周文娟,雷志明,魏雪濤,郝衛(wèi)東*
(北京大學(xué)公共衛(wèi)生學(xué)院毒理學(xué)系/食品安全毒理學(xué)研究與評(píng)價(jià)北京市重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,北京100191)
刀豆蛋白A(concanavalin A,Con A)可以通過(guò)尾靜脈注射,特異性作用于小鼠肝臟,造成肝臟損傷[1]。關(guān)于該損傷機(jī)制的研究顯示,Con A并不直接作用于小鼠肝細(xì)胞[2],但可以引起肝臟內(nèi)免疫細(xì)胞和相關(guān)細(xì)胞因子的聚集,進(jìn)而誘導(dǎo)免疫介導(dǎo)的肝臟損傷[3]。Con A誘導(dǎo)的肝損傷常被用于模擬自身免疫性肝炎和乙型病毒性肝炎等,具有時(shí)間短和損傷具有劑量反應(yīng)關(guān)系等特點(diǎn)[1,4-6]。
研究表明,枯否細(xì)胞(Kupffer cell,KC)是Con A誘導(dǎo)免疫性肝損傷中的關(guān)鍵性非實(shí)質(zhì)細(xì)胞,樹(shù)突狀細(xì)胞(dendritic cell,DC)也在該損傷中起到一定的作用。CD11c是KCs和DCs的表面分子[7],與KCs和DCs有關(guān)且參與Con A誘導(dǎo)的免疫性肝損傷的細(xì)胞因子有腫瘤壞死因子 α (tumor necrosis factor-α,TNF-α)、 γ 干擾素(interferon-γ,IFN-γ)、白細(xì)胞介素(IL-4/5/6 /12)等。這些因子中最關(guān)鍵的為TNF-α和IFN-γ。
轉(zhuǎn)化生長(zhǎng)因子 β激活激酶1(TGFβ-activated kinase 1,TAK1),是一種體內(nèi)常見(jiàn)的蛋白激酶,參與細(xì)胞的增殖與分化,在炎癥的發(fā)生和發(fā)展過(guò)程中起著重要作用[8-9]。目前已有部分研究探討了TAK1與肝損傷之間的關(guān)系[10-11]。Song等[12]研究表明肝實(shí)質(zhì)細(xì)胞敲除TAK1可以誘導(dǎo)自發(fā)性肝炎、肝纖維化和肝癌。然而僅有少量研究探討了肝中非實(shí)質(zhì)細(xì)胞TAK1在該損傷中的作用,尚未見(jiàn)有關(guān)CD11c+細(xì)胞中TAK1敲除對(duì)于該損傷的研究。因此,本文利用在CD11c+細(xì)胞中特異性敲除TAK1基因的動(dòng)物模型,研究免疫細(xì)胞中TAK1在Con A誘導(dǎo)的早期免疫性肝損傷中所起的作用,旨為臨床肝炎治療新靶點(diǎn)的探索提供理論線索。
FloxedMap3k7(Map3k7fl/fl) 和CD11c-Cre小鼠購(gòu)自美國(guó)Jackson實(shí)驗(yàn)室,該小鼠為C57BL/6背景。將Map3k7fl/fl和CD11c-Cre小鼠進(jìn)行交配,產(chǎn)生Map3k7fl/flCD11c-Cre小鼠,該小鼠體內(nèi)CD11c+細(xì)胞中特異性缺失Map3k7(TA K1)基因。對(duì)照C57BL/6小鼠為帶有CD11c-Cre的小鼠,以排除Cre的影響[13]。
所有小鼠均選取雌性,8~12周齡,SPF級(jí),體質(zhì)量18~22g,飼養(yǎng)于屏障環(huán)境中,溫度20~25℃,相對(duì)濕度40%~70%,12h/12h明暗交替循環(huán),飼料為符合國(guó)家標(biāo)準(zhǔn)的無(wú)菌飼料,飲用水經(jīng)過(guò)濾除菌處理。動(dòng)物實(shí)驗(yàn)符合北京大學(xué)動(dòng)物倫理委員會(huì)相關(guān)規(guī)定。
將CD11c+細(xì)胞特異性敲除TAK1的C57BL/6小鼠,經(jīng)鼠尾靜脈注射Con A(12mg/kg)或生理鹽水,分別作為Con A敲除組和生理鹽水敲除組。另選C57BL/6小鼠,鼠尾靜脈注射Con A(12mg/kg)或生理鹽水,作為Con A對(duì)照組和生理鹽水對(duì)照組,共4組,每組7只。注射6h之后取血,斷髓處死動(dòng)物,進(jìn)行相關(guān)指標(biāo)檢測(cè)。
Ⅳ型刀豆蛋白A(Con A)購(gòu)自美國(guó)Sigma公司;丙氨酸氨基轉(zhuǎn)移酶(alamine aminoteansferase,ALT)、天門冬氨酸轉(zhuǎn)移酶(aspartate aminotransferase,AST)以及乳酸脫氫酶(lactic dehydrogenase,LDH)檢測(cè)試劑盒購(gòu)自四川麥克生物科技股份有限公司;小鼠TNF-α、小鼠IFN-γ酶聯(lián)免疫吸附法(ELISA) 試劑盒和多因子小鼠Th1/Th2檢測(cè)試劑盒(6因子)購(gòu)自eBioscience公司。
HITACHI-7170A全自動(dòng)生化分析儀為日本日立公司產(chǎn)品;ThermoMK3型酶標(biāo)儀為中國(guó)賽默飛世爾科技有限公司產(chǎn)品;正置熒光顯微鏡(Nikon E400),realtime PCR擴(kuò)增儀為Bio-Rad產(chǎn)品。
1.3.1 小鼠血清ALT、AST、LDH測(cè)定小鼠眼部取血,4℃靜置1h后,2500r/min離心10min,取上清,全自動(dòng)生化分析儀檢測(cè)ALT、AST和LDH活性。
1.3.2 小鼠臟器系數(shù)計(jì)算動(dòng)物麻醉后處死,摘取肝、脾、肺、腎和胸腺,稱取質(zhì)量并計(jì)算臟器系數(shù)。
1.3.3 小鼠肝臟病理學(xué)觀察及評(píng)分制備肝臟病理切片,進(jìn)行HE染色,光學(xué)顯微鏡觀察,定性描述相關(guān)的病理學(xué)特征。根據(jù)肝臟病變程度按照如下標(biāo)準(zhǔn)分為4級(jí):0級(jí),正常肝組織,記0分;1級(jí),輕度炎性細(xì)胞浸潤(rùn),偶伴有單個(gè)肝細(xì)胞壞死,記1分;2級(jí),中度肝細(xì)胞損害伴炎癥細(xì)胞浸潤(rùn)和局灶性肝細(xì)胞壞死,記2分;3級(jí),匯管區(qū)和肝小葉內(nèi)廣泛炎癥細(xì)胞浸潤(rùn),伴廣泛的肝細(xì)胞壞死[14]。
1.3.4 小鼠血清中白細(xì)胞介素、TNF-α和IFN-γ表達(dá)測(cè)定收集小鼠血清,酶標(biāo)儀測(cè)定450和570nm處白細(xì)胞介素IL-4/5/6/12、TNF-α和IFN-γ的吸光度值,計(jì)算細(xì)胞因子含量。
1.3.5 小鼠肝中TNF-α和IFN-γ表達(dá)測(cè)定取少量肝組織進(jìn)行勻漿,12000r/min離心20min,取上清,酶標(biāo)儀測(cè)定450nm和570nm處TNF-α和IFN-γ的吸光度值,計(jì)算細(xì)胞因子含量。
應(yīng)用SPSS19.0進(jìn)行數(shù)據(jù)分析,多組均數(shù)間比較采用單因素方差分析,方差不齊時(shí)采用Dunnett’s T3檢驗(yàn),兩組均數(shù)之間比較采用t檢 驗(yàn),方差不齊時(shí)采用t檢驗(yàn); α=0.05為檢驗(yàn)水準(zhǔn)。在對(duì)免疫相關(guān)細(xì)胞因子分析時(shí),剔除數(shù)值超過(guò)兩倍標(biāo)準(zhǔn)差的異常數(shù)據(jù)。
與生理鹽水對(duì)照組相比,生理鹽水敲除組小鼠血清中ALT、AST和LDH水平無(wú)顯著改變,Con A對(duì)照組中血清ALT和LDH水平顯著升高(P均<0.05)。與Con A對(duì)照組相比,Con A敲除組小鼠血清ALT、AST和LDH水平均顯著升高(P均<0.05)。見(jiàn)表1。
表1 CD11c+細(xì)胞中特異性敲除TAK1對(duì)小鼠血清生化指標(biāo)的影響(-x±s,n=7)
與生理鹽水對(duì)照組相比,生理鹽水敲除組小鼠僅肝臟系數(shù)顯著升高(P<0.05),Con A對(duì)照組肝臟和脾臟臟器系數(shù)顯著升高(P均<0.05)。與Con A對(duì)照組相比,Con A 敲除組 小 鼠的肝臟、肺臟和腎臟臟器系數(shù)均顯著升高,差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P均<0.05),脾臟和胸腺臟器系數(shù)無(wú)明顯改變。見(jiàn)表2。
表2 CD11c+細(xì)胞特異性敲除 TAK1對(duì)臟器系數(shù)的影響(-x±s,n=7)
與生理鹽水對(duì)照組(0分)相比,生理鹽水敲除組小鼠肝臟病理評(píng)分(0.43±0.53)無(wú)明顯改變,Con A對(duì)照組病理評(píng)分(2.14±0.69)則顯著升高(P<0.05)。與Con A對(duì)照組相比,Con A敲除組病理評(píng)分(2.86±0.38)顯著升高(P<0.05)。Con A對(duì)照組損傷主要表現(xiàn)為點(diǎn)灶狀壞死或匯管區(qū)炎癥,其中前者表現(xiàn)更為顯著而普遍,匯管區(qū)周圍存在輕度壞死,肝小葉內(nèi)肝細(xì)胞的壞死以點(diǎn)灶狀為主,無(wú)明顯的片狀或橋接壞死;Con A敲除組損傷類型由早期壞死轉(zhuǎn)變?yōu)槊黠@的灶狀壞死或匯管區(qū)炎癥,有明顯的片狀壞死和橋接壞死,同時(shí)存在多個(gè)出血壞死灶。所有肝臟均未見(jiàn)明顯纖維化表現(xiàn)。見(jiàn)圖1。
與生理鹽水對(duì)照組相比,生理鹽水敲除組 小 鼠血清各細(xì)胞因子水平均未見(jiàn)明顯改變,Con A對(duì)照組血清TNF-α、IFN-γ、IL-4、IL-5和IL-6水平均顯著升高(P均<0.05),血清IL-12水平無(wú)明顯改變。與Con A對(duì)照組相比,Con A敲除組血清TNF-α、IL-4和IL-6水平均顯著升高(P均<0.05),而血清IFN-γ、IL-5和IL-12水平無(wú)明顯改變。見(jiàn)圖2。
見(jiàn)圖 3。與生理鹽水對(duì)照組比較,生理鹽水敲除組 小 鼠肝組織中TNF-α的含量明顯下降(P<0.05),IFN-γ水平無(wú)明顯改變;Con A對(duì)照組肝組織中兩因子均顯著升高,差異均具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P均<0.05)。與Con A對(duì)照組相比,Con A敲除組小鼠肝組織中IFN-γ水平顯著升高, 差異具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05),TNF-α水平無(wú)明顯改變。
圖1 CD11c+ 細(xì) 胞特異性敲除TAK1 對(duì)C on A 引 起的肝臟病理組織學(xué)的影響(H E, ×200)
圖2 CD11c+ 細(xì) 胞中TAK1 特 異性敲除對(duì) C on A 誘 導(dǎo)的血清細(xì)胞免疫因子表達(dá)的影響(n=5)
圖3 CD11c+ 細(xì) 胞中TAK1 特 異性敲除對(duì)C on A 誘 導(dǎo)的肝細(xì)胞因子的影響(n=5)
Con A是一種從刀豆中提取出來(lái)的蛋白。1992年Tiegs等[4]首次發(fā)現(xiàn)尾靜脈注射Con A可以特異性引起小鼠的免疫性肝損傷。Con A入血之后主要聚集在肝中,并作用于肝竇內(nèi)皮細(xì)胞,使細(xì)胞破損。之后該蛋白會(huì)穿過(guò)肝竇內(nèi)皮與Kupffer細(xì)胞結(jié)合,激活肝中的免疫反應(yīng),聚集的免疫細(xì)胞和因子會(huì)進(jìn)一步作用于肝細(xì)胞,造成肝細(xì)胞的變性和壞死[3]。Con A誘導(dǎo)免疫性肝損傷主要表現(xiàn)為血生化指標(biāo)升高和肝臟病理?yè)p傷加重[15]。本課題組前期研究顯示,當(dāng)Con A鼠尾靜脈注射劑量為12mg/kg時(shí),實(shí)驗(yàn)小鼠的肝臟存在輕度損傷,肝和血清中TNF-α和IFN-γ的水平均升高。故本實(shí)驗(yàn)Con A注射劑量均為12mg/kg,以便于探索CD11c+細(xì)胞中TAK1蛋白對(duì)于Con A誘導(dǎo)的免疫性肝損傷的作用。
本研究結(jié)果顯示,與生理鹽水對(duì)照組相比,Con A敲除組和Con A對(duì)照組反映肝損傷嚴(yán)重程度的血生化指標(biāo)顯著升高(P均<0.05),而生理鹽水敲除組的血生化無(wú)明顯改變。Con A敲除組的血生化指標(biāo)明顯高于Con A對(duì)照組(P均<0.05)。肝臟病理及病理評(píng)分變化與血生化一致。提示單獨(dú)敲除CD11c+細(xì)胞中的TAK1并不會(huì)引起肝細(xì)胞明顯的損傷和死亡,造成肝臟的明顯損傷。這也說(shuō)明CD11c+細(xì)胞中的TAK1蛋白可能并不直接參與維持肝細(xì)胞的存活。但是CD11c+細(xì)胞中TAK1 的敲除對(duì)于Con A誘導(dǎo)的免疫性肝損傷起協(xié)同作用,TAK1敲除可使肝臟對(duì)于外來(lái)刺激更加敏感。CD11c+細(xì)胞中的TAK1蛋白參與了Con A誘導(dǎo)的免疫性肝損傷。Wang等[16]曾證明在CD11c+細(xì)胞特異性敲除TAK1的小鼠中TAK1缺失導(dǎo)致CD11c+細(xì)胞凋亡顯著上升,從而致淋巴和非淋巴組織中的DCs群體枯竭。DCs 的缺失可以進(jìn)一步導(dǎo)致肝中免疫穩(wěn)態(tài)失衡。Tomiyama 等[17]發(fā)現(xiàn)Con A給藥小鼠的肝樹(shù)突狀細(xì)胞過(guò)繼性轉(zhuǎn)移有抑制Con A誘導(dǎo)肝損傷的作用。提示CD11c+細(xì)胞中特異性敲除TAK1很有可能是通過(guò)DCs凋亡,造成肝中免疫穩(wěn)態(tài)失衡,進(jìn)而加重Con A誘導(dǎo)的肝損傷。然而近期也有報(bào)道稱CD11c-白喉毒素受體轉(zhuǎn)基因小鼠或用抗CD11c抗體導(dǎo)致小鼠CD11c+D C枯竭,可減輕Con A誘發(fā)的肝損傷[18]。該結(jié)果與本研究結(jié)果不一致,其可能原因?yàn)槲墨I(xiàn)中起關(guān)鍵作用的DCs為常規(guī)樹(shù)突狀細(xì)胞(cDC),而小鼠肝中的DC為漿細(xì)胞樣樹(shù)突狀細(xì)胞(pDC)[19],雖然均為樹(shù)突狀細(xì)胞,兩者在免疫反應(yīng)中所起作用不同。漿細(xì)胞樣樹(shù)突狀細(xì)胞參與維持免疫耐受[20]。
KCs和DCs可以通過(guò)分泌一系列細(xì)胞因子,進(jìn)一步誘導(dǎo)免疫反應(yīng)。本研究結(jié)果顯示,與生理鹽水對(duì)照組相比,生理鹽水敲除組的肝TNF-α水平降低(P<0.05),而其他細(xì)胞因子均無(wú)明顯改變。Con A對(duì)照組中血清和肝勻漿中細(xì)胞因子除IL-12外水平均升高(P均<0.05)。與Con A對(duì)照組相比,Con A敲除組的肝IFN-γ,血清TNF-α、IL-4和IL-6水平均顯著升高(P均<0.05),肝TNF-α和血清IFN-γ、IL-5和IL-12水平未見(jiàn)明顯改變。表明CD11c+細(xì)胞的TAK1蛋白與免疫性肝損傷有關(guān),該細(xì)胞中TAK1敲除可影響Con A誘導(dǎo)的免疫性肝損傷中細(xì)胞因子的分泌,加重肝臟炎癥。但CD11c+細(xì)胞中TAK1的敲除不會(huì)影響血清IL-5 和IL-12的分泌。
TNF-α和IFN-γ是Con A誘導(dǎo)免疫性肝損傷中的關(guān)鍵因子,而肝組織中IFN-γ主要由聚集到肝內(nèi)的T細(xì)胞分泌,TNF-α則主要由KCs分泌。肝外這兩個(gè)因子則主要由T細(xì)胞分泌。本研究結(jié)果顯示,與生理鹽水組相比,Con A對(duì)照組血清和肝 組 織TNF-α和IFN-γ水平均顯著升高(P均<0.05),生理鹽水對(duì)照組血清和肝組織中IFN-γ,血清TNF-α水平均未見(jiàn)明顯改變,肝組織TNF-α水平顯著下降(P<0.05)。與Con A對(duì)照組相比,Con A敲除組肝 組 織中IFN-γ和血清中TNF-α均顯著升高(P均<0.05),而肝 組 織TNF-α和血清IFN-γ水平無(wú)明顯改變,提示CD11c+細(xì)胞中TAK1的敲除影響了這兩種因子的分泌。肝 組 織中IFN-γ表達(dá)增加,血清中則無(wú)明顯改變,說(shuō)明TAK1的敲除可促進(jìn)已經(jīng)聚集在肝中的T細(xì)胞分泌IFN-γ,而對(duì)肝外的T細(xì)胞分泌IFN-γ則無(wú)直接影響。和Con A對(duì)照組相比,Con A敲除組中TNF-α在血清中顯著升高,但在肝勻漿中卻無(wú)明顯改變,而與生理鹽水對(duì)照組相比,肝中TNF-α分泌明顯降低,提示CD11c+細(xì)胞中TAK1的敲除可能抑制了肝中KCs分泌TNF-α。這些均提示CD11+細(xì)胞中的TAK1敲除可以抑制KCs分泌TNF-α,促進(jìn)肝中聚集的T細(xì)胞分泌IFN-γ,進(jìn)一步加重炎癥反應(yīng)。
Th1型細(xì)胞主要分泌TNF-α、IFN-γ和IL-2等細(xì)胞因子,Th2型細(xì)胞主要分泌IL-4、IL-5、IL-6和IL-10等細(xì)胞因子。IL-4主要由T細(xì)胞分泌,可以刺激單核、肥大細(xì)胞等增殖,增強(qiáng)抗原呈遞功能,刺激NK細(xì)胞等分泌IFN-γ。本研究中,和Con A對(duì)照組相比,Con A敲除組血清中該因子表達(dá)顯著升高,說(shuō)明TAK1的敲除可以刺激T細(xì)胞分泌IL-4,加重炎癥反應(yīng)。IL-6是一種主要由Th2型細(xì)胞、巨噬細(xì)胞、甲狀腺細(xì)胞和成纖維細(xì)胞產(chǎn)生的炎癥因子,具有抗感染,促進(jìn)B細(xì)胞分泌抗體等多種生物活性作用[20]。本研究發(fā)現(xiàn),CD11c+細(xì)胞TAK1的敲除可以明顯促使血清中IL-6分泌增加。IL-5也在急性炎癥反應(yīng)中發(fā)揮了重要的作用,有研究表明,IL-5的敲除可以明顯加重血液、脾和骨髓中嗜酸性粒細(xì)胞的浸潤(rùn),延長(zhǎng)該細(xì)胞的壽命[21]。而本研究中可以看到鼠尾靜脈注射Con A的小鼠其IL-5分泌明顯增加,但Con A敲除組和Con A對(duì)照組間無(wú)明顯差異,說(shuō)明Con A可以促進(jìn)肝中嗜酸性粒細(xì)胞的浸潤(rùn),但CD11c+細(xì)胞中TAK1的敲除不會(huì)影響IL-5的分泌,即不會(huì)影響機(jī)體嗜酸性粒細(xì)胞的增殖和分化。
IL-12主要由單核巨噬細(xì)胞和樹(shù)突狀細(xì)胞等抗原提呈細(xì)胞以及B細(xì)胞分泌。中性粒細(xì)胞和Th細(xì)胞也可分泌該因子。而該因子可以有效刺激NKT細(xì)胞和NK細(xì)胞的活性,促進(jìn)Th1細(xì)胞的發(fā)育,誘導(dǎo)多種細(xì)胞因子產(chǎn)生,從而加重炎癥[22]。而本研究結(jié)果顯示,經(jīng)鼠尾靜脈注射Con A之后,Con A對(duì)照組和Con A敲除組之間無(wú)明顯差異,說(shuō)明CD11c+細(xì)胞TAK1的敲除不會(huì)影響IL-12分泌。而其具體機(jī)制尚需進(jìn)一步探討。
綜上所述,CD11c+細(xì)胞中TAK1的敲除可以促進(jìn)Con A誘導(dǎo)的肝損傷中肝細(xì)胞的壞死,加重肝組織損傷,抑制KCs中TNF-α的分泌,但不影響DCs等細(xì)胞分泌的IL-12,不影響嗜酸性粒細(xì)胞的增殖和分化。同時(shí)CD11c+細(xì)胞中TAK1的敲除可以促進(jìn)該損傷中部分Th1和Th2型細(xì)胞因子的分泌,提示CD11c+細(xì)胞中TAK1的功能可能為維持肝中的免疫穩(wěn)態(tài)。當(dāng)CD11c+細(xì)胞中TAK1被敲除時(shí),可加重Con A誘導(dǎo)的免疫性肝損傷。
[1]HEYMANN F,HAMESCH K,WEISKIRCHEN R,et al.The concanavalin A model of acute hepatitis in mice[J].Lab Anim,2015,49(Sup1):12-20.
[2]LEISTM,WENDEL A.A novel mechanism of murine hepatocyte death inducible by concanavalin A[J].J Hepatol,1996,25(6):948-959.
[3]KNOLLE P A,GERKEN G,LOSER E,et al.Role of sinusoidal endothelial cells of the liver in concanavalin A-induced hepatic injury in mice[J].Hepatology,1996,24(4):824-829.
[4]TIEGS G,HENTSCHELJ,WENDEL A.A Tcell-dependent experimental liver injury in mice inducible by concanavalin A[J].J Clin Invest,1992,90(1):196-203.
[5]BALLERSTADTR,EVANSC,MCNICHOLS R,et al.Concanavalin A for in vivo glucose sensing:a biotoxicity review[J].Biosens Bioelectron,2006,22(2):275-284.
[6]WANG H X,LIUM,WENG SY,et al.Immune mechanisms of concanavalin A model of autoimmune hepatitis[J].WorldJGastroenterol,2012,18(2):119-125.
[7]DAVID B A,REZENDE RM,ANTUNESMM,et al.Combination of mass cytometry and imaging analysis reveals origin,location,and functional repopulation of liver myeloid cells in mice[J].Gastroenterology,2016,151(6):1176-1191.
[8]FECHTNER S,F(xiàn)OX D A,AHMEDS.Transforming growth factor beta activated kinase1:a potential therapeutic target for rheumatic diseases[J].Rheumatology(Oxford),2017,56(7):1060-1068.
[9]ROHY S,SONGJ,SEKI E.TAK1regulates hepatic cell survival and carcinogenesis[J].J Gastroenterol,2014,49(2):185-194.
[10]IKEDAY,MORIOKA S,MATSUMOTO K,et al.TAK1 binding protein2is essential for liver protection from stressors[J].PLoSOne,2014,9(2):e88037.
[11]MORIOKA S,SAI K,OMORI E,et al.TAK1regulates hepatic lipid homeostasis through SREBP[J].Oncogene,2016,35(29):3829-3838.
[12]SONGIJ,YANGYM,INOKUCHI-SHIMIZU S,et al.The contribution of toll-likereceptor signaling to the development of liver fibrosis and cancer in hepatocyte-specific TAK1-deleted mice[J].IntJCancer,2018,142(1):81-91.
[13]PANY,LEI Z,WEI X,et al.TAK1deficiency in dendritic cells inhibits adaptive immunity in SRBC-immunized C57BL/6 mice[J].FEBSOpen Biol,2016,6(6):548-557.
[14]劉應(yīng)莉.骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞治療小鼠自身免疫性肝炎的實(shí)驗(yàn)研究[D].天津:天津醫(yī)科大學(xué),2012.
[15]ROTH R A,CASSELL DJ,MADDUX B A,et al.Regulation of insulin receptor kinase activity by insulin mimickers and an insulin antagonist[J].Biochem Biophys Res Commun,1983,115(1):245-252.
[16]WANGY,HUANG G,VOGEL P,et al.Transforming growth factor beta-activated kinase1(TAK1)-dependent checkpoint in the survival of dendritic cells promotes immune homeostasis and function[J].Proc Natl AcaDSci U S A,2012,109(6):343-E352.
[17]TOMIYAMA C,WATANABE H,IZUTSUY,et al.Suppressiverole o f hepatic dendritic cells in concanavalin A-induced hepatitis[J].Clin ExpImmunol,2011,166(2):258-268.
[18]WANGJ, CAOX, ZHAOJ, et al.Critical roles of conventional dendritic cells in promoting Tcell-dependent hepatitis through regulating natural killer Tcells[J].Clin Exp Immunol,2017,188(1):127-137.
[19]楊敬寧,趙杰.漿細(xì)胞樣樹(shù)突狀細(xì)胞與免疫耐受[J].國(guó)際免疫學(xué)雜志,2012,35(4):273-276.
[20]陳旭央,張冰,胡莉蔓.IL-17、IL-5、IL-4、IL-33等細(xì)胞因子在哮喘發(fā)病機(jī)制中的作用[J].中國(guó)醫(yī)藥導(dǎo)報(bào),2015,12(14):98-101.
[21]HAMELMANN E,GELFAND EW.Role of IL-5in the development of allergen-induced airway hyperresponsiveness[J].Int Arch Allergy Immunol,1999,120(1):8-16.
[22]趙桐,楊安鋼,溫偉紅.IL-12用于腫瘤基因治療的研究進(jìn)展[J].細(xì)胞與分子免疫學(xué)雜志,2015,31 (10):1424-1428.