李曉鵬,安顏穎,上官凌飛,房經(jīng)貴*
(1. 南京農(nóng)業(yè)大學(xué)園藝學(xué)院/江蘇省果樹品種改良與種苗繁育工程中心,江蘇南京 210095;2. 南京農(nóng)業(yè)大學(xué)農(nóng)學(xué)院,江蘇南京 210095;)
開花是植物生命過程中的重要環(huán)節(jié),它標(biāo)志著植物從營養(yǎng)生長到生殖生長的轉(zhuǎn)變,植物花發(fā)育機(jī)理也是植物發(fā)育生物學(xué)研究的熱點(diǎn)之一。植物花發(fā)育過程大致可分三個階段:開花決定(成花誘導(dǎo))、花的發(fā)端和花器官的發(fā)育。開花決定階段中,莖端分生組織形態(tài)上沒有變化,但是在生理生化和基因表達(dá)層面發(fā)生了改變[1],影響這一階段的因素主要是光照、溫度、水分和營養(yǎng)條件等;花的發(fā)端指莖端分生組織向花分生組織轉(zhuǎn)變,此過程由花分生組織決定基因控制[2];花器官的發(fā)育過程中,花器官特征基因決定花器官的特征,即決定花器官原基發(fā)育為各花器官。當(dāng)植物內(nèi)外環(huán)境達(dá)到合適的條件時,開花基因就會啟動花分生組織特征基因,使植物從營養(yǎng)生長轉(zhuǎn)變到生殖生長。
目前,人們通過對擬南芥和金魚草等模式植物,進(jìn)行了大量的關(guān)于成花過程相關(guān)基因的研究,對花發(fā)育分子機(jī)制網(wǎng)絡(luò)已有一定的認(rèn)識[3-4]。LEAFY(LFY)基因在花發(fā)育中起關(guān)鍵作用[3,5],是決定從營養(yǎng)生長向生殖生長階段轉(zhuǎn)變的重要元件[6-7],還參與維持花分生組織的正常功能、成花啟動、防止花分生組織的逆轉(zhuǎn)等功能[8-10]。但是該基因在植物組織內(nèi)的表達(dá)并不呈現(xiàn)專一性[11]。APETALA1(AP1)基因即是花分生組織特征基因,屬于MADS-box基因家族[12],AP1基因是LFY基因的直接靶基因[13],LFY基因靠激素調(diào)控路徑正向調(diào)控AP1基因的表達(dá)[14-15],AP1基因在LFY基因的下游表達(dá),又正向作用于LFY基因的表達(dá)。
葡萄是世界范圍內(nèi)的重要果樹,葡萄花發(fā)育有很多獨(dú)有的特點(diǎn)[16],研究其花器官的發(fā)育和果實(shí)的形成具有重要的理論和實(shí)踐意義。葡萄成花周期在一年以上,春季花序從芽側(cè)生分生組織(原基)發(fā)端,夏季進(jìn)入休眠狀態(tài),翌年結(jié)束休眠產(chǎn)生花與果實(shí)[17-18]。扦插育苗一直是葡萄苗木繁殖的主要方法,具有育苗時間短、繁殖量大、操作簡單、能保持品種優(yōu)良性狀等優(yōu)點(diǎn)[19]。扦插過程中,葡萄插條的生長狀況受到育苗基質(zhì)的透水、透氣能力和肥力影響,從而影響著葡萄苗木的育苗周期和經(jīng)濟(jì)效益。在前期的試驗(yàn)中發(fā)現(xiàn),部分葡萄插條會長出花序,并且不同扦插基質(zhì)之間的插條對比尤為明顯。針對這一現(xiàn)象,本研究選用不同物理性質(zhì)的基質(zhì),通過對不同基質(zhì)條件下葡萄插條花發(fā)育關(guān)鍵基因(LFY和AP1)表達(dá)的研究和分析,找出扦插基質(zhì)、成花關(guān)鍵基因和插條花序生長之間的關(guān)系,進(jìn)而為葡萄花發(fā)育調(diào)控提供理論參考。
試驗(yàn)于2015年在南京農(nóng)業(yè)大學(xué)園藝學(xué)院葡萄實(shí)驗(yàn)大棚中進(jìn)行。
供試品種為歐美雜種‘寒香蜜’(Reliance)。在2015年12月,選取生長健壯且粗度較為一致的枝條,修剪為1 m的插條,層積放置到2016年3月14日,修剪成含兩個芽的插條用于試驗(yàn)。插條下剪口靠節(jié)斜剪,上剪口距離芽眼3 cm平剪,用清水浸泡插條24 h左右,NAA800倍液處理15 s后插于營養(yǎng)缽中。扦插基質(zhì)主要采用珍珠巖、蛭石和營養(yǎng)土以及3種基質(zhì)的混合物,扦插基質(zhì)具體配比如表1所示。每種基質(zhì)處理設(shè)4次重復(fù),每重復(fù)20株,每處理共80株。
RNaseFree DNase酶Ⅰ、Ex-Taq酶、dNTPs、DNA Marker、SYBRGreenⅠ購自日本TakaRa公司;SuperScript Ⅱ反轉(zhuǎn)錄酶、RNaseOUTTM Ribonuclease Inhibitor購自Invitrogen公司。
鑒于葡萄花發(fā)育相關(guān)基因的重要性,根據(jù)植物成花途徑中有關(guān)基因的上下游關(guān)系、相互作用方式以及功能特點(diǎn),上調(diào)基因VvLFY和花器官特異性基因VvAP1作為研究對象[20],選取UBI作為內(nèi)參基因。引物序列(表2),由上海捷瑞生物技術(shù)有限公司合成。
分別于2016年3月23日、3月29日、4月3日、4月9日4個時期采集插條嫩枝,液氮研磨成粉備用。葡萄RNA的提取采用CTAB法[21-22],參照RNase Free DNase酶Ⅰ說明書進(jìn)行DNA消化。以總RNA為模板,參照SuperScriptⅡ反轉(zhuǎn)錄試劑盒說明書進(jìn)行操作。cDNA放于-20 ℃下保存?zhèn)溆谩?/p>
表1 各處理基質(zhì)配比用量(體積比)Table 1 Matrix combinations and amounts of different treatments (V/V)
表2 引物用途及序列Table 2 Sequence information of primers
參照已有研究報(bào)道[23-25],分別取2 μg葡萄芽不同發(fā)育時期的cDNA為模板和相應(yīng)的引物。利用Rotor-Gene熒光定量PCR儀進(jìn)行實(shí)時熒光定量PCR,反應(yīng)體系按SYBR GreenⅠ(TOYOBO, Osaka,Japan)說明書進(jìn)行。優(yōu)化后的反應(yīng)條件為95 ℃預(yù)變性60 s;95 ℃預(yù)變性20 s;58 ℃預(yù)變性20 s;72 ℃預(yù)變性20 s;45個循環(huán)。利用溶解曲線分析引物的特異性擴(kuò)增。每組3次重復(fù)。試驗(yàn)得到的數(shù)據(jù)用LinReg PCR和Rotor-Gene軟件計(jì)算,利用相對定量分析法進(jìn)行分析[26]。
2.1.1 苗木扦插成活率
由于空間原因,每個處理的插條首先集中扦插于大營養(yǎng)缽中,2016年4月15日插條基本成活,再分裝于小營養(yǎng)缽中。分裝過程中對不同扦插基質(zhì)的插條根系及地上部的生長情況進(jìn)行測量,結(jié)果見圖1和表3。由表3可知,6種基質(zhì)中的插條成活率都在90%以上,基質(zhì)A最低,成活率為91%,其它基質(zhì)的成活率幾乎為100%。
2.1.2 苗木新根數(shù)量及長度
由表3可知,4月15日,基質(zhì)A和基質(zhì)B插條根部大部分處于白色的愈傷組織階段,基質(zhì)B生有零星的新根。其它4種基質(zhì)中,扦插條均長出大量的新根,新根數(shù)目由低到高的處理分別為基質(zhì)D、基質(zhì)C、基質(zhì)E和基質(zhì)F,平均數(shù)目分別為27.6條、31.4條、53.2條和70.3條。新生根系的長度與根數(shù)目呈正相關(guān),根數(shù)目越多,新根越長。根平均長度最短的是基質(zhì)B,為1.344 cm,最長的為基質(zhì)F,為8.203 cm。
圖1 4月15日各個處理扦插苗生長情況Figure 1 Growth status of grape cuttings on April 15
2.1.3 苗木新生枝條生長情況
4月15日,各處理新生枝條的長度由低到高的順序?yàn)榛|(zhì)B、基質(zhì)A、基質(zhì)C、基質(zhì)D、基質(zhì)E和基質(zhì)F,高度分別是1.7 cm、2.2 cm、3.6 cm、6.9 cm和7.7 cm,基質(zhì)A和基質(zhì)B、基質(zhì)C和基質(zhì)D的新生枝條和根系的生長量不成正比,基質(zhì)A并沒有長出新根,這種情況同樣出現(xiàn)在基質(zhì)C和基質(zhì)D兩種處理中,基質(zhì)D的新根數(shù)量少于基質(zhì)C,但其地上部的生長狀況好于基質(zhì)C。
到5月30日時,地上部的枝條生長情況與4月15日類似,基質(zhì)A和基質(zhì)B中的枝條長勢矮小,其它4種基質(zhì)長勢健壯,新枝的高度和節(jié)間長度明顯大于前兩種基質(zhì)的插條。
表3 4月15日不同基質(zhì)組合的葡萄插條根系生長情況Table 3 Effect of different substrate combinations on roots development of grape cuttings on April 15
隨著插條的生長,3月29日基質(zhì)E和基質(zhì)F開始出現(xiàn)花苞,但是花苞產(chǎn)生后持續(xù)了一個月左右,最終枯萎脫落。期間,花苞的大小并沒有太大的變化。基質(zhì)C、基質(zhì)D的插條地上部發(fā)育遠(yuǎn)遠(yuǎn)好于基質(zhì)A和基質(zhì)B的插條,但是這4個處理并沒有花苞出現(xiàn)。
根據(jù)葡萄插條的生長動態(tài)以及花苞抽生情況,選取了4個時期的插條為材料,進(jìn)行成花基因的表達(dá)分析,基因分別為VvLFY和VvAP1。
VvLFY基因在不同基質(zhì)的插條中的表達(dá)趨勢如圖2所示,不同處理的表達(dá)趨勢不同。VvLFY在4個時期的表達(dá)整體呈下降趨勢?;|(zhì)E和F處理中,VvLFY在3月23日和3月29日的表達(dá)量明顯高于其它4種處理,4月3日,基質(zhì)E和F處理的基因表達(dá)量快速下降,表達(dá)量降低到與其它4種處理一致的水平。但是基質(zhì)C和基質(zhì)D的插條VvLFY表達(dá)量變化雖然不是特別明顯,但是總體上的趨勢呈先上升,在3月29日到達(dá)高峰,隨后降低到一致水平。
圖2 不同時期VvLFY基因的表達(dá)水平變化趨勢Figure 2 The variation of expression levels of VvLFY at different periods
VvAP1基因在不同基質(zhì)插條中的表達(dá)趨勢如圖3所示,VvAP1基因的表達(dá)呈先上升后下降的趨勢,但是有花苞形成的基質(zhì)E和F的插條的VvAP1表達(dá)量在3月23日、3月29日和4月3日的表達(dá)量高于其他基質(zhì)中的插條,6種處理在4月3日的表達(dá)量處于高峰,4月9日各基質(zhì)的插條VvAP1基因表達(dá)量下降,基質(zhì)E和F的插條VvAP1表達(dá)量在6種基質(zhì)處理中處于中游水平,而前期基因相對表達(dá)量最低的基質(zhì)A和B處理的基因表達(dá)量在4月9日表達(dá)最高。
在扦插的過程中,選擇適宜的基質(zhì)是決定扦插苗生產(chǎn)是否健康的重要因素。前人的研究表明,基質(zhì)的種類、不同配比對插穗生根影響差異顯著[27],不同基質(zhì)的配比對基質(zhì)的理化性質(zhì)改變明顯[28]。適宜的基質(zhì)與基質(zhì)的含水量、孔隙度和pH密切相關(guān),基質(zhì)的含水量高,則降低基質(zhì)的透氣性,插穗下端易腐爛;基質(zhì)的含水量過低,雖然增加了基質(zhì)的透氣性,但插穗可能因缺水導(dǎo)致枯萎現(xiàn)象??紫抖鹊母叩蜎Q定了基質(zhì)中氣相和液相的比例,從而影響插穗的成活率[29]。
圖3 不同時期VvAP1基因的表達(dá)水平變化趨勢Figure 3 The variation of expression levels of VvAP1 at different periods
本試驗(yàn)的結(jié)果表明,在不同的基質(zhì)中,插條的根系發(fā)育、地上部的生長均有明顯的差異。從生根情況看,所有含珍珠巖的基質(zhì)插條的生長狀況良好,其中,基質(zhì)E和基質(zhì)F優(yōu)于其他處理。插條的生根狀況會受到基質(zhì)性質(zhì)的影響。混合基質(zhì)中珍珠巖的持水性較差,但透氣性較好,在經(jīng)常澆水的前提下,有利于根系的形成,提高成活率和生根率;蛭石的吸水保水能力強(qiáng),透氣性比珍珠巖略差,含有蛭石的處理插條生長情況比珍珠巖略差;泥炭土的透氣性最差,結(jié)果表明泥炭土對葡萄插條的生長不利。
在本研究的6個處理中,最終僅有兩種處理的插條產(chǎn)生了花苞,兩種插條的共同點(diǎn)是初期抽生出花苞,最終根系及新生枝條生長狀況最好。高等植物的營養(yǎng)生長和生殖生長互相影響,扦插苗脫離母體,花苞的生長得益于枝條內(nèi)儲存的營養(yǎng)物質(zhì),基質(zhì)E和F的插條所處的環(huán)境適宜,促進(jìn)了花的分化,因此著生了花序,但在生長過程中由于營養(yǎng)生長的旺盛,給花序的營養(yǎng)供給不足,花序掉落,這也證明了扦插苗的營養(yǎng)生長占有主要的地位。
LFY基因是花分生組織的特異性基因。開花誘導(dǎo)后,植物的LFY基因被激活,LFY在頂端花序分生組織的周邊積累,然后在花原基進(jìn)行強(qiáng)表達(dá),接著在花發(fā)育過程中繼續(xù)表達(dá)[5]。LFY基因?qū)Ψ稚M織的營養(yǎng)性生長起抑制作用,使更多的分生組織細(xì)胞轉(zhuǎn)向花原基的形成[13,30]。本試驗(yàn)中,各個處理的VvLFY基因均有一定量的表達(dá),這表明葡萄插條全部具有成花的潛力?;|(zhì)E和基質(zhì)F的VvLFY基因表達(dá)量較高,促進(jìn)了花序的形成,而其它處理的VvLFY基因表達(dá)量較低,對抽生花序的影響較低,最終由于插條的生長狀況不良導(dǎo)致不能形成花苞。
在高等植物的成花過程中,AP1基因是花器官發(fā)育的相關(guān)基因,是一個關(guān)鍵的調(diào)控點(diǎn),AP1基因的表達(dá)受LFY基因的調(diào)控。本研究發(fā)現(xiàn)VvAP1基因的表達(dá)量變化滯后于VvLFY的表達(dá)量,說明了VvLFY正向調(diào)節(jié)VvAP1的表達(dá),但4月3日VvAP1仍然有一個表達(dá)高峰,此時的VvLFY的表達(dá)量已經(jīng)降低,這表明VvAP1基因的表達(dá)受多種因素的調(diào)節(jié),不僅僅限于VvLFY基因。VvAP1基因在插條的生長過程中呈先升高后降低的趨勢,表明所有插條的花發(fā)育進(jìn)程在萌芽期沒有中斷,只是由于環(huán)境因素并沒有產(chǎn)生花序,下一步的研究將對此時期的芽結(jié)構(gòu)進(jìn)行觀察分析。
成花是高等植物最關(guān)鍵的生命過程,決定繁育的成敗,由內(nèi)在控制元件和外部環(huán)境共同控制[31-32]。本研究通過不同配比的基質(zhì)扦插葡萄枝條,發(fā)現(xiàn)透氣性更好的基質(zhì)珍珠巖、蛭石中有利于插條的生長,也就是珍珠巖和蛭石混合基質(zhì)或者珍珠巖基質(zhì)中的插條表現(xiàn)更好,甚至能生長出花序,其他4種基質(zhì)的插條新枝發(fā)育不良,不能生長出花序。成花關(guān)鍵基因LFY和AP1在插條嫩枝的表達(dá)說明外部環(huán)境能影響插條成花的潛力;雖然后兩種基質(zhì)處理的插條新枝生長良好,能促進(jìn)花序形成,但由于營養(yǎng)物質(zhì)過多消耗在根和新枝等營養(yǎng)器官,導(dǎo)致花序發(fā)育不良、脫落,說明生殖生長建立在營養(yǎng)生長的基礎(chǔ)之上[33]。
[1] 雍偉東, 譚克輝, 許智宏, 等. 高等植物開花時間決定的基因調(diào)控研究[J]. 科學(xué)通報(bào), 2000(5): 455-466.
[2] SESSIONS A, YANOFSKY M F, WEIGEL D. Patteming the floral meristem[J]. Seminars in Cell & Developmental Biology,1998, 9(2): 221-226.
[3] COEN E S, ROMERO J M,DOYLE S, et al. Floricula: a homeotic gene required for flower development in antirrhinum majus[J]. Cell, 1990, 63(6): 1311-1322.
[4] THOMAS J. Molecular and genetic mechanisms of floral control[J]. The Plant Cell, 2004(16): 1-17.
[5] WEIGEL D, ALVAREZ J, SMYTH D R, et al. LEAFY controls floral meristem identity in Arabidopsis[J]. Cell, 1992, 69(5): 843-859.
[6] BLAZQUEZ M A, SOOWAL L N, LEE I, et al. LEAFY expression and flower initiation in Arabidopsis[J]. Development,1997, 124(19): 3835-3844.
[7] BLAZQUE M A, WEIGEL D. Integration of floral inductive signals in Arabidopsis[J]. Nature, 2000, 404(6780): 889-892.
[8] SHANNON S, MEEKS-WAGNER D R. Genetic interactions that regulate inflorescence development in Arabidopsis[J]. The Plant Cell, 1993, 5(6): 639-655.
[9] MANDEL M A, YANOFSKY M F. A gene triggering flower formation in Arabidopsis[J]. Nature, 1995, 377(6549): 522-524.
[10] MIZUKAMI Y, MA H. Determination of Arabidopsis floral meristem identity by AGAMOUS[J]. Plant Cell, 1997(9): 393-408.
[11] WANG L L, LIANG H M, PANG J L, et al. Regulation network and biological roles of LEAFY in Arabidopsis thaliana in floral development[J]. Hereditas(Beijing), 2004, 26(1): 137-142.
[12] BECKER A, THEI?EN G. The major clades of MADS-box genes and their role in the development and evolution of flowering plants[J]. Molecular Phylogenetics & Evolution,2003, 29(3): 464-489.
[13] RUIZGARCA L, MADUEO F, WILKINSON M, et al.Different roles of flowering time genes in the activation of floral initiation genes in Arabidopsis[J]. Plant Cell, 1997, 9(11): 1921-1934.
[14] WAGNER D, SABLOWSKI R W M, MEYERPWITZ E M.Transciptional activation of APETALA1 by LEAFY[J]. Science,1999, 285(5427): 582-584.
[15] PARCY F, NILSSON O, BUSCH M A, et al. A genetic framework for floral patterning[J]. Nature, 1998, 395(6702):561-566.
[16] MULLINS M G, BOUQUET A, WILLIAJRNS L E. Biology of the grapevine[M]. Cambridge: Cambridge University Press,1991.
[17] CARMONA M J, CHAB J , MARTNEZ-ZAPATER J M, et al.A molecular genetic perspective of reproductive development in grapevine[J]. Journal of Experimental Botany, 2008, 59: 2579.
[18] 劉丹, 孫欣, 慕茜, 等. 葡萄花芽發(fā)育相關(guān)基因在不同節(jié)位芽中的表達(dá)分析[J]. 中國農(nóng)業(yè)科學(xué), 2015, 48(10): 2007-2016.
[19] 李西萍. 葡萄硬枝扦插育苗技術(shù)[J]. 現(xiàn)代園藝, 2012(15): 26.
[20] 楊光, 岳林旭, 王晨, 等. 葡萄9個重要花發(fā)育相關(guān)基因在'藤稔'夏芽成花過程中的表達(dá)分析[J]. 果樹學(xué)報(bào), 2010, 27(6): 898-903.
[21] 張彥蘋, 王晨, 于華平, 等. 適于葡萄不同組織RNA提取方法的篩選[J]. 西北農(nóng)業(yè)學(xué)報(bào), 2010, 19(11): 135-140.
[22] CHANG S, PURYEAR J, CAIRNEY J. A simple and efficient method for isolating RNA from pine trees[J]. Plant Molecular Biology Reporter, 1993, 11: 113-116.
[23] 王晨, 劉洪, 房經(jīng)貴, 等. 基于 EST數(shù)據(jù)庫的葡萄 APETALA2基因cDNA克隆及其表達(dá)分析[J]. 果樹學(xué)報(bào), 2010, 27(2): 207-212.
[24] 慕茜, 劉更森, 孫欣, 等. 冬季休眠后期藤稔葡萄花芽發(fā)育相關(guān)基因表達(dá)的分析[J]. 園藝學(xué)報(bào), 2013, 40(5): 828-838.
[25] 任國慧, 陶然, 王晨, 等. 葡萄漿果著色與UFGT和MYBA基因表達(dá)量的關(guān)系研究[J]. 南京農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào), 2013(4): 30-36.
[26] RAMAKERS C, RUIJERA J M, LEKANE DEPREZ R H,et al. Assumption-free analysis of quantitative real-time polymerasechain reaction (PCR) data[J]. Neuroscience Letters,2003, 339(10: 62-66.
[27] 張黎, 翟彥. 不同基質(zhì)對月季半成熟枝扦插繁殖的影響[J]. 西北農(nóng)業(yè)學(xué)報(bào), 2005, 14(6): 112-115.
[28] 戴啟金, 施新程, 金申燕, 等. 不同基質(zhì)對美國側(cè)柏扦插生根的影響[J]. 林業(yè)科學(xué), 2004, 29(1): 53-54.
[29] 王月生, 周志春, 金國慶, 等. 基質(zhì)配比對南方紅豆杉容器苗及其移栽生長的影響[J]. 浙江林學(xué)院學(xué)報(bào), 2007, 24(5): 643-646.
[30] COEN E S, CARPENTER R. The metamorphosis [J]. The Plant Cell, 1993(5): 1175-1181.
[31] ECKARDT N A. A time to grow time to flower[J].The Plant Cell, 2005(17): 2615-2617.
[32] ZHANG S, YANG C, PENG J, et al. GASA5, a regulator of flowering time and stem growth in Arabidopsis thaliana[J].Plant Molecular Biology, 2009, 69(6): 745-759.
[33] 李彥連, 張愛民. 植物營養(yǎng)生長與生殖生長辨證關(guān)系解析[J].中國園藝文摘, 2012(2): 36-37.