王小梅,金 文,程 磊,車岳鴻,傳楊陽,常 柯,郝大鵬
(西安航空學(xué)院 a.理學(xué)院;b.材料工程學(xué)院,西安 710077)
麥冬,為百合科沿階草屬多年生常綠草本植物,又名麥門冬、闊葉麥冬、沿階草等,其根如連珠節(jié)粒,肉質(zhì)呈紡錘狀,入藥。麥冬性微寒,味甘微苦,具有養(yǎng)陰生津、潤肺止咳、降血糖等功效[1-2]。麥冬多糖是麥冬的主要成分之一,同樣具有多種生物活性,如免疫活性、降血糖、抗心肌缺血、耐缺氧能力、抗過敏活性等[3-4]。湯軍等[5]研究表明,麥冬多糖能顯著增加小鼠的胸腺重量和脾臟重量,激活小鼠網(wǎng)狀內(nèi)皮系統(tǒng)的吞噬功能,并提高血清溶血素抗體水平,進而增強免疫活性。黃琦等[6]對47例2型糖尿病人在利用麥冬多糖治療前后分別檢測空腹血糖、餐前兩小時血糖、空腹血漿胰島素,結(jié)果表明,麥冬多糖具有降血糖及穩(wěn)定血糖的作用,能使周圍組織對胰島素抵抗降低。目前,對麥冬多糖的微觀形貌及分子鏈構(gòu)象研究較少,而微觀形貌和鏈構(gòu)象與多糖的生物活性關(guān)系密切,因此,對麥冬多糖微觀形貌及鏈構(gòu)象的研究意義重大。
原子力顯微鏡(AFM)為人們直接觀察生物大分子的微觀形貌提供了強有力的方法和手段。利用AFM可以在空氣中或者在溶液環(huán)境中直接對多糖分子進行觀察,制樣也比較簡單,檢測時能盡可能保持多糖分子的生理狀態(tài)和完整性[7-8]。而且,AFM測定多糖所需時間較短,可以獲得多糖樣品中大量單分子的統(tǒng)計學(xué)信息,目前已經(jīng)被廣泛地應(yīng)用到蛋白質(zhì)、多糖等生物大分子的表面形貌和鏈構(gòu)象的分析和研究中[9-11]。本文主要利用AFM對超聲提取的麥冬多糖的表面形貌、鏈構(gòu)象進行觀測,獲得不同溶液環(huán)境中多糖分子鏈構(gòu)象,聚集態(tài)行為特征等信息,為進一步研究多糖構(gòu)效關(guān)系提供實驗依據(jù)。
麥冬,浙江產(chǎn),購于西安市萬壽路中藥市場,Sephadex G-150凝膠,DEAE-cellulose52纖維素,氯化鈉、氫氧化鈉等均為分析純試劑,實驗用水為雙蒸水。
FD-1A真空冷凍干燥機(北京博醫(yī)康實驗儀器公司)、SPM29500J3型原子力顯微鏡(日本島津公司)、系列層析柱2.5×60 cm(上海琪特分析儀器有限公司)、TU1810型紫外可見分光光度計(北京普析通用儀器有限責(zé)任公司)、TB-215D電子天平(精度:1/105 g,北京賽多利斯儀器系統(tǒng)有限公司)、磁力攪拌器、RE252AA型旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)器。
麥冬塊根,60 ℃下烘干,粉碎。將200g干燥的麥冬粉末置于1000mL燒杯中,加入4倍體積的95%乙醇,于超聲波清洗器中超聲脫脂,同時攪拌20min,離心,收集殘渣,此脫脂過程重復(fù)三次,干燥殘渣。利用超聲波輔助提取麥冬多糖。超聲提取條件:超聲 10s,間隔15s,超聲次數(shù)90次,超聲功率為80W,按此提取過程提取兩次,將兩次的提取液合并,經(jīng)減壓濃縮,用四倍量95%乙醇純沉,離心,流水透析3天,真空冷凍干燥,得超聲提取的麥冬粗多糖,備用。
DEAE-cellulose52色譜柱層析:纖維素陰離子交換劑DEAE-cellulose52經(jīng)0.5mol/LNaOH 浸泡1h,蒸餾水洗到中性,再用0.5mol/L HCL浸泡1h,蒸餾水洗到中性,再用0.5mol/L NaOH浸泡1h,洗到中性,抽氣泡,裝柱,用蒸餾水平衡24h。將超聲提取的麥冬粗多糖0.5g溶于10mL蒸餾水中,抽濾,濾液注入DEAE-cellulose52色譜柱中,洗脫液為蒸餾水,流速:6s/滴,20min/管,洗脫液用全自動部分收集器收集,利用苯酚-硫酸法在487 nm波長下檢測糖含量。繪制DEAE-cellulose52色譜柱洗脫曲線圖(以試管數(shù)目為橫坐標(biāo),吸光度值為縱坐標(biāo))。合并各主峰溶液并濃縮,蒸餾水透析,冷凍干燥。
Sephadex G-150凝膠色譜柱層析:用適量蒸餾水浸泡Sephadex G-150葡聚糖凝膠,并用沸水煮2h,抽氣泡并裝柱,用蒸餾水平衡24h。將之前DEAE-cellulose52色譜柱層析收集的組分通過Sephadex G-150葡聚糖凝膠色譜柱分離。流速:4 s/滴,10 min/管。苯酚-硫酸法檢測。繪制Sephadex G-150凝膠色譜柱洗脫曲線圖(以試管數(shù)目為橫坐標(biāo),吸光度值為縱坐標(biāo))。合并各主峰溶液并濃縮,蒸餾水透析,冷凍干燥。
樣品的制備:將純化后的麥冬多糖用蒸餾水溶解,配制成1mg/mL的麥冬多糖溶液,在磁力攪拌器下攪拌4 h。將攪拌均勻的麥冬多糖樣品用蒸餾水稀釋到100ug/mL。再分別配制0.005mol/L的NaOH溶液及0.005mol/L的NaCL溶液,備用。吸取0.25mL 100ug/mL的麥冬多糖溶液,用蒸餾水、0.005mol/L NaOH溶液及0.005mol/L NaCl溶液分別定容到5mL的容量瓶中,得到不同溶液環(huán)境中(蒸餾水、0.005mol/L及0.005mol/L NaCl)5ug/mL的麥冬多糖溶液,搖勻,備用。分別取5uL不同溶液環(huán)境中5ug/mL麥冬多糖,滴到新剝離的云母片上,在室溫、大氣下自然風(fēng)干。
AFM觀測:將風(fēng)干的待測樣品分別置于原子力顯微鏡下測試,圖像均在Contact模式下獲得,探針為Si3N4,探針的微懸臂長為200 μm,彈性系數(shù)為0.28 N/m,利用原子力顯微鏡附帶的軟件對AFM圖像的形態(tài)學(xué)特征(如寬度、高度等)進行分析。
將超聲提取的麥冬多糖利用紫外可見分光光度計在190~400nm波長范圍內(nèi)進行光譜掃描(見圖1),檢測到多糖在260~280nm無吸收峰,說明該多糖樣品中不含有蛋白質(zhì)及核酸。
圖1 麥冬多糖的紫外光譜掃描曲線
超聲提取的麥冬多糖經(jīng)DEAE Cellulose-52色譜柱層析分離,用蒸餾水洗脫只得到一個峰(見圖2),將此峰收集,濃縮,注入Sephadex G-150凝膠色譜柱中層析分離,得到一個單一對稱峰(見圖3),說明經(jīng)DEAE Cellulose-52色譜柱層析及Sephadex G-150凝膠色譜層析后得到的麥冬多糖純度較高。
圖2 麥冬多糖的DEAE-cellulose52層析柱色譜圖
圖3 麥冬多糖的Sephadex G-150凝膠層析柱色譜圖
3.3.1 麥冬多糖在水溶液中的原子力顯微鏡分析
圖4為5ug/mL麥冬多糖在水溶液中的AFM圖,從圖4中可以看出,麥冬多糖由聚合物長鏈折疊、纏繞形成,分枝較多。鏈的高度為1nm左右,鏈寬約為0.8μm左右,而多糖的分子單鏈直徑的理論值一般為0.1~1.0nm,我們得到的圖像寬度遠大于多糖單鏈分子的估計值,這一方面可能是由于針尖在掃描時與分子間相互作用致使多糖鏈產(chǎn)生增寬效應(yīng);另一方面,糖鏈與帶負電的云母表面間范德瓦爾斯相互作用,使多糖分子鏈聚集平鋪在云母表面。糖鏈通過糖單元間不同的連接方式衍生出許多大小不同的環(huán)狀結(jié)構(gòu),尺寸在幾百納米到幾個微米不等,說明麥冬多糖具有高度分枝的化學(xué)結(jié)構(gòu)。麥冬多糖水溶液AFM圖像的結(jié)果與van der Waals 相互作用及鏈間氫鍵締合有關(guān)[12]。
圖4 5ug/mL麥冬多糖的AFM圖(溶劑:蒸餾水)
3.3.2 麥冬多糖在NaOH溶液中的原子力顯微鏡分析
圖5 5ug/mL麥冬多糖AFM圖(溶劑:0.005mol/L NaOH溶液)
圖5為麥冬多糖在0.005mol/L NaOH溶液中的AFM圖像,可以觀察到麥冬多糖在弱堿環(huán)境下形成如麥穗狀的多糖剛性鏈,其多糖分子鏈的平均高度在10nm左右,而多糖分子鏈的寬度約為120nm。與圖4麥冬多糖在水溶液中的AFM結(jié)果不同,這可能是由于弱堿環(huán)境下,麥冬多糖分子中的負離子發(fā)生了解離,與帶負電的云母片產(chǎn)生了更大的互斥效應(yīng),使得麥冬多糖分子形成剛性的分子聚合鏈,使得弱堿環(huán)境下麥冬多糖形成剛性分子股。
3.3.3 麥冬多糖在NaCl溶液中的原子力顯微鏡分析
圖6為5ug/mL麥冬多糖在0.005mol/L NaCl溶液中的AFM圖像,可以觀察到麥冬多糖呈現(xiàn)出樹枝狀結(jié)構(gòu)及環(huán)狀結(jié)構(gòu)。麥冬多糖分子鏈的平均高度在10~30nm,鏈寬度為0.1~0.8um不等,這是由于在微量的Na+存在的情況下,水溶液中的無序柔性分子轉(zhuǎn)變成為了鹽溶液中的剛性分子。與水溶液中麥冬多糖分子鏈的高度進行比較,結(jié)果表明,鹽溶液中麥冬多糖單分子鏈的高度有所增加,其主要原因是由于有鹽微粒附著在多糖鏈上,而且由于Cl-的存在,多糖分子與云母片之間的靜電吸附作用減弱,使得更多的麥冬多糖分子鏈相互纏繞在一起形成更粗的分子股,因此產(chǎn)生了數(shù)枝狀剛性多糖分子鏈結(jié)構(gòu)。低視場下,可以更為清晰地觀察到麥冬多糖在鹽溶液中所呈的結(jié)構(gòu),其剛性分子的構(gòu)象更加明顯。
綜上所述,麥冬多糖分子的表面形貌及鏈構(gòu)象會因為溶劑環(huán)境的不同而變化,分析麥冬多糖在不同溶劑中的AFM圖像可知,麥冬多糖在水溶液中由于靜電效應(yīng),多糖分子呈現(xiàn)柔性鏈分布在云母表面;在堿溶液中,麥冬多糖的AFM圖像與水溶液中不同,由于靜電排斥作用比在水溶液中強,使得多糖分子鏈不能呈現(xiàn)水溶液中的鏈環(huán)狀而是麥穗狀的剛性多糖分子。5ug/mL麥冬多糖在0.005mol/L NaCl溶液中時,由于靜電屏蔽效應(yīng),多糖分子呈樹枝狀或環(huán)狀結(jié)構(gòu),分子鏈的高度也因鹽的附著而有所增高,且多糖分子與云母片之間的靜電吸附作用減弱,多糖分子相互纏繞高度增加。以上結(jié)果均表明,通過改變多糖的溶液環(huán)境,可以改變其溶液構(gòu)象,而多糖的溶液構(gòu)象與其生物活性關(guān)系密切,這為多糖溶液構(gòu)象及構(gòu)效關(guān)系的研究提供了科學(xué)的實驗依據(jù)和理論支持。
[1] 王智杰,茍小林.麥冬降血糖作用的藥效學(xué)研究[J].中華中醫(yī)藥學(xué)刊,2003,21(6):898-899.
[2] KOU J,SUN Y,LIN Y,et al.Anti-inflammatory activities of aqueous extract from Radix Ophiopogon japonicus and its two constituents[J].Biological and Pharmaceutical Bulletin,2005,28(7):1234-1238.
[3] XIONG S L,LI A,HUANG N,et al.Antioxidant and immunoregulatory activity of different polysaccharide fractions from tuber of Ophiopogon japonicas[J].Carbohydrate Polymers,2011,86(3):1273-1280.
[4] ZHANG J,FAN S,MAO Y,et al.Cardiovascular protective effect of polysaccharide from Ophiopogon japonicus in diabetic rats[J].International Journal of Biological Macromolecules,2016,82(1): 505-513.
[5] 湯軍,黃琦,徐智英,等.麥冬多糖的免疫活性研究[J].中國中醫(yī)基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)雜志,1998,4(9):44-46.
[6] 黃琦,許家鸞.麥冬多糖對2型糖尿病血糖及胰島素抵抗的影響[J].浙江中西醫(yī)結(jié)合雜志,2002,12(2):81-82.
[7] WANG H,WILKSCH J J,STRUGNELL R A,et al.Role of capsular polysaccharides in biofilm formation:an AFM nanomechanics study[J].ACS Applied Materials & Interfaces,2015,7(23):13007-13013.
[8] PI J,WANG Y,ZHU H,et al.Immunomodulatory effects of polysaccharide compounds in macrophages revealed by high resolution AFM[J].Scanning,2016,38(6):792-801.
[9] ZHANG T,ZHENG Y,COSGROVE D J.Spatial organization of cellulose microfibrils and matrix polysaccharides in primary plant cell walls as imaged by multichannel atomic force microscopy[J].Plant Journal for Cell & Molecular Biology,2016,85(2):179-192.
[10] KOZIOL A,CYBULSKA J,PIECZYWEK P M,et al.Evaluation of structure and assembly of xyloglucan from tamarind seed(Tamarindus indica L.)with atomic force microscopy[J].Food Biophysics,2015,10(4):396-402.
[11] GROSS L,MOHN F,MOLL N,et al.The chemical structure of a molecule resolved by atomic force microscopy[J].Science,2009,325(5944):1110-1114.
[12] HOH J H,CLEVELAND J P,PRATER C B,et al.Quantized adhesion detected with the atomic force microscope[J].Journal of the American Chemical Society,2002,114(12):4917-4918.