標(biāo)準(zhǔn)抗原[14];B2L蛋白則可刺激機體產(chǎn)生抗體反應(yīng),促使淋巴細(xì)胞增殖[15]。盡管ORFV以細(xì)胞免疫為主,而體液免疫水平相對較低,但因該兩種蛋白具有較好的免疫原性,本研究將F1L、B2L兩基因串聯(lián),構(gòu)建ORFV雙基因重組腺病毒載體,以期對動物機體產(chǎn)生更好的免疫保護作用。

    本研究成功包裝出ORFV重組腺病毒,可根據(jù)綠色熒光蛋白基因在轉(zhuǎn)染細(xì)胞中是否產(chǎn)生綠色熒光進行鑒定篩選。獲得pAV-CMV-F1L-T2A-B2L-P2A-EGFP重組腺病毒并感染MDBK細(xì)胞,經(jīng)PCR、IFA檢測,結(jié)果表明,該重組腺病毒能夠穩(wěn)定攜帶F1L、B2L基因。毒力測定結(jié)果顯示,空載體pAV-CMV-EGFP的滴度(TCID50=1×10-6.875·mL-1)遠(yuǎn)高于pAV-CMV-F1L-T2A-B2L-P2A-EGFP的滴度(TCID50=1×10-5.375·mL-1),可能由于羊口瘡病毒重組腺病毒導(dǎo)入的外源基因(F1L、B2L、T2A、P2A)較多,進而對腺病毒的繁殖速度有所影響。這與楊玉艾等[16]研究的豬瘟病毒E0、E2基因構(gòu)建的重組腺病毒rAd-E0-E2滴度低于其空載體rAd-CMV滴度的結(jié)果相一致。

    在免疫策略上研究證明,初次免疫后再次加強免疫方式可全面激發(fā)體液免疫和細(xì)胞免疫應(yīng)答水平[17-18]。本研究采用相同免疫方式免疫ICR小鼠,ORFV重組腺病毒組IgG OD值明顯高于PBS對照組,由此可見ORFV重組腺病毒可快速刺激機體產(chǎn)生抗體,說明所構(gòu)建的羊口瘡病毒重組腺病毒能夠迅速刺激小鼠機體產(chǎn)生體液免疫應(yīng)答。此外,小鼠脾淋巴細(xì)胞增殖試驗結(jié)果顯示,ORFV重組腺病毒免疫小鼠對細(xì)胞免疫應(yīng)答水平也有所促進,它對特異性抗原ORFV和非特異性ConA蛋白抗原的刺激均可誘導(dǎo)T淋巴細(xì)胞增殖,但對非特異性抗原刺激表現(xiàn)的增殖能力較強,符合趙魁[19]的試驗結(jié)果,這表明經(jīng)pAV-CMV-F1L-T2A-B2L-P2A-EGFP免疫后,小鼠的免疫系統(tǒng)在一定程度上處于高活化狀態(tài)。

    以小鼠攻毒試驗對所構(gòu)建的羊口瘡病毒重組腺病毒進行安全性和效果評價,ORFV重組腺病毒免疫組小鼠體重趨于穩(wěn)定,在ORFV攻毒后體重仍呈上升趨勢,接近于未攻毒組,說明該免疫組并未影響小鼠整體正常采食生長狀況,僅有1只小鼠攻毒后精神狀態(tài)不佳,結(jié)果提示能夠提供一定的安全免疫保護作用。但本研究中,各免疫組小鼠在攻毒部位均未見特征性結(jié)痂病變及死亡情況,這可能與小鼠品系、病原毒性、攻毒劑量等因素相關(guān)。另外,腺病毒大劑量使用通常會引起嚴(yán)重的免疫反應(yīng)[20],甚至引發(fā)組織損傷[21],因而免疫方法、免疫劑量、疫苗的種類及抗原蛋白表達(dá)水平都有待于進一步優(yōu)化和研究。

    4 結(jié) 論

    成功構(gòu)建ORFV的F1L、B2L基因串聯(lián)表達(dá)的重組腺病毒,免疫小鼠后能夠刺激小鼠產(chǎn)生體液免疫和細(xì)胞免疫應(yīng)答,且未影響小鼠正常采食,保護效力較好。該研究可為ORFV DNA疫苗的研制提供應(yīng)用和理論依據(jù)。

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