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    福貢龍竹種子無菌誘導植株再生及快速繁殖

    2018-06-06 06:40:02呼延麗畢瑋李燦雯李丹王娟王毅王四海楊宇明
    西部林業(yè)科學 2018年3期
    關鍵詞:叢生生根無菌

    呼延麗,畢瑋,李燦雯,李丹,王娟,王毅,2,王四海,楊宇明

    (1.云南省林業(yè)科學院,云南 昆明 650201;2.國家林業(yè)局重點開放性實驗室云南珍稀瀕特森林植物保護和繁育實驗室,云南省森林植物培育與開發(fā)利用重點實驗室,云南 昆明 650201)

    福貢龍竹(Dendrocalamsfugongensis),又名馬跨(福貢傈僳語),系禾本科(Gramineae)竹亞科(Bambusoideae)牡竹屬(Dendrocalamus)大中型合軸叢生竹,產自云南福貢、維西等地,生于海拔1200m-1 800m的河谷地區(qū)[1]。福貢龍竹稈光滑,生長快速,姿態(tài)優(yōu)美,具有較高觀賞價值。福貢龍竹是怒江河谷地區(qū)的重要經濟竹種,既是良好的筍用竹,也是優(yōu)質的材用竹[2-3],其開發(fā)前景廣闊。

    竹類是一次性開花植物,開花周期長而不穩(wěn)定,開花后可能結實也可能不結實,但都將死亡。因此,人們還不能對竹類植物進行有規(guī)律的穩(wěn)定的有性繁殖[4]。竹類植物的組培快繁技術一直是竹類研究領域的熱點和難點,導致很多基于組培技術的深入研究如轉基因、體細胞雜交育種技術等研究目前尚無法在大多數竹種中開展,并極大阻礙竹類植物大規(guī)模的引種和推廣[5]。目前尚未見到國內外關于福貢龍竹良種選育和組織培養(yǎng)的研究報道。因此,本試驗以福貢龍竹種子為原始外植體,無菌誘導其植株再生,率先建立福貢龍竹的離體快繁體系,旨在短期內為種質資源的保存及工廠化育苗提供工作基礎,同時為進一步抗性研究、遺傳改良、生理生化特性研究等提供理論參考。

    1 材料與方法

    1.1 試驗材料

    供試材料采自云南省怒江州福貢縣,為2014年11月收獲的福貢龍竹種子。

    1.2 方法

    1.2.1 培養(yǎng)基和培養(yǎng)條件

    以MS為基本培養(yǎng)基,加入不同濃度的植物生長調節(jié)劑。均添加3%蔗糖,0.5%-0.7%瓊脂或卡拉膠,抗壞血酸100mg/L或活性炭0.5g/L,調整pH值的范圍在5.8±0.2。培養(yǎng)溫度為(26±2)℃,光照度為30-50μmol/m2·s-1,光照時間為12h/d。滅菌溫度為121℃,滅菌時間25min。

    1.2.2 種子消毒與預處理

    挑選色澤鮮亮、顆粒飽滿、無病蟲害的種子,剝掉種殼。自來水沖洗3min,去除種子附屬器即種尖長花柱一端較多的茸毛。再浸泡于20%漂白劑(甲A bleach)且振蕩10min后無菌水沖洗3遍,放入超凈臺。

    1.2.3 無菌系的建立和初代培養(yǎng)

    在超凈臺內,將處理好的種子先用75%酒精消毒60s,再浸入0.1%的HgCl2溶液。HgCl2溶液消毒時間設置10min、20min、30min、40min、50min、60min 6個時間梯度,即6個處理(表1)。每個處理接種40粒為1個重復,共3個重復,即每個處理接種120粒種子。消毒過程中需用鑷子不斷攪動,充分滅菌,待消毒完畢,從HgCl2溶液取出后用無菌水沖洗5遍,并用無菌濾紙吸干水分,分別接種于初代培養(yǎng)基MS上,放置于培養(yǎng)室,14d后開始統(tǒng)計萌芽和污染狀況,其余既不萌芽也沒污染的死胚不作統(tǒng)計。萌發(fā)率=(無污染萌芽的胚數/每個處理接種的總胚數)×100%,污染率=(污染外植體數/每個處理接種的總胚數)×100%,30d后觀察記錄種胚萌發(fā)和幼芽生長狀況。

    1.2.4 誘導叢生芽

    種子萌發(fā)長出單株無菌幼苗,苗高2-3cm時,則剪去芽頂部分,剩1-1.5cm到生長點,根也應盡量剪除,轉接到誘導叢芽培養(yǎng)基中,誘導叢生芽培養(yǎng)基配方為MS+6-BA+IBA+KT,其中6-BA濃度為1mg/L和2mg/L,IBA濃度為0.5mg/L和1mg/L,KT濃度為0.2mg/L和0.4mg/L,組合成8個處理(表2)。每個處理接種10瓶為1個重復,每瓶接種1個外植體,共3個重復,即每個處理接種30株苗。30d后統(tǒng)計叢生芽的誘導率、叢生芽數量和生長情況,從而篩選出最適合誘導叢生芽的植物生長調節(jié)劑的配比。叢生芽誘導率=(發(fā)叢芽的株數/總接種株數)×100%。

    1.2.5 繼代增殖培養(yǎng)

    誘導叢生芽發(fā)生后,需轉接到增殖培養(yǎng)基進行多次繼代增殖。把幼嫩叢生芽分株成3-9個芽為一叢,接到增殖培養(yǎng)基中進行壯苗,每30-60d繼代一次。增殖培養(yǎng)基配方為MS+6-BA+NAA,其中6-BA濃度為2mg/L、3mg/L和4mg/L,NAA濃度為0.1mg/L、0.2mg/L、0.3mg/L,組合成9個處理(表3)。每個處理接種10瓶為1個重復,每瓶3個叢芽,共3個重復,即每個處理接種30瓶,90個叢芽。60d后觀察統(tǒng)計其增殖率和生長情況,篩選最優(yōu)叢生芽增殖培養(yǎng)基。

    1.2.6 生根培養(yǎng)

    以3-5個苗叢為一組,切取生長健壯,高5cm左右的苗叢接種到生根培養(yǎng)基中,轉入添加不同濃度IBA和NAA的MS培養(yǎng)基進行生根培養(yǎng)。每個處理接種30瓶,每瓶1個單株,重復3次。培養(yǎng)7-10d可長出根點和須根,30d后統(tǒng)計生根數和生根率,并觀察苗叢的生長情況。生根率=(生根的外植體數/接種的外植體總數)×100%。由于考慮下一步組培苗移栽的成活率,故不等到根系發(fā)育完全便打開封口膜煉苗。

    1.2.7 煉苗移栽

    經生根培養(yǎng),挑選出生根整齊、生長健壯,苗高約5-7cm的植株進行煉苗。首先,將培養(yǎng)瓶移到大棚內放置1周,大棚內有覆蓋遮光率為50%的遮陽網,溫度控制在15-30℃,濕度為60%-70%。1周后揭開瓶蓋,每隔3-5h向瓶內噴霧狀水1次,且澆1層水,覆蓋1層薄膜保濕,保證80%以上相對濕度的小環(huán)境。持續(xù)4d左右,將苗取出,流水洗凈根上的培養(yǎng)基,移栽到預備好的2種基質中,即基質1(紅壤︰河砂︰腐殖土︰珍珠巖=2︰1︰1︰1)和基質2(紅壤︰河砂︰腐殖土=2︰1︰2)2個處理?;|均用0.2%的高錳酸鉀溶液拌土消毒備用。每個處理移栽30株,共3個重復。移栽時,小苗根部先用1‰的多菌靈溶液浸泡10min,移栽后立即用1‰的多菌靈水溶液作定根水,噴灑至基質浸透,用無紡布遮蓋保溫保濕。

    1.3 數據統(tǒng)計

    數據分析采用SPSS 16.0軟件,方差分析中兩兩均數比較采用S-N-K法。

    2 結果與分析

    2.1 外植體滅菌效果和初代培養(yǎng)

    福貢龍竹種皮難剝離,種子兩端有皺褶且被茸毛,不易消毒,對其進行預處理是控制污染行之有效的前提。把種子先用75%酒精消毒60s后,再浸入0.1%的HgCl2溶液,進行不同消毒時間處理,見表1。

    表1 不同消毒時間的滅菌效果

    注:表中不同小寫字母表示差異顯著(P<0.05)。下同。

    由表1可見,隨著消毒時間的增加,污染控制越好,但時間過長,易對種子造成傷害,導致幼芽畸形或死亡。種子浸入0.1%的HgCl2溶液30-40min后接種為宜,既能保持種子生活力又可控制污染率在10%左右。因此,D3號處理的消毒效果最為理想(圖1-A),種子萌發(fā)早,接種后5-14d,可萌芽產生小植株,且萌發(fā)率達65.8%。

    2.2 篩選誘導叢生芽的培養(yǎng)基

    初代培養(yǎng)中種子萌發(fā)長出的單株無菌幼苗,應及時轉接到誘導叢生芽的培養(yǎng)基。約兩周莖段基部開始分化芽叢,培養(yǎng)30d后芽苗長勢差異明顯,可形成3-7個芽的叢生芽,見表2。從試驗結果看,6-BA在誘導福貢龍竹叢生芽的分化過程中起著主導作用。在8組誘導形成叢生芽的培養(yǎng)基中,叢生芽誘導率差異不大,各培養(yǎng)基對誘導叢生芽的影響主要表現在成叢時間、繁殖倍數、長勢方面的差異。綜合來看,適合誘導福貢龍竹叢生芽的最佳培養(yǎng)基為F5(圖1-B):MS+6-BA 2mg/L +IBA 0.5mg/L +KT 0.2mg/L。

    圖1 福貢龍竹的組織培養(yǎng)再生過程

    注:A為剛萌發(fā)的無菌幼芽,B為單個芽尖培養(yǎng)誘導形成叢生芽,C為叢生芽的繼代增殖培養(yǎng),D為叢生芽誘導生根,E為煉苗4d的組培苗,F為移栽90d后的幼苗

    Fig.1 Regeneration process of D.fugongensis

    2.3 叢生芽繼代增殖培養(yǎng)基的篩選

    誘導出叢生芽后應及時分株,轉接到增殖培養(yǎng)基中。一般培養(yǎng)20d后,叢生芽基部可再分化出新的芽叢。經3-5次繼代增殖培養(yǎng),可擴繁成9-20個芽的叢生芽。培養(yǎng)60d后統(tǒng)計叢生芽在各培養(yǎng)基的增殖狀況,結果見表3。不同6-BA濃度對福貢龍竹增殖培養(yǎng)的效果不同,6-BA濃度較低時,增殖效果不明顯;隨著6-BA濃度的增加,組培苗分化的不定芽明顯增加,當6-BA濃度高達4mg/L時增殖倍數最高,但芽叢密集,葉片扭曲呈水草狀;當6-BA濃度為3mg/L時增殖倍數高且苗生長最健壯。因此,篩選出最優(yōu)增殖培養(yǎng)基為P5(圖1-C):MS+6-BA 3mg/L+NAA 0.2mg/L。

    表3 植物生長調節(jié)劑對福貢龍竹叢生芽繼代增殖的影響

    2.4 生根培養(yǎng)基的篩選

    叢生芽接種于生根培養(yǎng)基后,14d左右開始產生不定根,苗叢基部長出白色根尖,之后迅速伸長,30d形成良好根系。叢生芽在不添加IBA或NAA的培養(yǎng)基中無法生根,其在添加IBA或NAA的培養(yǎng)基中均能100%生根,差異在于發(fā)根的快慢和根系生長狀況,見表4。

    表4 植物生長調節(jié)劑對福貢龍竹生根的影響

    故從整體比較而言,福貢龍竹叢生芽生根的最優(yōu)培養(yǎng)基為R8(圖1-D),MS+IBA 1mg/L +NAA 0.5mg/L。

    2.5 煉苗與移栽

    將180瓶組培苗揭蓋,先置于室內煉苗1周后可清洗處理(圖1-E),然后移栽到已經備好的基質中,移栽初期尤其要控制好小環(huán)境溫度18-30℃,需常噴霧狀水,保持相對濕度70%-85%。移栽1個月左右有新葉抽出,移栽3個月后苗高可達20cm(圖1-F),見表5。3個月后統(tǒng)計成活率達81.1%。

    表5 不同移栽基質對組培苗生長的影響

    3 結論與討論

    以福貢龍竹種子的組培快繁技術研究結果表明,用75%酒精消毒60s,再用0.1%的HgCl2溶液消毒30min的效果最好;適宜誘導形成叢生芽的培養(yǎng)基為MS+6-BA 2mg/L+IBA 0.5mg/L+KT 0.2mg/L;最佳繼代增殖培養(yǎng)基為MS+6-BA 3mg/L+NAA 0.2mg/L;以MS+IBA 1mg/L+NAA 0.5mg/L為最佳生根培養(yǎng)基;將生根組培苗煉苗移栽,90d后成活率達81%以上。

    無菌材料的獲得是建立無菌體系的關鍵前提[6]。福貢龍竹種尖長花柱一端密布茸毛,滅菌操作較困難,故應盡量清洗去除種子附屬器,加之采用75%酒精消毒60s和0.1%HgCl2溶液消毒30min對外植體表面消毒處理,獲得比較好的滅菌效果,同時也保證了種子正常萌發(fā)。繼代增殖過程中,偶有叢生芽內生菌污染現象[7]。隨著繼代次數的增加,菌量積累后才顯現出來,對于內生菌污染問題,目前采取的措施是剔除被污染的叢生芽,今后將考慮加入抗生素、生物活性物質等加以防治。

    植物激素和植物生長調節(jié)物質在組織培養(yǎng)中起著至關重要的作用[8]。細胞分裂素在誘導叢生芽形成及增殖過程中作用明顯,當6-BA和KT濃度過高時,甚至出現不同程度的玻璃化叢生芽,苗一旦出現玻璃化,只能丟棄。不同原因為何均導致木質素合成受阻是研究植物玻璃化的核心問題[9]。要克服玻璃化現象,有待進一步研究。

    褐變在植物組織培養(yǎng)過程中普遍存在,尤以木本植物組織培養(yǎng)中褐變明顯[10]。福貢龍竹褐化的現象在不同基因型間差異顯著,且會隨著繼代時間的增長而加重。因此,以褐化較嚴重的植物材料為研究對象,設法建立無其他因素干擾的組培體系,對于研究植物褐化的發(fā)生及作用機制很有必要[11]。

    參考文獻:

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    [3] 孫茂盛,鄢波,徐田,等.竹類植物資源與利用[M].北京:科學出版社,2015.

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    [10] 陳正華.木本植物組織培養(yǎng)及其應用[M].北京:高等教育出版社,1986.

    [11] 馮代弟,王燕,陳劍平.植物組培褐化發(fā)生機制的研究進展[J].浙江農業(yè)學報,2015,27(6):1108-1116.

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