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    雙氫青蒿素單獨和聯(lián)合甲氨蝶呤在皮膚T細(xì)胞淋巴瘤細(xì)胞系的抗腫瘤作用

    2018-05-18 09:25:33張芊王藝萌姜蔚蔚谷曉廣張春雷
    關(guān)鍵詞:兔抗人青蒿素單克隆

    張芊,王藝萌,姜蔚蔚,谷曉廣,張春雷

    (北京大學(xué)第三醫(yī)院,北京100191)

    皮膚T細(xì)胞淋巴瘤(Cutaneous T cell lymphoma,CTCL)是一種原發(fā)于皮膚的非霍奇金淋巴瘤,其特征性表現(xiàn)是惡性單克隆性T淋巴細(xì)胞在皮膚的浸潤[1]。CTCL約占所有原發(fā)于皮膚淋巴瘤的75%~80%。大約2/3的CTCL是蕈樣肉芽腫(Mycosis fungoides,MF) 或 Sézary 綜合征(Sézary syndrome,SS),以MF最為常見[1]。目前CTCL治療手段包括局部和系統(tǒng)性治療,比如光療、甲氨蝶呤(Methotrexate,MTX)等,但尚無治愈的方法,仍需要探索新型的療效好、作用持久、不良反應(yīng)少的治療方法。青蒿素是從菊科植物黃花蒿(Artemisia annua L.)提取的,我國屠呦呦教授發(fā)現(xiàn)的抗瘧疾藥物,她因此獲得了2015年諾貝爾生理學(xué)獎。雙氫青蒿素(Dihydroartemisinin,DHA)是青蒿素最重要的活性衍生物,最初用于抗瘧疾治療,不良反應(yīng)小,后來研究證實其對多種腫瘤具有治療作用,可能通過氧化應(yīng)激反應(yīng)、DNA損傷和修復(fù)、誘導(dǎo)細(xì)胞凋亡等方式選擇性地抑制腫瘤細(xì)胞[2-4]。MTX是具有細(xì)胞毒性的葉酸拮抗劑,常用于CTCL治療[5]。本研究將通過觀察DHA和MTX對CTCL細(xì)胞系HH細(xì)胞的增殖和凋亡的影響,檢測細(xì)胞凋亡相關(guān)蛋白表達(dá),探討DHA聯(lián)合MTX治療CTCL的分子機制。

    1 資料與方法

    1.1 主要資料及試劑 HH細(xì)胞系(ATCC號CRL-2105),RPMI1640 培養(yǎng)基(美國 Gibco?公司,貨號22400-089),胎牛血清(美國Gibco?公司,10099-141),DHA(美國 Sigma-Aldrich?公司,批號 D7439),MTX(美國輝瑞?公司,批號R46884),MTS細(xì)胞增殖檢測試劑盒(美國Promega?公司,G3580),F(xiàn)ITCAnnexin V凋亡檢測試劑盒(美國CA?公司),7-AAD試劑盒(美國BD?公司,559925),兔抗人Noxa單克隆抗體(美國Abcam?公司),兔抗人Caspase 3單克隆抗體、兔抗人Bax單克隆抗體、兔抗人p53單克隆抗體、兔抗人γ-H2AX單克隆抗體、兔抗人ATM單克隆抗體、鼠抗人β-Actin單克隆抗體(美國Cell Signaling Technology?公司),細(xì)胞培養(yǎng)箱(美國Thermo?公司)。

    1.2 細(xì)胞培養(yǎng) HH細(xì)胞在含有10%胎牛血清和1%青鏈霉素的RPMI1640培養(yǎng)基中,置于37℃5%CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng)傳代,取不同濃度的對數(shù)期細(xì)胞進(jìn)行后續(xù)實驗。

    1.3 MTS法測定細(xì)胞的存活率 取對數(shù)期HH細(xì)胞,細(xì)胞計數(shù)以2×104/mL的濃度在6孔板中接種2 mL,通過倍比稀釋分別在實驗組加入2.5、5.0、10.0、20.0 μmol/L DHA,5.0 μmol/L MTX,5.0 μmol/L DHA聯(lián)合5.0 μmol/L MTX(聯(lián)合組),對照組加入二甲基亞砜(Dimethyl sulfoxide,DMSO)后孵育箱培養(yǎng)。在 24、48、72 h 時混勻細(xì)胞,從各組取 100 μL 細(xì)胞混懸液至96孔板,每個濃度做3個復(fù)孔,每孔加入20 μL預(yù)先配置的MTS溶液,在37℃孵箱中孵育2 h,用分光光度儀測定490 nm處吸光值(A值),重復(fù)測定3次。與對照組比較,計算細(xì)胞活力,細(xì)胞增殖百分比=[(A值處理組-A值培養(yǎng)基)/(A值對照組-A 值培養(yǎng)基)] × 100%。

    1.4 流式細(xì)胞儀檢測細(xì)胞凋亡及細(xì)胞周期 取對數(shù)生長期的HH細(xì)胞以2×104/mL接種于6孔板,每孔3 mL,通過倍比稀釋分別在實驗組加入2.5、5.0、10 μmol/L DHA,5.0 μmol/L MTX,5.0 μmol/L DHA聯(lián)合5.0 μmol/L MTX(聯(lián)合組),對照組加入DMSO,每孔 1 μL,培養(yǎng) 24 h 或 48 h。

    細(xì)胞周期的檢測:每組收集計數(shù)2×105個細(xì)胞,離心后在0.3 mL PBS緩沖液中重懸,向細(xì)胞中逐滴加入0.7 mL冰無水乙醇固定細(xì)胞,加入時不斷震蕩,置于-20℃下18 h。細(xì)胞懸液200轉(zhuǎn)/min離心5 min去除固定液,冰PBS緩沖液洗滌2次,沉淀用300μL PBS緩沖液重懸,加入10 μL 7-AAD溶液,避光室溫染色15 min,過濾后用流式細(xì)胞儀PE/7-AAD通道分析,計算G0/G1期、S期和G2/M期細(xì)胞所占比例。重復(fù)測定3次,取平均值。

    細(xì)胞凋亡的檢測:每組收集計數(shù)105個細(xì)胞,以冷PBS緩沖液洗滌2次,用細(xì)胞結(jié)合緩沖液以106個/mL的濃度重懸細(xì)胞,每管100 μL的細(xì)胞懸液加入FITC偶聯(lián)的Annexin V溶液5 μL和7-AAD溶液5 μL,混勻后避光染色15 min。每管加入300 μL結(jié)合緩沖液,1 h內(nèi)用流式細(xì)胞儀檢測,采用FlowJo V10軟件分析,計算FITC陽性細(xì)胞百分比。重復(fù)測定3次,取平均值。

    1.5 Western印跡法檢測細(xì)胞凋亡及細(xì)胞周期相關(guān)蛋白的表達(dá) 取 5.0 μmol/L DHA組、5.0 μmol/L MTX 組、5.0 μmol/L DHA 聯(lián)合 5.0 μmol/L MTX 組(聯(lián)合組)及對照組培養(yǎng)48 h的HH細(xì)胞106個,離心棄上清液,用PBS洗滌細(xì)胞2次,加入蛋白裂解液置于冰上,每隔5 min漩渦振蕩儀混勻3次,4℃18 000轉(zhuǎn)/min離心10 min。收集上清液,用BCA法蛋白質(zhì)定量試劑盒對待測蛋白進(jìn)行蛋白定量。將蛋白電泳上樣緩沖液加入到總蛋白溶液中,充分混勻,水浴鍋100℃煮沸變性5 min。在SDS-PAGE凝膠每孔分別加入30 μg總蛋白或2 μL預(yù)染色蛋白質(zhì)分子量標(biāo)準(zhǔn)標(biāo)志,開始電泳時90V恒壓20~30min,待蛋白樣品進(jìn)入分離膠后增加至130 V恒壓40~60 min,電泳至溴酚藍(lán)到達(dá)分離膠底部。300 mA 90 min將電泳條帶電轉(zhuǎn)印到PVDF膜上,5%脫脂奶粉封閉1 h,分別加入一抗,1∶800稀釋兔抗人Caspase 3單克隆抗體、1∶800 稀釋兔抗人 Bax單克隆抗體、1∶1 000 稀釋兔抗人Noxa單克隆抗體、1∶1 000稀釋兔抗人p53單克隆抗體、1∶1 000稀釋兔抗人ATM單克隆抗體、1∶1 000稀釋兔抗人γ-H2AX單克隆抗體、1∶1 000稀釋鼠抗人β-Actin單克隆抗體,4℃過夜。封閉洗滌緩沖液(TBST)洗滌3次,加入IRDyeTM 800CW染料標(biāo)記的山羊抗兔二抗、或山羊抗鼠二抗,室溫孵育1 h,TBST洗滌3次,雙紅外激光掃描成像系統(tǒng)進(jìn)行熒光顯色,分析。

    1.6 統(tǒng)計學(xué)分析 采用SPSS 21.0軟件,計量資料以±s表示,增殖實驗數(shù)據(jù)采用重復(fù)測量方差分析,流式細(xì)胞儀細(xì)胞周期實驗數(shù)據(jù)采用單因素方差分析。流式細(xì)胞凋亡實驗數(shù)據(jù)通過兩因素方差分析探討時間和濃度對凋亡比例的影響。若時間和濃度的交互作用有統(tǒng)計學(xué)意義,采用SPSS中一般線性模型模塊的UNIANOVA和EMMEANS子句實現(xiàn)單獨效應(yīng)分析[6]。即固定時間,比較不同濃度對凋亡比例的影響;固定濃度,比較不同時間對凋亡比例的影響。組間比較采用LSD檢驗進(jìn)行兩兩比較。雙側(cè)P<0.05為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。

    2 結(jié)果

    2.1 DHA和MTX對HH細(xì)胞體外增殖的影響 與對照組相比,2.5、5.0、10.0、20.0 μmol/L DHA 組、5.0 μmol/L MTX組、聯(lián)合組細(xì)胞增殖百分比有不同程度降低。重復(fù)測量方差分析顯示,DHA組間細(xì)胞增殖百分比隨時間變化存在趨勢(F=716.967,P<0.001,見圖1A),且各組間細(xì)胞增殖抑制百分比隨著 DHA 濃度增加也存在趨勢(F=17.622,P<0.05),差異有統(tǒng)計學(xué)意義,見圖1A。5.0 μmol/L DHA組、5.0 μmol/L MTX組和聯(lián)合組細(xì)胞增殖百分比抑制隨時間變化存在趨勢(F=1236.930,P<0.001),見圖1B,聯(lián)合組抑制作用最明顯。各組數(shù)據(jù)進(jìn)行兩兩比較,LSD檢驗顯示,24、48、72 h各組間細(xì)胞增殖百分比差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05)。24、48、72 h聯(lián)合組細(xì)胞增殖百分比低于5.0 μmol/L DHA組和5.0 μmol/L MTX 組,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.01)。這些結(jié)果表明,DHA在體外能顯著抑制HH細(xì)胞增殖,且DHA聯(lián)合MTX對HH細(xì)胞增殖的抑制作用明顯強于這兩者單獨應(yīng)用。

    2.2 DHA和MTX對HH細(xì)胞周期的影響 HH細(xì)胞經(jīng)過不同濃度 DHA(2.5、5.0、10.0 μmol/L)、DMSO或甲氨蝶呤處理48 h后,G0/G1期、G2/M期細(xì)胞比例差異有統(tǒng)計學(xué)意義(F=8.015,P<0.05;F=32.245,P<0.001);S期細(xì)胞比例差異無統(tǒng)計學(xué)意義(F=1.526,P=0.258),見表1。與對照組相比,各濃度DHA組、MTX組和聯(lián)合組G0/G1期細(xì)胞比例明顯上升、G2/M期細(xì)胞比例明顯下降(P<0.05)。但不同濃度DHA組間細(xì)胞周期兩兩比較,差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05)。聯(lián)合組與單獨應(yīng)用DHA組(5.0 μmol/L)或MTX(5.0 μmol/L)組分別比較細(xì)胞周期,差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05)。

    表1 DHA作用HH細(xì)胞48 h后對細(xì)胞周期的影響 (%,±s)

    表1 DHA作用HH細(xì)胞48 h后對細(xì)胞周期的影響 (%,±s)

    組別 G0/G1期 S期 G2/M期2.5 μmol/L DHA 60.50± 4.58 38.02± 4.90 1.48±1.01 5.0 μmol/L DHA 59.64± 9.83 39.34±10.43 1.03±1.34 10.0 μmol/L DHA 54.12± 8.84 44.79± 9.55 1.09±1.94 5.0 μmol/L MTX 61.68± 4.97 38.32± 4.97 0.00±0.00聯(lián)合組 65.98±12.47 34.02±12.47 0.00±0.00對照組 35.76± 8.32 50.56±10.96 13.88±3.65 F 8.015 1.526 32.245 P<0.05 0.258 <0.001

    2.3 DHA和MTX對HH細(xì)胞凋亡的影響 2.5、5.0、10.0 μmol/L DHA 組,5.0 μmol/L MTX 組,聯(lián)合組和對照組HH細(xì)胞經(jīng)過24 h或48 h處理后,時間和濃度的交互作用差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05),凋亡細(xì)胞比例呈濃度依賴并隨時間延長而升高,聯(lián)合用藥效果強于單藥。隨著處理時間延長,藥物組細(xì)胞凋亡百分比增加(P<0.05)。藥物組處理HH細(xì)胞24 h 后,隨著 DHA 濃度升高(2.5、5.0、10.0 μmol/L),HH細(xì)胞凋亡百分比從11.96%(2.5 μmol/L DHA)增加到22.35%(10.0 μmol/L DHA),凋亡細(xì)胞百分比呈濃度依賴,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(F=6.866,P<0.05);見圖2,處理48 h后,上述凋亡百分比從21.89%增加到42.70%,也存在濃度依賴(F=50.506,P<0.001)。單獨應(yīng)用5.0 μmol/L DHA 或5.0 μmol/L MTX 處理HH細(xì)胞24 h,凋亡細(xì)胞百分比分別為15.86%和15.56%,而兩者聯(lián)合時凋亡百分比增加至21.14%,各組差異有統(tǒng)計學(xué)意義(F=3.513,P<0.05);當(dāng)處理48 h后,單獨應(yīng)用DHA或MTX凋亡細(xì)胞百分比為31.60%和30.53%,而聯(lián)合組為46.76%,各組差異有統(tǒng)計學(xué)意義(F=41.713,P<0.001)。處理24 h或48 h后DHA各濃度組細(xì)胞凋亡百分比進(jìn)行兩兩比較,除 24 h 2.5 μmol/L 和 5.0 μmol/L DHA 組以外,其余各組差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05)。處理48 h后,聯(lián)合組分別與單藥DHA或MTX組兩兩比較,聯(lián)合組凋亡細(xì)胞比例均高于兩單藥組,且差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05),但24 h時上述差異無統(tǒng)計學(xué)意義。

    圖2 流式細(xì)胞儀檢測DHA和MTX對HH細(xì)胞凋亡的影響

    2.4 DHA和MTX對HH細(xì)胞凋亡和DNA損傷相關(guān)蛋白表達(dá)的影響 與對照組相比,各實驗組γ-H2AX、ATM、p53、Bax、Noxa、Caspase 3 活化片段蛋白條帶灰度增強,內(nèi)參對照是β-Actin。和單藥組相比,聯(lián)合用藥組 γ-H2AX、ATM、p53、Bax、Noxa、Caspase 3活化片段的蛋白表達(dá)明顯增加,而且聯(lián)合組增加程度強于單藥組,見圖3。

    3 討論

    CTCL是一種原發(fā)于皮膚的惡性淋巴瘤,探索具有良好應(yīng)用前景的CTCL治療方式至關(guān)重要的是發(fā)現(xiàn)新型有效、不良反應(yīng)少的藥物。如前所述,青蒿素是一種含有內(nèi)過氧化基團(tuán)的倍半萜內(nèi)酯化合物,屠呦呦教授闡明青蒿素對抗瘧原蟲感染有效。瘧疾治療全球標(biāo)準(zhǔn)是含青蒿素與其衍生物的聯(lián)合療法,幫助挽救了數(shù)百萬人的生命。DHA是青蒿素活性代謝產(chǎn)物,不良反應(yīng)少,耐受性好,臨床應(yīng)用廣泛。近年來很多研究顯示DHA對不同來源的腫瘤具有很強的治療作用[2-4]。但是很少有研究探討DHA對于CTCL的作用,而且DHA抗腫瘤的具體機制仍未被發(fā)現(xiàn)。針對這個問題,本研究首次發(fā)現(xiàn)DHA對CTCL細(xì)胞系HH細(xì)胞具有抗腫瘤作用。DHA作用CTCL細(xì)胞后,細(xì)胞增殖明顯下降,并呈濃度依賴和時間依賴。CTCL細(xì)胞增殖受抑制,可能是腫瘤細(xì)胞停止生長(細(xì)胞周期阻滯)或死亡。筆者觀察發(fā)現(xiàn)DHA作用CTCL細(xì)胞后,凋亡細(xì)胞比例增加,凋亡相關(guān)蛋白Caspase 3活化片段表達(dá)上升,并且當(dāng)DHA與MTX聯(lián)合時作用增強。雖然DHA能使CTCL細(xì)胞G0/G1期細(xì)胞比例上升、G2/M期下降,但不存在濃度依賴;并且S期細(xì)胞比例下降差異無統(tǒng)計學(xué)意義。DHA對CTCL的抗腫瘤作用可能是通過誘導(dǎo)細(xì)胞凋亡產(chǎn)生,聯(lián)合應(yīng)用MTX能增強上述效果。

    圖3DHA和MTX對HH細(xì)胞凋亡和DNA損傷相關(guān)蛋白的影響

    目前認(rèn)為DHA治療腫瘤的作用機制可能是:DHA的內(nèi)過氧化基團(tuán)裂解,隨后產(chǎn)生以碳為中心的自由基,激活后使細(xì)胞蛋白質(zhì)烷基化,還能產(chǎn)生ROS(Reactive oxygen species)等超氧化物[7];氧化應(yīng)激、DNA損傷以及蛋白質(zhì)烷基化使細(xì)胞正常功能不能維持,導(dǎo)致細(xì)胞周期停滯或死亡[2,8]。除此之外,DHA還能抑制血管生成[9]以及阻止腫瘤轉(zhuǎn)移和侵襲[3,10]。青蒿素及其衍生物作用于60種腫瘤細(xì)胞系后,研究發(fā)現(xiàn)某些DNA損傷應(yīng)答和修復(fù)基因mRNA表達(dá)與其lgIC50值相關(guān)[11],研究者推測這可能是因為青蒿素及其衍生物造成了DNA損傷,后有研究證實青蒿琥酯(青蒿素的一種活性衍生物)能夠劑量依賴性誘導(dǎo)DNA斷裂[12]。γ-H2AX是一種DNA相關(guān)組蛋白,DNA雙鏈斷裂(Double stranded breaks,DSBs)誘導(dǎo)其表達(dá),是 DSBs的標(biāo)志[13]。DSBs發(fā)生后細(xì)胞啟動DNA損傷應(yīng)答,主要通過激活DNA依賴性蛋白激酶和ATM(Ataxia telangiectasia-mutated)等[14]。ATM激活后啟動DNA修復(fù),如果修復(fù)失敗,沒能切除的DSBs使ATM直接或間接地活化p53,增強p53下游促凋亡基因轉(zhuǎn)錄,誘導(dǎo)細(xì)胞凋亡[15-16]。p53轉(zhuǎn)錄調(diào)節(jié)的促凋亡基因包括FasR、Bax、Puma、Noxa、Apaf-1和PIDD,都是DNA損傷應(yīng)答下游編碼蛋白[16]。促凋亡蛋白Bax和僅含BH3區(qū)域蛋白(BH3-only proteins)Noxa均屬Bcl-2家族,參與調(diào)控線粒體凋亡通路,繼而激活Caspase 9,級聯(lián)反應(yīng)激活Caspase 3,執(zhí)行細(xì)胞凋亡[17-18]。在本研究中,DHA、MTX或兩者聯(lián)合作用于HH細(xì)胞后,細(xì)胞增殖受抑制,細(xì)胞凋亡比例上升,DSBs標(biāo)志γ-H2AX、DNA修復(fù)相關(guān)基因ATM、p53及下游促凋亡基因Bax、Noxa、Caspase 3活化片段蛋白量增加,提示DHA和MTX作用HH細(xì)胞系后,可能通過DNA損傷、誘導(dǎo)凋亡來抑制細(xì)胞增殖。

    MTX是一種葉酸拮抗劑、還能抑制DNA甲基化,可用于多種CTCL治療,比如MF、SS、原發(fā)皮膚CD30陽性淋巴增殖性疾病和間變性大細(xì)胞淋巴瘤,特別是進(jìn)展期MF、SS和大細(xì)胞變MF[19-20]。當(dāng)葉酸拮抗劑與其他治療方法結(jié)合使用時,能產(chǎn)生協(xié)同效果,Bozic等[21]分析計算出聯(lián)合治療要優(yōu)于單藥治療。對于MF或SS患者,MTX低劑量單藥應(yīng)用有效率在33%,與貝沙羅汀聯(lián)合有效率在66%,與干擾素α聯(lián)用有效率在74%[22]。在本研究中,與單用DHA相比,DHA聯(lián)合MTX對HH細(xì)胞有更明顯的增殖抑制、凋亡誘導(dǎo)作用,并且凋亡相關(guān)基因p53、Noxa、Bax、Caspase 3 和 DNA 損傷相關(guān)基因 γ-H2AX、ATM蛋白的表達(dá)增加也強于DHA或MTX單藥,提示DHA聯(lián)合MTX能明顯提高對CTCL細(xì)胞系HH細(xì)胞的生長抑制。

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