姚紅 高峰 胡芳
1.四川省崇州市人民醫(yī)院血液腫瘤科,四川崇州 611230;2.武漢市紅十字會(huì)醫(yī)院全科門診,武漢430015
腫瘤特異性生長因子(TSGF)是一種與惡性腫瘤血管增殖相關(guān)的腫瘤標(biāo)志物,主要由腫瘤細(xì)胞分泌,并在惡性腫瘤形成和生長過程中,發(fā)揮促進(jìn)腫瘤生長、加劇周圍毛細(xì)血管增生等作用[1]。隨著惡性腫瘤的生長,TSGF逐漸釋放入血并表現(xiàn)為血清TSGF水平大幅升高,故被認(rèn)為在惡性腫瘤的診斷中具有價(jià)值,但也有報(bào)道,良性腫瘤、炎性病變亦可造成血清TSGF水平上升,因此,目前臨床關(guān)于TSGF能否用于惡性腫瘤的早期評估尚存在爭議[2]。此次研究選取惡性腫瘤、良性腫瘤患者及健康體檢者,就TSGF在不同人群血清中的表達(dá)水平差異及其臨床意義進(jìn)行了對比。
此次研究時(shí)間段為2015年3月至2017年10月。本研究已征得受試者知情同意,共有211例惡性腫瘤患者、65例良性腫瘤患者及50名健康體檢者入組開展對照分析。腫瘤患者均經(jīng)病理組織學(xué)檢查明確診斷,其中惡性腫瘤組男134例,女77例,年齡22~81歲,平均(57.94±10.82)歲,腫瘤類型:肝癌53例,肺癌30例,卵巢癌19例,非霍奇金淋巴瘤13例,胃癌9例,其他87例;良性腫瘤組男43例,女22例,年齡19~83歲,平均(56.25±9.49)歲,包括甲狀腺瘤18例,子宮肌瘤11例,胃平滑肌瘤9例,其他27例。健康對照組均經(jīng)全面體檢明確身體狀態(tài)良好,男30名,女20名,年齡20~78歲,平均(57.03±11.46)歲。3組受試者均排除合并各類急慢性炎性疾病者,其性別比例、年齡比較,差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05),具有可比性。
抽取各組受試者晨起空腹靜脈血2 mL,離心,留取血清,將40 μL待測血清加入反應(yīng)管內(nèi),反應(yīng)管中加入1.0 mL TSGF檢測試劑(上海酶聯(lián)生物科技有限公司),置沸水浴鍋中15 min,而后置于冷水(<25℃)中冷卻5 min,于470 nm處使用比色法測定吸光度,根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)曲線計(jì)算TSGF濃度,標(biāo)準(zhǔn)曲線[3]:Y=0.0147X+0.0064,r=0.9996;TSGF>64 U/mL為陽性標(biāo)準(zhǔn)。
對比3組受試者血清TSGF濃度及陽性率,計(jì)算TSGF診斷惡性腫瘤的靈敏度、特異性及準(zhǔn)確率,分析TSGF對惡性腫瘤診斷的參考價(jià)值。此外,于惡性腫瘤組患者治療后,按照其治療效果分為完全或部分緩解亞組、惡化或死亡亞組,對兩亞組患者治療前后血清TSGF濃度及陽性率變化進(jìn)行比較,總結(jié)TSGF與惡性腫瘤治療效果的關(guān)系。數(shù)據(jù)采用SPSS 22.0進(jìn)行分析,以P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
不同類型惡性腫瘤患者血清TSGF濃度及陽性率均高于健康對照組、良性腫瘤組,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05),健康對照組、良性腫瘤組血清TSGF濃度及陽性率比較,差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05)。見表1。
TSGF診斷惡性腫瘤的靈敏度、特異性、準(zhǔn)確率分別為70.14%(148/211)、84.62%(55/65)、73.55%(203/276),見表2。
完全或部分緩解亞組、惡化或死亡亞組治療前血清TSGF濃度及陽性率比較,差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05),完全或部分緩解亞組治療后TSGF濃度及陽性率較治療前下降(P<0.05),惡化或死亡亞組治療后上述指標(biāo)未見明顯變化(P>0.05),見表3。
表2 TSGF陽性診斷惡性腫瘤的效能分析(n)
表3 惡性腫瘤患者治療前后血清TSGF濃度及陽性率變化(x±s)
惡性腫瘤是目前對人類健康和生命威脅最大的疾病之一,已成為繼心血管病之后導(dǎo)致人類死亡的次位原因[4-5]。目前,臨床已開展多種腫瘤標(biāo)志物檢測研究[6-7]。
TSGF由4種小分子組合而成,包括糖類物質(zhì)、氨基酸及其代謝產(chǎn)物等,能夠通過刺激惡性腫瘤血管生成,促進(jìn)病灶增殖、浸潤及周圍毛細(xì)血管大量增生[8];大量釋放入血的TSGF可在惡性腫瘤形成的早期(包塊直徑<2 cm)檢出,故能夠?yàn)閻盒阅[瘤的早期篩查提供一定參考。此次研究選取惡性腫瘤、良性腫瘤患者以及健康體檢者,就其血清TSGF濃度及陽性率進(jìn)行了對比,結(jié)果顯示,不同類型惡性腫瘤患者血清TSGF水平均見大幅升高,且211例惡性腫瘤患者TSGF陽性率高達(dá)70.14%,與之相比,良性腫瘤、健康體檢者TSGF陽性率分別僅為16.00%、15.38%,說明惡性腫瘤存在TSGF的升高特異性。
此次研究數(shù)據(jù)表明TSGF診斷惡性腫瘤的靈敏度為70.14%,特異性更是高達(dá)84.62%,顯現(xiàn)出TSGF在惡性腫瘤早期篩查診斷中的良好參考價(jià)值。惡性腫瘤形成初期,腫瘤組織及其周圍毛細(xì)血管即處于迅速增生狀態(tài),腫瘤血管的增生與多種生長因子有關(guān),而TSGF本質(zhì)即為血管形成因子類物質(zhì)[9-10];亦有學(xué)者發(fā)現(xiàn),惡性腫瘤患者血清TSGF水平與血管內(nèi)皮生長因子(VEGF)呈明顯正相關(guān)[11],進(jìn)一步說明TSGF與惡性腫瘤關(guān)聯(lián)性。需要注意的是,本研究不同惡性腫瘤類型患者血清TSGF濃度及陽性率比較并未見明顯差異,與過往研究結(jié)果具有一致性[12-13],說明TSGF存在腫瘤特異性,但不存在臟器特異性因此,對于TSGF陽性患者而言,惡性腫瘤病灶部位的判斷也是需要關(guān)注的重點(diǎn)環(huán)節(jié)。此外,本研究健康對照組、良性腫瘤組亦有部分患者TSGF陽性,故單純根據(jù)TSGF判斷患者腫瘤性質(zhì)仍存在一定局限性。此外,諸多研究就各項(xiàng)腫瘤標(biāo)志物與惡性腫瘤的關(guān)聯(lián)進(jìn)行了分析,如唾液酸(SA)被證實(shí)與卵巢癌、肝癌密切相關(guān)[14-15],糖類抗原153(CA153)能夠?yàn)槿橄侔┑脑缙谠\斷提供可靠參考[16],而CA72-4、CA199可指導(dǎo)胃癌診斷及分型判斷[17]。因此,基于TSGF的初篩結(jié)果,需聯(lián)合影像學(xué)檢查、實(shí)驗(yàn)室檢查及血清其他相關(guān)腫瘤標(biāo)志物進(jìn)一步確診。
對惡性腫瘤患者治療前后血清TSGF濃度及陽性率進(jìn)行對比,預(yù)后良好者治療后血清TSGF濃度明顯下降,預(yù)后較差者血清TSGF濃度則未見明顯變化,與過往研究結(jié)果一致[18],因此,治療期間監(jiān)測患者血清TSGF濃度變化,亦有望為患者病情的判斷與預(yù)后的評估提供一定參考。
[1] AHMED N, BRAWLEY V S, HEGDE M, et al. Human Epidermal Growth Factor Receptor 2 (HER2)–specif i c chimeric antigen receptor–modified T cells for the Immunotherapy of HER2-positive sarcoma[J]. J Clin Oncol, 2015, 33(15): 1688.
[2] SEGUIN L, DESGROSELLIER J S, WEIS S M, et al. Integrins and cancer: regulators of cancer stemness, metastasis, and drug resistance[J]. Trends Cell Biol, 2015, 25(4): 234-240.
[3] GALLUZZI L, PIETROCOLA F, BRAVO‐SAN PEDRO J M, et al. Autophagy in malignant transformation and cancer progression[J]. EMBO J, 2015, 34(7): 856-880.
[4] 陳萬青, 鄭榮壽, 曾紅梅,等. 1989-2008年中國惡性腫瘤發(fā)病趨勢分析[J]. 中華腫瘤雜志, 2012, 34(7):517-524.
[5] ZHOU W, KE S Q, HUANG Z, et al. Periostin secreted by glioblastoma stem cells recruits M2 tumour-associated macrophages and promotes malignant growth[J]. Nat Cell Biol,2015, 17(2): 170.
[6] JONES P A, ISSA J P J, BAYLIN S. Targeting the cancer epigenome for therapy[J]. Nature reviews Genetics, 2016, 17(10):630.
[7] TOPALIAN S L, TAUBE J M, ANDERS R A, et al.Mechanism-driven biomarkers to guide immune checkpoint blockade in cancer therapy[J]. Nat Rev Cancer, 2016, 16(5): 275.
[8] JIANG J T, WU C P, DENG H F, et al. Serum level of TSGF,CA242 and CA19-9 in pancreatic cancer[J]. World Journal of Gastroenterology, 2004, 10(11):1675-1677.
[9] KLEMM F, JOYCE J A. Microenvironmental regulation of therapeutic response in cancer[J]. Trends Cell Biol, 2015, 25(4):198-213.
[10] WOODS S J, HANNAN K M, PEARSON R B, et al. The nucleolus as a fundamental regulator of the p53 response and a new target for cancer therapy[J]. Biochim Biophys Acta, 2015,1849(7): 821-829.
[11] GOTWALS P, CAMERON S, CIPOLLETTA D, et al. Prospects for combining targeted and conventional cancer therapy with immunotherapy[J]. Nat Rev Cancer, 2017, 17(5): 286.
[12] 趙軍. 血清TSGF、CEA、VEGF在非小細(xì)胞肺癌血清中的表達(dá)及臨床意義[D]. 濟(jì)南:山東大學(xué), 2004.
[13] RUTKOWSKI M R, STEPHEN T L, SVORONOS N, et al. Microbially driven TLR5-dependent signaling governs distal malignant progression through tumor-promoting inf l ammation[J]. Cancer Cell, 2015, 27(1): 27-40.
[14] 陳鋼, 李清清, 廖江濤. 血清SA在肝癌輔助診斷和療效監(jiān)測中的意義[J]. 現(xiàn)代腫瘤醫(yī)學(xué), 2015, 23(8):1103-1105.
[15] ZELENAY S, VAN DER VEEN A G, B?TTCHER J P, et al.Cyclooxygenase-dependent tumor growth through evasion of immunity[J]. Cell, 2015, 162(6): 1257-1270.
[16] OSTUNI R, KRATOCHVILL F, MURRAY P J, et al.Macrophages and cancer: from mechanisms to therapeutic implications[J]. Trends Immunol, 2015, 36(4): 229-239.
[17] LATHIA J D, MACK S C, MULKEARNS-HUBERT E E, et al.Cancer stem cells in glioblastoma[J]. Genes Dev, 2015, 29(12):1203-1217.
[18] FIGUEROA-CLAREVEGA A, BILDER D. Malignant Drosophila tumors interrupt insulin signaling to induce cachexia-like wasting[J]. Dev Cell, 2015, 33(1): 47-55.