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    BDNF對缺糖缺氧小鼠伏隔核中突觸前膜蛋白Synapsin-1的影響

    2018-06-22 12:19:26喻曉路傅慧
    系統(tǒng)醫(yī)學 2018年7期
    關鍵詞:腦片混合氣體藥組

    喻曉路 ,傅慧

    1.徐州醫(yī)科大學江蘇省麻醉學重點實驗室,江蘇徐州 221004;2.淄博市第一醫(yī)院神經(jīng)內(nèi)一科,山東淄博 255000

    突觸是神經(jīng)元上不可或缺的一部分,它在維持神經(jīng)元之間相互聯(lián)系方面起到巨大作用[1]。正確的突觸形成是神經(jīng)系統(tǒng)結(jié)構和功能的基礎,突觸形成用突觸前膜蛋白Synapsin-1進行表示[2]。BDNF(brain derived neurotropic factor,腦源性神經(jīng)生長因子)是一種重要的神經(jīng)因子,在生理環(huán)境下具有促進突觸的形成、維持神經(jīng)系統(tǒng)的功能[3-6]。伏隔核(nucleus accumbens,NAc)是中腦一邊緣多巴胺系統(tǒng)環(huán)路的重要核團,NAc具有行為調(diào)控、鎮(zhèn)痛作用、參與精神分裂癥的產(chǎn)生、藥物成癮、學習記憶和調(diào)節(jié)心血管活動及調(diào)節(jié)運動活動等功能[7]。腦組織的缺糖缺氧是腦缺血患者的主要癥狀之一,其對腦組織中的神經(jīng)元會產(chǎn)生損傷,尤其是對神經(jīng)元突觸有著很大的影響[8]。該次對比了腦片培養(yǎng)技術和細胞培養(yǎng)技術,認為腦片培養(yǎng)技術與細胞培養(yǎng)技術相比更多的保留了細胞和組織結(jié)構,能夠更好的模擬生理狀態(tài),并且操作更簡便,對實驗設備的要求也不高[9-10]。該實驗采用腦片培養(yǎng)的方法,目前此方法已經(jīng)成熟,見圖1,圖中神經(jīng)元形態(tài)清晰。該實驗于2017年12月—2018年2月期間在徐州醫(yī)科大學麻醉學重點實驗室將18只小鼠中共隨機分為3組,對小鼠NAc腦區(qū)的腦片進行缺糖缺氧處理和復灌,并與加入BDNF的處理組進行比較,對Synapsin-1蛋白的表達量進行測定,明確BDNF在缺糖缺氧條件下小鼠NAc腦區(qū)的作用,為腦缺血病患者所進行溶栓治療的方法提供有力的實驗依據(jù)。

    圖1 腦片培養(yǎng)伏隔核HE染色20X

    1 資料與方法

    1.1 一般資料

    SPF級昆明小鼠18只,體重25~30 g,購自濟南朋悅實驗動物繁育有限公司,標準化飼養(yǎng)。

    1.2 儀器和試劑

    材料:BDNF(2837)購自 TOCRIS 公司,RIPA 裂解液(KGP702-100)購自凱基生物公司,低糖DMEM培養(yǎng)基(ABB210359)和 EBSS 培養(yǎng)基(AB10134597)均購自HyClone公司,青鏈霉素混合液(VC2003)購自 VICMED 公司,Synapsin-1 (5297)-抗購自 Cell Signaling Technology 公司,GAPDH (10494)-抗購自proteintech公司,辣根過氧化物酶標記的山羊抗兔IgG二抗 (A0208)和BCA蛋白濃度測定試劑盒(P0009)購自碧云天生物技術有限公司,ECL發(fā)光試劑盒(AC36131)購自 bioworld 公司,Transwell 24 孔板細胞培養(yǎng)小室(3413)購自Corning公司,PVDF膜(IPVH00010)購自Immobilon公司,自動震動切片機購自萊卡公司,化學發(fā)光儀購自BIO-RAD公司,其余自配液體試劑均購自sigma公司。自配溶液:高滲糖溶液Sucrose 254 mM,D-Glucose 10 mM,NaH2PO41.25 mM,NaHCO324 mM,MgSO4·7H2O2mM,KCl 3mM,CaCl2·2H2O 2 mM,用去離子水溶解。使用前通入95%O2+5%CO230 min。

    1.3 實驗方法

    1.3.1 腦片制備實驗動物經(jīng)七氟烷誘導麻醉后,迅速斷頭,然后用剪刀剪開兩耳間的皮膚直至兩鼻間,然后翻轉(zhuǎn)皮膚,暴露顱骨。用眼科剪去掉小鼠顱骨,暴露全腦。隨后用眼科鑷伸入腦前端下部的嗅球處,輕輕挑起腦的前端,剪斷腦神經(jīng),翻轉(zhuǎn)全腦,放入冰冷、預先通95%O2+5%CO2混合氣 30 min的高滲糖溶液中,放置1~2 min。取出全腦,除去小腦和嗅球,用刀片切取鼠腦前中部,迅速用502膠水將腦組織塊底部粘在自動震動切片機的緩沖槽中,用高滲糖溶液浸沒組織塊,設置自動震動切片機的切片速度、厚度和距離,切取含有NAc腦區(qū)的厚度為300 μm的腦片,大約可以取3~5片,用小刀切去多余組織,只保留NAc區(qū)域,整個過程在8 min內(nèi)完成,高滲糖溶液溫度維持在4℃。24孔培養(yǎng)板孔內(nèi)加0.5 mL的腦片培養(yǎng)液,即低糖DMEM培養(yǎng)基,其中包括1%青鏈霉素混合液,將取好的腦片移入Transwell的小室中,盡量完全吸取高滲糖溶液,將小室放入培養(yǎng)板中,使培養(yǎng)基的液面剛好達到腦片的水平,但不漫過腦片,將培養(yǎng)皿置于37℃培養(yǎng)箱中的自制密閉容器中,自制密閉容器有輸入和輸出氣體的導管。腦片培養(yǎng)基的組成:低糖DMEM+1%的青鏈霉素混合液。腦片的培養(yǎng)條件為:溫度37℃,持續(xù)穩(wěn)定通入95%O2+5%CO2混合氣體,微生物培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。要保證腦片的上表面充分暴露于氣體環(huán)境中。

    1.3.2 充N2法制備腦片缺氧缺糖模型 將缺氧缺糖組的腦片更換為EBSS培養(yǎng)基,并移進充入5%CO2+95%N2混合氣體的密閉容器中,在37℃培養(yǎng)箱中是以0.5 L/min的流量充入混合氣,于15 min后換成低糖培養(yǎng)基并復氧,通入95%O2+5%CO2混合氣體,在37℃培養(yǎng)箱中復灌培養(yǎng)1 h。

    1.3.3 分組 正常組:選取正常昆明小鼠6只,取NAc腦區(qū),采用低糖DMEM培養(yǎng)基并通入95%O2+5%CO2混合氣體進行培養(yǎng)。

    缺糖缺氧復灌組(OGD/R):選取正常昆明小鼠6只,取NAc腦區(qū),采用EBSS培養(yǎng)基并通入5%CO2+95%N2混合氣體進行培養(yǎng)15 min,并進行復灌,即將帶有腦片的小室置入加入DMEM培養(yǎng)基的培養(yǎng)皿中,并持續(xù)通入95%O2+5%CO2混合氣體1 h。

    缺糖缺氧復灌給藥組(OGD/R+BDNF):選取正常昆明小鼠6只,取NAc腦區(qū),采用在EBSS培養(yǎng)基中加入 BDNF(BDNF用量為 50 ng/μL)并通入 5%CO2+95%N2混合氣體進行培養(yǎng)15 min,并進行復灌,即將帶有腦片的小室置入加入DMEM培養(yǎng)基的培養(yǎng)皿中,并持續(xù)通入95%O2+5%CO2混合氣體1 h。

    1.3.4 對檢測樣品的制備和免疫印跡分析 在模型制作完成后,將腦片移入潔凈的EP管中,加入蛋白裂解液,用電動勻漿器將組織打碎,充分裂解組織,4℃10 000轉(zhuǎn)離心30 min,棄去沉淀,將上清液移入新EP管中,并做好標記。用BCA試劑盒進行蛋白定量,測定蛋白濃度,將樣品配平,按照每孔20 ng的蛋白量進行上樣跑電泳,采用半干轉(zhuǎn)的方式將膠中的蛋白轉(zhuǎn)到 PVDF膜上,5%的脫脂奶粉封閉 1 h,移入Synapsin-1(1:1 000)一抗和 GAPDH(1:5 000)一抗中4℃過夜,室溫復溫30 min,washing buffer清洗3次,5 min/次,轉(zhuǎn)入HPR標記的兔二抗中孵育 40 min,washing buffer清洗3次,15 min/次。用化學發(fā)光儀進行曝光記錄。用ImageJ軟件進行定量分析。

    1.4 統(tǒng)計方法

    采用SPSS 13.0統(tǒng)計學軟件進行數(shù)據(jù)處理,采用單因素方差分析,(one-way ANOVE)進行組間比較,P<0.05為差異有統(tǒng)計學意義。

    2 結(jié)果

    正常組Synapsin-1蛋白的相對表達量為(1.191 02±0.068 371),缺糖缺氧復灌組Synapsin-1蛋白的相對表達量為(0.7919 35±0.093 63),缺糖缺氧復灌給藥組Synapsin-1蛋白的相對表達量為 (1.065 35±0.075 595)。通過對正常組、缺糖缺氧復灌組和缺糖缺氧復灌給藥組的小鼠NAc腦區(qū)的Synapsin-1蛋白的相對表達量進行比較,通過蛋白免疫印跡的檢測結(jié)果顯示,缺糖缺氧復灌組與正常組相比Synapsin-1蛋白的相對表達量降低,差異有統(tǒng)計學意義(P<0.01),缺糖缺氧復灌給藥組與缺糖缺氧復灌組相比Synapsin-1的蛋白相對表達量升高,差異有統(tǒng)計學意義(P<0.05)。缺糖缺氧復灌給藥組與正常組相比Synapsin-1的蛋白相對表達量差異無統(tǒng)計學意義(P>0.05)。見圖2。

    圖2 Synapsin-1表達水平比較

    3 討論

    腦部缺糖缺氧是腦缺血病患的主要癥狀,它可以導致人類殘疾或者死亡,眾多的研究表明腦組織的缺糖缺氧會誘發(fā)一系列的病理變化,甚至短暫性的缺糖缺氧也會對神經(jīng)元造成一定的損傷[8]。由于神經(jīng)元在接收和發(fā)送信號時必須要形成突觸結(jié)構,所以對于突觸的影響是最關鍵的[1]。有報道稱BDNF具有神經(jīng)保護和神經(jīng)營養(yǎng)的作用,可以幫助神經(jīng)損傷后傳導功能的恢復[3-6]。缺糖缺氧對腦組織的損傷尤其表現(xiàn)在突觸形成上,在與行為、疼痛、精神分裂癥、藥物成癮、學習記憶和心血管活動及運動活動等功能密切相關的NAc腦區(qū)其代表突觸形成的突觸前膜蛋白Synapsin-1的表達量就有明顯的降低。在缺糖缺氧的條件下加入BDNF,能有效減緩Synapsin-1蛋白表達量的降低。實驗結(jié)果顯示正常組Synapsin-1蛋白的相對表達量為 (1.191 02±0.068 371),缺糖缺氧復灌組Synapsin-1蛋白的相對表達量為 (0.791 935±0.093 63),缺糖缺氧復灌給藥組Synapsin-1蛋白的相對表達量為(1.065 35±0.075 595)。缺糖缺氧復灌組與正常組相比Synapsin-1蛋白的相對表達量降低,差異有統(tǒng)計學意義(P<0.01),缺糖缺氧復灌給藥組與缺糖缺氧復灌組相比Synapsin-1的蛋白相對表達量升高,差異有統(tǒng)計學意義(P<0.05)。缺糖缺氧復灌給藥組與正常組相比Synapsin-1的蛋白相對表達量差異無統(tǒng)計學意義(P>0.05)。采用建立NAc腦區(qū)腦片缺糖缺氧的模型,很好的模仿了短暫性腦缺血的癥狀,同時加入BDNF的實驗,驗證了BDNF在短暫性缺糖缺氧對NAc腦區(qū)突觸前膜蛋白有保護作用,以此說明在腦缺血患者的治療上如果使用BDNF會有效緩解由于缺糖缺氧造成的神經(jīng)元的損傷,對于BDNF未來運用于臨床治療上具有參考價值。

    現(xiàn)有的報道稱BDNF作為一種重要的腦源性神經(jīng)生長因子對于腦神經(jīng)元都起到很好的保護和營養(yǎng)作用,其中也包括NAc腦區(qū),將 BDNF注入老年大鼠伏隔核可以改善認知和結(jié)構突觸可塑性[11]。 而對Sy napsin-1蛋白在伏隔核的研究僅限于抑郁癥等精神類疾病的研究上,文獻報道中提到的使用VGF在伏隔核中的Synapsin-1蛋白的表達會有變化[12]。對于由于腦缺血所造成的缺糖缺氧癥狀而引起對于神經(jīng)元的損傷方面卻沒有研究,該的研究正好填補了這一空白。

    綜上所述,BDNF在小鼠伏隔核缺糖缺氧條件下,Synapsin-1蛋白的表達量比未使用BDNF的蛋白表達量升高,說明BDNF可以有效的提高神經(jīng)元突觸前膜蛋白的表達,從而說明可以保護神經(jīng)元,給BDNF的臨床應用提供了實驗依據(jù),若對BDNF的作用機制和作用效果進行更進一步的研究,將會改善由于腦缺血造成的神經(jīng)系統(tǒng)疾病的治療方法。此研究前景非常廣闊。

    [1]白江濤,龔理,趙淑敏,等.黃芩莖葉總黃酮對缺血再灌注大腦皮質(zhì)神經(jīng)元和突觸超微結(jié)構的保護作用[J].中華老年心腦血管病雜志,2015,17(10):1091-1093.

    [2]楊國帥,周小艷,周治平,等.亞低溫對全腦缺血性癲癇大鼠認知功能和海馬synapsinⅠ表達及突觸超微結(jié)構的影響[J].實用醫(yī)學雜志,2015,31(14):2261-2264.

    [3]劉志娟.腦源性神經(jīng)營養(yǎng)因子在突觸可塑性中的作用[J].國際神經(jīng)病學神經(jīng)外科學雜志,2015,42(2):185-188.

    [4]Koyama Y,Tsujikawa K,Matsuda T,et al.Intracerebr oventricular administration of an endothelin ETB receptor agonist increases expressions of GDNF and BDNF in rat brain[J].European Journal of Neuroscience,2015,18(4):887-894.

    [5]Luo L,Liu X L,Li J,et al.Macranthol promotes hippocampal neuronal proliferation in mice via BDNF-TrkB-PI3K/Akt signaling pathway[J].European Journal of Pharmacology,2015(762):357-363.

    [6]Sasi M,Vignoli B,Canossa M,et al.Neurobiology of local and intercellular BDNF signaling:[J].Pflügers Archiv-European Journal of Physiology,2017,469(5):1-18.

    [7]劉榮國,林星武,方向宇,等.背根神經(jīng)節(jié)脈沖射頻對神經(jīng)病理性痛大鼠脊髓IRF8和伏隔核BDNF表達的影響[J].中華麻醉學雜志,2017,37(5):540-543.

    [8]杜成昊,萬海同,周惠芬,等.谷紅注射液對新生乳鼠海馬神經(jīng)元缺氧缺糖損傷的保護作用 [J].中華中醫(yī)藥雜志,2017(1):289-293.

    [9]董梅,程樹彬,郭彥芳,等.器官型腦片培養(yǎng) OGD復氧復糖模型中丁苯酞對于 bcl-2/bax、及 bim蛋白的調(diào)節(jié)作用[J].中風與神經(jīng)疾病,2017,34(1):16-20.

    [10]李釗,程樹彬,郭彥芳,等.器官型腦片糖氧剝奪模型的建立[J].腦與神經(jīng)疾病雜志,2017,25(11):707-710.

    [11]Li M,Dai F R,Du X P,et al.Infusion of BDNF into the nucleus accumbens of aged rats improves cognition and structural synaptic plasticity through PI3K-ILK-Akt signaling[J].Behavioural Brain Research,2012,231(1):146.

    [12]Jiang C,Lin W J,Sadahiro M,et al.VGF function in depression and antidepressant efficacy[J].Mol Psychiatry,2017.

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