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      紅景天苷通過降低氧化應(yīng)激介導(dǎo)氨基糖苷類藥物耳毒性的抑制作用

      2018-08-06 03:17:22于姝媛李浩楠朱紫嘉王蘋杜波
      關(guān)鍵詞:基底膜毛細(xì)胞慶大霉素

      于姝媛 李浩楠 朱紫嘉 王蘋 杜波

      近年來研究發(fā)現(xiàn)噪聲、增齡、耳毒性藥物以及耳蝸缺血再灌注引起的聽力損失,都與活性氧自由基氧化應(yīng)激損傷有關(guān)[1]。紅景天苷(salidroside,SA)作為紅景天屬植物中廣泛存在的酚苷類化合物,可從植物的根、莖中提取,亦可通過生物合成、化學(xué)合成等途徑合成[2],具有天然抗氧化作用。Zhang等[3]通過大鼠原代培養(yǎng)皮層神經(jīng)元細(xì)胞模型,發(fā)現(xiàn)紅景天苷對氯化鈷誘導(dǎo)的缺氧損傷的保護(hù)作用呈劑量依賴性,認(rèn)為與紅景天苷能夠提高神經(jīng)元HIF-1的表達(dá),降低細(xì)胞內(nèi)活性氧水平,抑制核轉(zhuǎn)錄因子-кB蛋白的超表達(dá)有關(guān)。也有研究表明紅景天苷可激活NRF2信號傳導(dǎo)通路,促進(jìn)NRF2核轉(zhuǎn)位,通過增加下游抗氧化酶表達(dá)來降低氧化應(yīng)激水平,從而減輕氧自由基對心臟的損害[4]。但紅景天苷是否具有抵抗藥物耳毒性尚未見報(bào)道。本研究利用耳蝸基底膜離體培養(yǎng)技術(shù),離體水平觀察SA藥物對毛細(xì)胞損傷的保護(hù)效應(yīng),并探討可能的分子機(jī)制。

      1 材料及方法

      1.1 主要實(shí)驗(yàn)材料

      DMEM-F12培養(yǎng)基,胎牛血清為Invitrogen公司產(chǎn)品。丙二醛(malondialdehyde,MDA)測試盒,谷胱甘肽過氧化物酶(GSH-PX)測試盒,超氧化物歧化酶(superoxide dismutase,SOD)測定試劑盒購于南京建成科技有限公司。cDNA第一鏈合成試劑和qPCR擴(kuò)增試劑盒為羅氏診斷產(chǎn)品。

      1.2 實(shí)驗(yàn)方法

      1.2.1 耳蝸基底膜分離培養(yǎng) 取出生后4天的大鼠(由吉林大學(xué)醫(yī)學(xué)部實(shí)驗(yàn)動(dòng)物中心提供)。取材前先準(zhǔn)備培養(yǎng)基,在直徑為35 mm的培養(yǎng)皿中加入完全培養(yǎng)液(1:1 DMEM/F12+10% FBS+100 U青霉素)500 μl,室溫放置30 min;在無菌條件下將大鼠斷頭取出聽泡,于顯微鏡下去除螺旋韌帶分離耳蝸基底膜。將基底膜平鋪在預(yù)先加入培養(yǎng)基的培養(yǎng)皿底部;3 h后向培養(yǎng)皿中補(bǔ)充1000 μl完全培養(yǎng)基,于37℃,5%CO2飽和濕度培養(yǎng)。

      1.2.2 實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì) 取出生4天的Wistar大鼠,分離耳蝸基底膜,培養(yǎng)過夜。隨機(jī)分為4組①對照組:正常培養(yǎng)的耳蝸基底膜培養(yǎng)24 h;②模型組:0.2 mmol/L的慶大霉素(gentamin,GM)作用24 h;③保護(hù)組:先用400 μmol/L的SA預(yù)處理培養(yǎng)耳蝸基底膜3 h后加入等濃度的GM繼續(xù)培養(yǎng)24 h;④單純SA作用組:為400 μmol/L的SA作用24 h。

      1.2.3 Phalloidin染色標(biāo)記毛細(xì)胞F-actin培養(yǎng)結(jié)束棄掉培養(yǎng)基,加入4%的多聚甲醛固定液固定30 min,用PBS清洗3遍后加入1%的Triton X-100處理20 min;加入TRITC標(biāo)記的Phalloidin溶液(1:200)稀釋,常溫染色20 min;甘油封片,激光共聚焦顯微鏡觀察,照相。統(tǒng)計(jì)在耳蝸基底膜中的毛細(xì)胞存活數(shù)目,每個(gè)條件分別選擇中、底回共5個(gè)視野,每個(gè)視野計(jì)數(shù)長度為200 μM。然后取平均值。

      1.2.4 MDA、SOD和GSH-PX活力的測定 利用硫代巴比妥酸法(TBA)法檢測MDA的活力,利用黃嘌呤氧化酶法測定SOD活力,用二硫?qū)Χ趸郊姿岱y定GSH-PX的活力。將各組細(xì)胞制成10%勻漿后按照說明書的離心速度和時(shí)間收集上清液。并按照個(gè)說明書的方法進(jìn)行試驗(yàn)操作。以紫外分光光度計(jì)測其吸光度值。并按照說明書公式進(jìn)行計(jì)算MDA,SOD,GSH-PX活力。

      1.2.5 熒光實(shí)時(shí)定量PCR檢測NRF-2,HO-1以及NQO1 mRNA的表達(dá)用Trizol裂解培養(yǎng)好的各組細(xì)胞,提取總RNA,瓊脂糖凝膠電泳觀察RNA完整性,紫外分光光度計(jì)測RNA的濃度和純度。取RNA5 μg反轉(zhuǎn)錄合成cDNA,按羅氏反轉(zhuǎn)錄試劑盒說明操作。引物序列為NRF2-F:5-CATTAGTCAGTCGCTCTC-3,NRF2-R:5-ACCGTGCCTTCAGTGTGC-3,GAPDH-F:5-GGTGCTGAGTATGTCGTGGA-3,GAPDH-R:5-TTCAGCTCTGGGATGACCTT-3,HO-1-F:5-GAGAGCATGTCC CAGGATTT-3,HO-1-R:5-GGTTCTGTTGTTTCGCTCT-3,NQO1-F;5-GCGTCTGGAGACTGTCTGGG-3,NQO1-R 5-CGGCTGGAATGGACTTGC-3。根據(jù)羅氏PCR試劑盒配置反應(yīng)體系,cDNA模板為2 μl,上下游引物分別加1 μl(10 um),F(xiàn)astStart Essential DNA Green Master10 μl,超純水6 μl,混勻離心后放入羅氏Light Cycler PCR儀器中進(jìn)行PCR擴(kuò)增,擴(kuò)增程序:95 ℃,10 min變性;然后95℃,10 s;55 ℃,10 s;72 ℃,15 s延伸收集測熒光,循環(huán)40次,72 ℃延伸10 min,檢測PCR產(chǎn)物溶解曲線。以GAPDH作為內(nèi)參照,依據(jù)公式Fold change=2-△△Ct計(jì)算NRF2,HO-1,NQO1 mRNA的相對含量。

      2 結(jié)果

      2.1 大鼠耳蝸毛細(xì)胞染色觀察

      TRITC標(biāo)記的Phalloidin染色毛細(xì)胞,共聚焦顯微鏡下對照組耳蝸毛細(xì)胞呈紅色熒光,3排外毛細(xì)胞和l排內(nèi)毛細(xì)胞排列整齊,纖毛結(jié)構(gòu)清晰。GM作用24 h,外毛細(xì)胞排列紊亂,纖毛變形,出現(xiàn)毛細(xì)胞缺失。底回最為嚴(yán)重,頂回未見明顯缺失。計(jì)數(shù)中底回外毛細(xì)胞缺失率為(38.6±8.92)%,內(nèi)毛細(xì)胞缺失率為(41.5±6.42)%。SA預(yù)處理組內(nèi)外毛細(xì)胞缺失率分別為(9.76±3.34)%和(11.38±7.14)%,與GM作用組相比毛細(xì)胞存活明顯增加(P<0.01),如圖1。

      圖1 耳蝸基底膜激光共聚焦掃描圖像 A:空白對照組,為正常耳蝸基底膜培養(yǎng)24 h;B:模型組,0.2 mmol/L的GM作用24 h;C:SA作用組,400 μmol/L的SA作用24 h;D:保護(hù)組,用400 μmol/L的SA預(yù)處理培養(yǎng)耳蝸基底膜3 h后加GM作用24 h(X800)

      2.2 MDA、SOD和GSH-PX活力的測定

      分別在GM作用耳蝸后6、12和24 h時(shí)間點(diǎn)檢測MDA、SOD和GSH,結(jié)果顯示,MDA含量在GM作用后6 h升高,12 h達(dá)到峰值,24 h略降低,但仍高于對照組。SOD活性和GSH含量在GM作用后開始下降,呈時(shí)間依賴性。SA預(yù)處理可以明顯增加SOD活性和GSH含量,降低MDA含量。與GM作用組相比有統(tǒng)計(jì)學(xué)差異如圖2所示(P=0.0056,P<0.01)。

      2.3 熒光實(shí)時(shí)定量PCR檢測NRF-2,HO-1以及NQO1 mRNA的表達(dá)

      實(shí)時(shí)定量PCR結(jié)果顯示,結(jié)果如圖3所示,GM組雖然比對照組偏高但是并沒有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義,而SA預(yù)處理明顯增加耳蝸基底膜組織NRF2及其下游ARE元件及包含的HO-1和NQO1等抗氧化酶的表達(dá),(P=0.0048,P<0.01),見圖3。

      3 討論

      藥物性耳聾是兒童后天性耳聾的主要原因,慶大霉素可在內(nèi)耳積蓄并影響內(nèi)耳蛋白質(zhì)合成導(dǎo)致自由基的產(chǎn)生與清除失衡,引起內(nèi)耳氧化還原反應(yīng)狀態(tài)改變,導(dǎo)致耳蝸和前庭器官的細(xì)胞損害[5]。表現(xiàn)癥狀為:耳鳴、眩暈和聽力下降等[6]。關(guān)于藥物性損傷的機(jī)制目前尚不清楚,有研究認(rèn)為這種慢性用藥過程中產(chǎn)生的耳毒性可能與自由基氧化損傷有關(guān)[7,8]。氨基糖苷類抗生素耳毒性的自由基學(xué)說得到廣泛認(rèn)同。它認(rèn)為氨基糖苷類抗生素會導(dǎo)致內(nèi)耳氧自由基增多,氧自由基主要通過一系列的過氧化反應(yīng)造成組織細(xì)胞的損傷,往往損害細(xì)胞膜磷脂分子中不飽和脂肪酸的過氧化,最終使生物膜受到嚴(yán)重?fù)p傷[8]。這被認(rèn)為是導(dǎo)致慶大霉素耳毒性的主要原因。本研究結(jié)果也證實(shí)了這一結(jié)論。SOD、GSH-PX是機(jī)體主要抗氧化酶,能夠有效清除自由基的產(chǎn)生。本研究中,筆者檢測了慶大霉素對耳蝸基底膜組織中SOD和GSH-PX的表達(dá)和活力的影響,首先我們將耳蝸基底膜經(jīng)慶大損傷后發(fā)現(xiàn)MDA活性有所增強(qiáng),而SOD活性和GSH活性開始下降,且呈時(shí)間依賴性。表明慶大霉素?fù)p傷后發(fā)生了氧化應(yīng)激反應(yīng)。本研究使用慶大霉素作用于離體培養(yǎng)的耳蝸基底膜,可見毛細(xì)胞重度損傷和數(shù)目的減少。使用紅景天苷預(yù)處理后加慶大霉素組耳蝸基底膜,觀察到毛細(xì)胞雖較于正常培養(yǎng)組有差異,但是毛細(xì)胞狀態(tài)明顯優(yōu)于單純慶大霉素處理組,且存活細(xì)胞數(shù)目多于慶大霉素作用組。耳蝸基底膜用紅景天苷保護(hù)組測定SOD活性和GSH活性均明顯升高??梢姡t景天苷預(yù)處理對慶大霉素的耳毒性有一定的保護(hù)作用。研究了紅景天苷對氧化應(yīng)激的保護(hù)作用及其相關(guān)的作用機(jī)制。

      圖2 各組耳蝸基底膜分別培養(yǎng)6、12、24 h后,對MDA的含量(A)、SOD活性(B)以及GSH-PX活性(C)的測定

      圖3 耳蝸基底膜在GM、SA、GM+SA分別作用24 h后NRF2、NQO1、HO-1的表達(dá)量

      氧化還原狀態(tài)的改變可觸發(fā)細(xì)胞內(nèi)調(diào)節(jié)氧化還原狀態(tài)的相關(guān)信號轉(zhuǎn)導(dǎo)因子的表達(dá),其中氧化還原因子NRF2在調(diào)節(jié)細(xì)胞氧化還原狀態(tài)及氧化損傷的自身防護(hù)機(jī)制中起重要作用。NRF2是一種內(nèi)源性機(jī)體抵抗氧化損傷或化學(xué)等刺激的關(guān)鍵調(diào)節(jié)蛋白。NRF2-ARE則是近年來新發(fā)現(xiàn)的細(xì)胞氧化應(yīng)激反應(yīng)的關(guān)鍵傳導(dǎo)通路,當(dāng)其在體內(nèi)被有毒有害物質(zhì)激活后轉(zhuǎn)位進(jìn)入細(xì)胞核能與抗氧化反應(yīng)元件(antioxidant response element,ARE)結(jié)合形成NRF2-ARE信號通路,從而誘導(dǎo)HO-1、NQO1等大量基因的轉(zhuǎn)錄,進(jìn)而抵抗各種刺激對機(jī)體產(chǎn)生的氧化應(yīng)激損傷[9]而作為體內(nèi)最重要的抗氧化通路的激活可誘導(dǎo)多重細(xì)胞保護(hù)作用的基因表達(dá)在對抗氧化應(yīng)激損傷方面具有很大的潛力。以NRF2-ARE通路介導(dǎo)的解毒、抗氧化、抗腫瘤、抗凋亡、抗炎通路的研究[10]為預(yù)防和治療氨基糖苷類耳毒性藥物致聾提供了一條新的思路。

      紅景天苷是從中藥紅景天的根莖中提取的主要活性成分,有研究發(fā)現(xiàn),紅景天苷對氧糖剝奪的SHSY5Y神經(jīng)細(xì)胞具有保護(hù)作用[11]。且可以迅速通過血腦屏障,對腦缺血和阿爾茲海默病有治療作用。紅景天苷還能夠抑制百草枯誘導(dǎo)PC12細(xì)胞的紅細(xì)胞毒性,恢復(fù)了乳酸脫氫酶、SOD、GSH-PX的表達(dá)和活力,提示紅景天苷可能是通過氧化應(yīng)激酶發(fā)揮神經(jīng)保護(hù)作用[12]。本研究通過實(shí)時(shí)定量PCR,發(fā)現(xiàn)SA預(yù)處理明顯增加耳蝸組織NRF2的表達(dá)。NRF2反應(yīng)性表達(dá)增加,引起下游ARE元件及包含的HO-1和NQO1等抗氧化酶的表達(dá)水平增高,從而發(fā)揮抗氧化作用。因此推測NRF2-ARE信號通路的激活參與了SA對氨基糖苷類藥物耳毒性的抑制作用。

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