徐 杉,王蕾杰,石 磊
(中國醫(yī)學科學院基礎醫(yī)學研究所 北京協(xié)和醫(yī)學院基礎學院 生物化學與分子生物學系醫(yī)學分子生物學國家重點實驗室,北京100005)
Zika病毒為黃病毒屬、單股正鏈的RNA病毒。近幾年,Zika病毒的爆發(fā)嚴重危害了人類健康。研究發(fā)現(xiàn),孕婦感染Zika病毒與新生兒小頭癥的發(fā)病率升高密切相關[1]。此外,Zika病毒會損害小鼠睪丸的發(fā)育[2],從而影響生殖系統(tǒng)。因此,Zika病毒成為威脅人類健康的重大挑戰(zhàn)。Zika病毒侵入細胞后,其基因組RNA通過翻譯產(chǎn)生3種結構蛋白(C蛋白、prM蛋白和E蛋白)和7種非結構蛋白(NS1、NS2A、NS2B、NS3、NS4A、NS4B和NS5)[3]。結構蛋白作為病毒結構的組成部分,參與病毒組裝;非結構蛋白的協(xié)調作用在病毒蛋白成熟、基因組復制及病毒組裝中起著重要作用。
Zika病毒進入細胞后,病毒基因組(+)RNA首先在NS5 RNA聚合酶的作用下復制形成雙鏈RNA,該雙鏈RNA隨后被NS3解旋形成單鏈,NS5以(-)RNA為模板繼續(xù)進行復制,產(chǎn)生(+)RNA[4]。因此,研究Zika病毒NS3的ATP水解和核酸解鏈功能有助于闡明病毒復制機制,為抑制Zika病毒感染提供新的藥物設計思路。
1.1.1 菌株:trans5α感受態(tài)細胞(全式金生物技術公司);BL21感受態(tài)細胞(自制)。
1.1.2 試劑:卡那霉素、IPTG、DTT和ATP(Amresco公司);RNaseA(TaKaRa公司);DNaseI(北京瑞達恒輝科技發(fā)展有限公司);His抗體(EMAR公司);ATPase檢測試劑盒(Bioassay Systems公司);合成標記的DNA(cy3-GCGTCTTTACGGTGCTTAAAACAAA ACAAAACAAAACAAAA和AGCACCGTAAAGACG C-BHQ2)(梓熙生物技術有限公司);PCR引物(北京擎科生物科技有限公司);quick-change體系(Phanta公司);質粒小提試劑盒和膠回收試劑盒(天根生化科技有限公司);限制性內切酶、CIP和T4 DNA連接酶(NEB公司);Ni瓊脂糖珠子(Qiagen公司)。
1.2.1 Zika NS3表達載體的構建:50 μL PCR體系:模板100 ng,10 μmol/L引物1.5 μL,DNA聚合酶1 μL,dNTPs 4 μL,5×緩沖液10 μL,ddH2O補齊體積。NS3引物序列:上游為5′-CGGAATTCGGTGGC AGCGAGAACTTGTATTTCCAGGGAGGTGGTAGTGGA GCTCTATGGGATGTGC-3′,下游為5′-CCGCTCGAGT TACAGATCCTCTTCAGAGATGAGTTTCTGCTCTCTTT TCCCAGCGGCA-3′。PCR擴增程序為:95 ℃變性4 min,1個循環(huán);95 ℃變性30 s,56 ℃退火30 s,72 ℃延伸2 min,30個循環(huán);72 ℃繼續(xù)延伸5 min,1個循環(huán)。反應結束后,PCR產(chǎn)物利用膠回收試劑盒回收?;厥盏漠a(chǎn)物與pET-28a載體均用EcoRⅠ和XhoⅠ雙酶切過夜。載體酶切后加入1 μL CIP酶,置于37 ℃消化1 h,然后進行電泳及膠回收;PCR產(chǎn)物酶切后直接回收?;厥蘸蟮妮d體和片段利用T4 DNA連接酶進行連接。連接產(chǎn)物轉化trans5α感受態(tài)中,挑取單克隆菌落接菌,提取質粒后測序。
1.2.2 NS3蛋白誘導表達:將NS3表達載體轉入BL21,挑取單克隆菌落于5 mL LB培養(yǎng)基中培養(yǎng),過夜后轉入1 L LB中,培養(yǎng)至OD600=1,加入終濃度為0.4 mmol/L 的IPTG。然后將菌置于16 ℃,150 r/min條件下繼續(xù)培養(yǎng)24 h。誘導結束后,6 000 r/min,離心10 min收集菌體,-20 ℃保存。
1.2.3 NS3蛋白純化:使用30 mL裂解緩沖液(500 mmol/L NaCl,20 mmol/L Tris-HCl pH 8.0,0.5% Triton X- 100,20 mg/L RNaseA,20 mg/L DNaseI,10%甘油,1 mmol/L DTT,2 mmol/L PMSF,1 mg/L leupeptin,1 mg/L pepstatin,1 mg/L aprotinin)重懸菌體。冰上超聲裂解,總功率200 W,超聲5 s,停7 s,共超聲20 min。超聲結束后,4 ℃18 000 r/min離心45 min。取上清,加入Ni瓊脂糖珠子,4 ℃結合4 h后,離心后棄上清,將珠子轉移至柱子中,用含30 mmol/L咪唑的洗滌緩沖液(500 mmol/L NaCl,20 mmol/L Tris-HCl pH 8.0,0.4 mmol/L DTT,30 mmol/L咪唑)洗2次,再用含60 mmol/L咪唑的洗滌緩沖液洗2次,然后加入洗脫緩沖液(500 mmol/L NaCl,20 mmol/L Tris-HCl pH 8.0,10%甘油,500 mmol/L咪唑,1 mmol/L DTT)洗脫。最后,蛋白用2 L透析緩沖液(100 mmol/L NaCl,20 mmol/L Tris-HCl pH 8.0,10%甘油,1 mmol/L DTT)透析過夜。
1.2.4 ATPase活性檢測:使用無色透明96孔板,參照試劑盒說明書進行實驗。先配制標準磷酸根溶液,用于制作標準曲線。然后將NS3用透析緩沖液稀釋成200 nmol/L,將ATP分別稀釋成2、1、0.4、0.32和0.2 mmol/L。實驗組反應體系為:20 μL反應緩沖液,10 μL酶,10 μL ATP,對照組用透析緩沖液代替酶。反應30 min后,每孔加入200 μL顯色液,30 min后使用酶標儀檢測A620。
1.2.5 核酸解鏈實驗:將合成的ssDNA用退火緩沖液(100 mmol/L KCl,20 mmol/L Tris-HCl pH 7.4,2 mmol/L MgCl2)溶解,配成10 μmol/L母液。配制600 μL退火體系:30 μL cy3標記的核酸,30 μL BHQ2標記的核酸,退火緩沖液補齊。將體系避光放于95 ℃水浴中加熱5 min后,自然冷卻至室溫,即得到dsDNA。每個解鏈反應體系為100 μL,包含50 nmol/L退火產(chǎn)物,20 mmol/L Tris-HCl pH 7.4,10 mmol/L NaCl,0.1 g/L BSA,5 mmol/L MgCl2, 500 nmol/L NS3,混勻后加入全白不透明96孔板中。用酶標儀檢測溶液的熒光值[酶標儀參數(shù):激發(fā)光550 nm,發(fā)射光620 nm,臨界值(cutoff值)610 nm],待熒光值穩(wěn)定后,每孔加入終濃度為5 mmol/L的ATP以及500 nmol/L的競爭劑(GCG TCTTTACGGTG CT),檢測熒光值的動力學變化。
1.2.6 利用quick-change獲得NS3 G198A表達載體:20 μL反應體系如下:模板200 ng,10 μmol/L引物1.5 μL(上游引物序列:5′-CTTGCATCCTGGAGCT GCAAAAACCAGGAGAGTTC-3′;下游引物序列:5′-G AACTCTCCTGGTTTTTGCAGCTCCAGGATGCAAG-3′),phanta DNA聚合酶1 μL,dNTPs 1 μL,2×緩沖液10 μL,加ddH2O補齊體積。PCR程序為:95 ℃變性4 min,1個循環(huán);95 ℃變性30 s,56 ℃退火30 s,72 ℃延伸7 min,18個循環(huán);72 ℃繼續(xù)延伸10 min,1個循環(huán)。反應結束后,加入DpnⅠ酶消化模板。然后將反應產(chǎn)物轉化trans5α。挑取單克隆,搖菌培養(yǎng),提質粒后測序。
Zika NS3原核表達克隆構建成功后,轉化大腸桿菌BL21菌株,利用Western blot檢測Zika NS3蛋白在大腸桿菌的表達(圖1A)。然后用Ni瓊脂糖珠子對蛋白進行親和純化,得到較純的Zika NS3全長蛋白,其分子質量約為80 ku,與理論計算的NS3分子量相符(圖1B)。
A.Western blot;B.Coomassie blue staining圖1 Zika NS3在大腸桿菌中的表達純化Fig 1 Expression and purification of Zika NS3 in E. coli
Zika NS3水解ATP的結果以雙倒數(shù)曲線方程的形式呈現(xiàn)(圖2)。在該反應條件下,Zika NS3具有ATPase活性,其對ATP水解的最大反應速率為2.76 μmol/(L·min),Km值為0.11 mmol/L。
圖2 Zika NS3在體外對ATP的水解活性Fig 2 ATP hydrolysis activity of Zika NS3 in vitro
核酸解鏈系統(tǒng)利用FRET原理(圖3A),將核酸單鏈末端分別帶上Cy3熒光基團和BHQ2淬滅基團,當二者退火形成雙鏈時,Cy3熒光被BHQ2吸收;當雙鏈被解開后,Cy3熒光被檢測到。實驗發(fā)現(xiàn),相比不加蛋白的對照組,加入Zika NS3的實驗組隨著反應時間延長,Cy3熒光值顯著增加,解鏈發(fā)生(圖3B)。
A.system principle;B.dsDNA unwinding圖3 Zika NS3在體外對dsDNA的解鏈活性Fig 3 dsDNA unwinding activity of Zika NS3 in vitro
Zika NS3 G198A突變體在大腸桿菌BL21中可以被較好的誘導表達。通過Ni柱親和純化可以得到較純的G198A蛋白(圖4)。
圖4 Zika NS3 G198A表達純化Fig 4 Expression and purification of Zika NS3 G198A
使用等量的Zika NS3野生型(WT)和G198A進行ATP水解反應,結果發(fā)現(xiàn)G198A對ATP的水解速率顯著低于NS3 WT(圖5)。
使用等量的Zika NS3 WT和G198A進行dsDNA解鏈實驗,結果發(fā)現(xiàn)G198A對dsDNA的解鏈速率明顯低于NS3 WT(圖6)。
圖5 Zika NS3WT與G198A對ATP水解活性比較Fig 5 Comparision of ATP hydrolysis activity between Zika NS3 WT and G198A
圖6 Zika NS3 WT與G198A對dsDNA解鏈活性比較Fig 6 Comparision of dsDNA unwinding activity between Zika NS3 WT and G198A
除了Zika病毒,黃病毒還包括登革熱病毒和乙型腦炎病毒等。經(jīng)過長期研究,這些黃病毒NS3蛋白的結構和功能已被廣泛熟知[5]。NS3蛋白N端蛋白酶(protease)結構域主要發(fā)揮蛋白酶功能,通過切割病毒自身蛋白,幫助病毒成熟,此外還能切割宿主細胞免疫相關因子,幫助病毒存活[6- 7]。C端解旋酶(helicase)結構域通過水解ATP供能,解旋雙鏈核酸[8]。NS3與NS5相互配合,共同實現(xiàn)病毒基因組的復制。但目前,對于Zika病毒NS3的研究主要局限在結構方面,而對其功能的研究少有報道[9]。
在本研究中,首先通過大腸桿菌表達和親和純化,得到了Zika NS3蛋白。然后對Zika NS3本身的ATP水解活性和dsDNA的解旋活性進行了檢測。結果發(fā)現(xiàn),Zika NS3同其他黃病毒NS3一樣[6],在體外均具有ATP水解活性和dsDNA解旋活性,可以水解ATP并解鏈dsDNA。
黃病毒NS3對核酸的解鏈需要ATP水解供能。因此抑制NS3的ATP水解活性可以抑制其核酸解旋活性。已有研究發(fā)現(xiàn),登革熱病毒NS3 G198A突變體的ATP水解活性和核酸解旋活性,相比野生型NS3均明顯減弱[10]。通過序列比對,將Zika NS3蛋白的該位點進行突變,得到Zika NS3 G198A突變體,并對其酶活性進行研究。結果發(fā)現(xiàn),同登革熱病毒NS3一樣,Zika NS3 G198A的ATP水解活性以及dsDNA的解旋活性均受到明顯抑制。經(jīng)分析,NS3 G198A通過抑制ATP水解進而抑制了dsDNA解鏈。之所以G198A對核酸解鏈的抑制效果低于對ATP水解的抑制效果,可能是由于實驗所用dsDNA雙鏈長度較短,只需要較少的ATP供能,便可以達到解鏈效果。
綜上所述,Zika NS3蛋白在體外具有ATP水解活性和dsDNA解旋活性,且NS3 G198A突變體通過影響NS3的ATP水解活性影響其對dsDNA的解鏈活性。該結果有助于闡明Zika病毒復制機制,為抑制Zika病毒感染提供新的思路。
參考文獻:
[1] Li C, Xu D, Ye Q,etal.Zika virus disrupts neural progenitor development and leads to microcephaly in mice[J].Cell Stem Cell, 2016,19:120- 126.
[2] Govero J, Esakky P, Scheaffer SM,etal. Zika virus infection damages the testes in mice[J]. Nature, 2016,540:438- 442.
[3] Apte-Sengupta S, Sirohi D, Kuhn RJ. Coupling of replication and assembly in flaviviruses[J]. Curr Opin Virol, 2014,9:134- 142.
[4] Klema VJ, Padmanabhan R, Choi KH. Flaviviral replication complex: coordination between RNA synthesis and 5′-RNA capping[J]. Viruses,2015,7:4640- 4656.
[5] Luo D, Vasudevan SG, Lescar J. The flavivirus NS2B-NS3 protease-helicase as a target for antiviral drug development[J]. Antiviral Res,2015,118:148- 158.
[6] Li XD, Sun L, Seth RB,etal. Hepatitis C virus protease NS3/4A cleaves mitochondrial antiviral signaling protein off the mitochondria to evade innate immunity[J]. Proc Natl Acad Sci U S A,2005,102:17717- 17722.
[7] Bera AK, Kuhn RJ, Smith JL. Functional characterization of cis and trans activity of the Flavivirus NS2B-NS3 protease[J]. J Biol Chem,2007,282:12883- 12892.
[8] Pang PS, Jankowsky E, Planet PJ,etal. The hepatitis C viral NS3 protein is a processive DNA helicase with cofactor enhanced RNA unwinding[J]. EMBO J,2002,21:1168- 1176.
[9] Jain R, Coloma J, Garcia-Sastre A,etal. Structure of the NS3 helicase from Zika virus[J]. Nat Struct Mol Biol,2016,23:752- 754.
[10] Matusan AE, Pryor MJ, Davidson AD,etal. Mutagenesis of the Dengue virus type 2 NS3 protein within and outside helicase motifs: effects on enzyme activity and virus replication[J]. J Virol,2001,75:9633- 9643.