[摘要] 目的 研究牛蒡子苷元(ATG)對刀豆蛋白A(ConA)誘導(dǎo)的小鼠急性肝炎的保護(hù)作用。方法 將C57BL/6小鼠隨機(jī)分成DMSO組、ConA/DMSO組、ConA/ATG組,每組10只小鼠。DMSO組和ConA/DMSO組小鼠腹腔注射DMSO,ConA/ATG組小鼠腹腔注射等體積ATG(30 mg/kg),5 h后ConA/DMSO組和ConA/ATG組尾靜脈注射ConA(20 mg/kg)。12 h后處死小鼠,取血清和肝臟組織,用生化分析儀測血清丙氨酸氨基轉(zhuǎn)移酶(ALT)和天門冬氨酸氨基轉(zhuǎn)移酶(AST)水平,蘇木精-伊紅(HE)染色檢測肝組織病理損傷,TUNEL染色檢測肝細(xì)胞凋亡,ELISA方法檢測血清腫瘤壞死因子α(TNF-α)和干擾素-γ(IFN-γ)水平,q-PCR方法檢測肝組織中TNF-α和IFN-γ mRNA表達(dá)水平,流式細(xì)胞術(shù)檢測骨髓來源抑制細(xì)胞(MDSCs),生化法檢測肝臟勻漿丙二醛(MDA)和髓過氧化物酶(MPO)的表達(dá)水平。結(jié)果 與DMSO組相比,ConA/DMSO組血清ALT和AST水平明顯升高(F=125.80、94.74,P<0.05);肝臟組織損傷明顯加重;肝細(xì)胞凋亡增加;血清和肝組織中TNF-α和IFN-γ水平升高(F=17.52、68.81,P<0.05);肝臟MDSCs募集活化降低;同時(shí)MDA和MPO活性升高(F=13.38、14.78,P<0.05)。與ConA/DMSO組比較,ConA/ATG組血清ALT和AST水平明顯降低(F=125.80、94.74,P<0.05);肝臟組織損傷明顯減輕;肝細(xì)胞凋亡減少;血清中TNF-α和IFN-γ的水平降低(F=17.52、68.81,P<0.05);肝組織中TNF-α和IFN-γ mRNA的表達(dá)水平降低(F=31.55、14.64,P<0.05),MDSCs募集活化明顯增強(qiáng);MDA和MPO活性降低(F=13.38、14.78,P<0.05)。結(jié)論 ATG對ConA誘導(dǎo)的小鼠急性肝炎具有明顯的保護(hù)作用。
[關(guān)鍵詞] 牛蒡子苷元;肝炎;刀豆蛋白A;腫瘤壞死因子α;干擾素γ
[中圖分類號] R575.1
[文獻(xiàn)標(biāo)志碼] A
[文章編號] 2096-5532(2018)03-0268-05
研究結(jié)果表明,自身免疫性肝炎和病毒性肝炎是人類主要的肝臟疾病,具有較高的發(fā)病率和死亡率,是嚴(yán)重危害人類健康的疾病[1-3]。急性肝炎的病因通常包括病毒感染、過度飲酒、自身免疫缺陷和藥物,免疫因素引起的肝臟損傷在肝炎發(fā)病過程中具有重要的作用。1992年TIEGS等[4]研究結(jié)果顯示,小鼠靜脈給予刀豆蛋白A(ConA)后,血清轉(zhuǎn)氨酶升高,肝臟出現(xiàn)大面積損傷并伴有炎性細(xì)胞浸潤等現(xiàn)象,用免疫抑制劑處理后肝臟損傷減輕。ConA誘導(dǎo)的小鼠急性肝炎發(fā)病機(jī)制及其病理過程與人類肝炎極其相似,因此該模型已被廣泛應(yīng)用于肝病研究中,對藥物的篩選及研發(fā)均具有重要的作用[5]。牛蒡子苷元(ATG)是一種木脂素成分,主要存在于菊科屬植物如牛蒡子、瓜蔞牛蒡、水母雪蓮和日本榧樹等中[6]。ATG在牛蒡子中含量較高,是牛蒡子的活性成分,具有廣泛的生物活性,如抗腫瘤、抗炎、抗病毒、抗結(jié)腸炎、免疫抑制和神經(jīng)保護(hù)等作用[7-10]。目前ATG對急性肝炎的保護(hù)作用機(jī)制尚不十分明確。本文研究以ConA誘導(dǎo)的C57BL/6小鼠急性肝炎為模型,研究ATG對急性肝炎的保護(hù)作用并初步探討其機(jī)制?,F(xiàn)將結(jié)果報(bào)告如下。
1 材料和方法
1.1 藥物和試劑
ATG(天津百倍生物公司);ConA(Sigma公司,美國);血清腫瘤壞死因子α(TNF-α)、干擾素-γ(IFN-γ)ELISA試劑盒(BioLegend公司,美國);TRIzol及反轉(zhuǎn)錄試劑盒(Thermo Fisher公司,美國);SYBR Green MasterMix(南京諾唯贊生物科技有限公司);丙二醛(MDA)和髓過氧化物酶(MPO)試劑盒(南京建成生物研究所)。
1.2 實(shí)驗(yàn)方法
1.2.1 動(dòng)物及模型建立 雄性、6~8周C57BL/6小鼠30只,購自濟(jì)南朋悅實(shí)驗(yàn)動(dòng)物有限公司,飼養(yǎng)于SPF級動(dòng)物房中。隨機(jī)分成3組:DMSO組(A組)、ConA/DMSO組(B組)、ConA/ATG組(C組),各10只小鼠。ConA/ATG組和ConA/DMSO組小鼠分別給予腹腔注射ATG(30 mg/kg)和等量的DMSO,5 h后兩組小鼠均經(jīng)尾靜脈注射ConA(20 mg/kg),DMSO組小鼠腹腔注射DMSO。12 h后處死各組小鼠,分別收集眼球靜脈血和肝臟組織。
1.2.2 血清丙氨酸氨基轉(zhuǎn)移酶(ALT)和天門冬氨酸氨基轉(zhuǎn)移酶(AST)檢測 小鼠血清送濟(jì)寧市第一人民醫(yī)院用自動(dòng)生化分析儀檢測ALT和AST。
1.2.3 肝組織染色和TUNEL染色觀察 取同一部位肝臟固定于40 g/L多聚甲醛中,石蠟包埋、切片,厚度為5 μm。經(jīng)脫蠟和水化,行蘇木精-伊紅(HE)和TUNEL染色,觀察肝臟組織損傷程度和肝細(xì)胞凋亡情況。
1.2.4 血清TNF-α以及IFN-γ水平的測定 應(yīng)用ELISA方法,根據(jù)試劑盒說明書進(jìn)行操作。
1.2.5 肝組織TNF-α和IFN-γ mRNA表達(dá)檢測
①肝組織RNA提取:取小鼠適量肝組織,以TRIzol法提取RNA,最后根據(jù)沉淀的量加入適量DEPC水溶解。上機(jī)檢測濃度并反轉(zhuǎn)錄,置于-80 ℃保存待用。②q-PCR檢測:TNF-α和IFN-γ引物均購自上海生工生物工程公司,以GAPDH為內(nèi)參對照。引物序列見表1。按照試劑盒說明書將RNA反轉(zhuǎn)錄成cDNA,采用SYBR Green熒光標(biāo)記進(jìn)行q-PCR檢測,反應(yīng)條件根據(jù)說明書設(shè)定,結(jié)果以2-△△Ct法進(jìn)行計(jì)算。
1.2.6 流式細(xì)胞術(shù)檢測肝臟骨髓源性抑制性細(xì)胞(MDSCs) 提取肝臟單核細(xì)胞,制備單細(xì)胞懸液,加入FITC標(biāo)記CD11b抗體和APC標(biāo)記Gr-1抗體,室溫孵育30 min,PBS清洗,離心(1 500 r/min,5 min),去上清,加入300 μL的PBS重懸細(xì)胞,上機(jī)檢測。
1.2.7 肝臟MDA和MPO測定 取小鼠肝臟組織于生理鹽水中清洗,按照試劑盒說明書制備50 g/L和10 g/L勻漿,檢測MDA和MPO活性。
1.3 統(tǒng)計(jì)學(xué)方法
應(yīng)用GraphPad Prism5軟件進(jìn)行統(tǒng)計(jì)學(xué)分析,計(jì)量資料結(jié)果以[AKx-D]±s形式表示,多組數(shù)據(jù)間比較采用F檢驗(yàn)。P<0.05表示差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
2 結(jié)果
2.1 各組肝功能比較
與DMSO組相比,ConA/DMSO組小鼠血清中ALT和AST明顯升高;與ConA/DMSO組相比,ConA/ATG組血清ALT和AST明顯升高,差異均有顯著性(F=125.80、94.74,P<0.05)。見表1。HE染色顯示,與DMSO組相比,ConA/DMSO組肝組織中出現(xiàn)大片損傷;與ConA/DMSO組相比,ConA/ATG組肝損傷面積明顯減少。
2.2 各組肝細(xì)胞凋亡情況比較
TUNEL染色結(jié)果顯示,與DMSO組小鼠相比較,ConA/DMSO組小鼠出現(xiàn)大量肝細(xì)胞凋亡;與ConA/DMSO組比較,ConA/ATG組肝臟細(xì)胞凋亡數(shù)目明顯減少。見圖1。
2.3 各組血清TNF-α和 IFN-γ水平比較
ELISA檢測結(jié)果顯示,與DMSO組小鼠相比較,ConA/DMSO組血清中TNF-α和IFN-γ濃度明顯升高;與ConA/DMSO組相比較,ConA/ATG組血清中TNF-α和IFN-γ濃度明顯降低,差異有顯著性(F=17.52、68.81,P<0.05)。見表2。
2.4 各組肝臟組織TNF-α和 IFN-γ mRNA表達(dá)比較
q-PCR檢測結(jié)果顯示,與DMSO組小鼠相比較,ConA/DMSO組肝臟組織TNF-α和IFN-γ的mRNA表達(dá)水平較明顯升高;與ConA/DMSO組相比,ConA/ATG組小鼠肝臟組織TNF-α和IFN-γ mRNA表達(dá)明顯降低,差異有顯著意義(F=31.55、14.64,P<0.05)。見表2。
2.5 各組肝臟MDSCs比較
流式細(xì)胞術(shù)檢測結(jié)果顯示,與DMSO組比較,ConA/DMSO組小鼠肝臟MDSCs募集活化減少;而與ConA/DMSO組相比較,ConA/ATG組小鼠肝臟中的MDSCs的比例明顯增加(圖2)。
2.6 各組肝組織中MDA和MPO比較
與DMSO組相比較,ConA/DMSO組MDA和MPO水平均上升;與ConA/DMSO組比較,ConA/ATG組MDA和MPO水平下降,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(F=13.38、14.78,P<0.05)。見表3。
3 討論
近年來中草藥治療肝臟疾病越來越廣泛地引起人們的關(guān)注[11],ATG就是其中具有治療潛力的一種。ATG是牛蒡子的主要活性成分,具有抗炎、抗病毒、抗氧化和抗腫瘤等多種藥理活性[7-10]。有研究表明,牛蒡子對四氯化碳和乙醇誘導(dǎo)的肝炎具有保護(hù)作用[12],但是ATG對ConA誘導(dǎo)的急性肝炎的保護(hù)作用及機(jī)制還不明確。
ConA是T細(xì)胞的特異性有絲分裂原,在肝臟內(nèi)能迅速募集活化T細(xì)胞、NK細(xì)胞和NKT細(xì)胞,并分泌大量的炎性因子如TNF-α和IFN-γ等,在ConA誘導(dǎo)肝損傷的發(fā)病過程中有重要作用[5,13-15]。TNF-α是介導(dǎo)肝炎發(fā)生的終末遞質(zhì),與其受體結(jié)合進(jìn)而誘發(fā)凋亡級聯(lián)反應(yīng),也可激活中性粒細(xì)胞并促進(jìn)其發(fā)生趨化作用進(jìn)而聚集肝臟中,通過釋放蛋白酶和氧自由基促進(jìn)肝細(xì)胞發(fā)生凋亡或壞死[16]。有研究發(fā)現(xiàn),細(xì)胞凋亡在ConA誘導(dǎo)的急性肝炎發(fā)病過程中發(fā)揮重要作用,用抑制劑阻斷凋亡通路時(shí),ConA誘導(dǎo)的急性肝炎明顯減輕[17]。另外,IFN-γ通過協(xié)同TNF-α促進(jìn)各種趨化因子和黏附分子的釋放發(fā)揮其病理作用[18-19]。研究顯示,用抗TNF-α和抗IFN-γ抗體預(yù)處理的小鼠或TNF-α和IFN-γ受體缺陷的小鼠均對ConA誘導(dǎo)的肝損傷具有抵抗作用[18-19]。本文研究結(jié)果顯示,ConA/ATG組小鼠血清和肝臟中TNF-α和IFN-γ水平均較ConA/DMSO組顯著下降,而且肝細(xì)胞凋亡明顯減輕,提示ATG可抑制炎性因子的表達(dá)與釋放,同時(shí)抑制細(xì)胞凋亡對肝臟產(chǎn)生保護(hù)作用。
MDSCs是一種免疫異質(zhì)細(xì)胞,包括未成熟樹突狀細(xì)胞(DCs)、巨噬細(xì)胞和其他髓系細(xì)胞。人類MDSCs在早期分化階段通常表達(dá)CD11b、CD33,低表達(dá)白細(xì)胞抗原DR,小鼠MDSCs通常表達(dá)CD11b和Gr-1[20-21]。肝臟血流豐富,含有大量的先天和適應(yīng)性免疫細(xì)胞亞型。有研究發(fā)現(xiàn),MDSCs在誘導(dǎo)肝臟免疫抑制方面發(fā)揮重要的作用,小鼠皮下接種腫瘤后大量的MDSCs流入肝臟[22]。還有研究結(jié)果顯示,MDSCs對ConA誘導(dǎo)的急性肝炎具有免疫抑制作用[23]。本文的結(jié)果顯示,與ConA/DMSO組比較,ATG預(yù)處理組肝臟中MDSCs細(xì)胞明顯升高,提示ATG通過募集活化MDSCs對ConA誘導(dǎo)的急性肝炎具有保護(hù)作用。
氧自由基是生物氧化還原反應(yīng)過程中的重要代謝產(chǎn)物,一般情況下,其產(chǎn)生和消除需要達(dá)到一定的平衡狀態(tài),機(jī)體才能維持正常水平。氧化應(yīng)激的特點(diǎn)是脂質(zhì)過氧化增加或改變非酶和酶的抗氧化系統(tǒng)。MDA是膜磷脂發(fā)生過氧化反應(yīng)的重要產(chǎn)物,可破壞細(xì)胞膜的完整性,檢測其含量可以間接反映細(xì)胞膜系統(tǒng)損傷嚴(yán)重程度。MPO是一種內(nèi)源性溶酶體酶,主要存在于中性粒細(xì)胞中,可以清除H2O2并促進(jìn)具有毒性作用的次氯酸形成[25]。因此,檢測脂質(zhì)過氧化產(chǎn)物MDA和MPO含量可以了解肝臟損傷情況。本文實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明,ConA/ATG組小鼠MDA和MPO活性較ConA/DMSO組均降低,差異有顯著性,說明ATG可通過降低MDA和MPO的活性對肝臟發(fā)揮保護(hù)。
綜上所述,ATG可通過抑制炎性細(xì)胞因子的表達(dá)及細(xì)胞凋亡、促進(jìn)MDSCs在肝臟募集、改善細(xì)胞氧化應(yīng)激反應(yīng),從而對ConA誘導(dǎo)的小鼠急性肝炎發(fā)揮保護(hù)作用。但ATG保護(hù)作用的具體分子機(jī)制還有待于進(jìn)一步研究。
[參考文獻(xiàn)]
[1]LONGHI M S, MIELI-VERGANI G, VERGANI D. Autoimmune hepatitis[J]. Current Pediatric Reviews, 2014,10(4):268-274.
[2]REHERMANN B, NASCIMBENI M. Immunology of hepatitis B virus and hepatitis C virus infection[J]. Nature Reviews Immunology, 2005,5(3):215-229.
[3]THIMME R, WIELAND S, STEIGER C, et al. CD8(+) T cells mediate viral clearance and disease pathogenesis during acute hepatitis B virus infection[J]. Journal of Virology, 2003,77(1):68-76.
[4]TIEGS G, HENTSCHEL J, WENDEL A. A T cell-dependent experimental liver injury in mice inducible by concanavalin A[J]. The Journal of Clinical Investigation, 1992,90(1):196-203.
[5]BONDER C S, AJUEBOR M N, ZBYTNUIK L D, et al. Essential role for neutrophil recruitment to the liver in concanavalin A-induced hepatitis[J]. Journal of Immunology (Bal-timore, Md.:1950), 2004,172(1):45-53.
[6]BASTOS J K, CARVALHO J C, DE SOUZA G H, et al. Anti-inflammatory activity of cubebin, a lignan from the leaves of Zanthoxyllum naranjillo Griseb[J]. Journal of Ethnopharmacology, 2001,75(2/3):279-282.
[7]CHO M K, JANG Y P, KIM Y C, et al. Arctigenin, a phenylpropanoid dibenzylbutyrolactone lignan, inhibits MAP kinases and AP-1 activation via potent MKK inhibition: the role in TNF-alpha inhibition[J]. International Immunopharmacology, 2004,4(10/11):1419-1429.
[8]AWALE S, LU J, KALAUNI S K, et al. Identification of arctigenin as an antitumor agent having the ability to eliminate the tolerance of cancer cells to nutrient starvation[J]. Cancer Research, 2006,66(3):1751-1757.
[9]ZHU Z Y, YAN J M, JIANG W, et al. Arctigenin effectively ameliorates memory impairment in Alzheimer’s disease model mice targeting both β-amyloid production and clearance[J]. The Journal of Neuroscience, 2013,33(32):13138-13149.
[10]WU X, DOU Y N, YANG Y, et al. Arctigenin exerts anti-colitis efficacy through inhibiting the differentiation of Th1 and Th17 cells via an mTORC1-dependent pathway[J]. Biochemical Pharmacology, 2015,96(4):323-336.
[11]TAMARU M, NISHIOJI K, KOBAYASHI Y, et al. Liver-infiltrating T lymphocytes are attracted selectively by IFN-inducible protein-10[J]. Cytokine, 2000,12(4):299-308.
[12]LIN S C, LIN C H, LIN C C, et al. Hepatoprotective effects of Arctium lappa Linne on liver injuries induced by chronic ethanol consumption and potentiated by Carbon tetrachloride[J]. Journal of Biomedical Science, 2002,9(5):401-409.
[13]ISHIZAKI K, IWAKI T, KINOSHITA S, et al. Ursodeoxycholic acid protects concanavalin A-induced mouse liver injury through inhibition of intrahepatic tumor necrosis factor-alpha and macrophage inflammatory protein-2 production[J]. European Journal of Pharmacology, 2008,578(1):57-64.
[14]WOLF A M, WOLF D, RUMPOLD H, et al. The kinase inhibitor imatinib mesylate inhibits TNF-[alpha] production in vitro and prevents TNF-dependent acute hepatic inflammation[J]. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America, 2005,102(38):13622-13627.
[15]SCHMANN J, WOLF D, PAHL A, et al. Importance of kupffer cells for t-cell-dependent liver injury in mice[J]. The American Journal of Pathology, 2000,157(5):1671-1683.
[16]GANTNER F, LEIST M, LOHSE A W, et al. Concanavalin A-induced T-cell-mediated hepatic injury in mice: the role of tumor necrosis factor[J]. Hepatology (Baltimore, Md.), 1995,21(1):190-198.
[17]FILLIOL A, PIQUET-PELLORCE C, LE SEYEC J, et al. RIPK1 protects from TNF-α- mediated liver damage during hepatitis[J]. Cell Death Disease, 2016,7(11): e2462.
[18]KUSTERS S, GANTNER F, KUNSTLE G, et al. Interferon gamma plays a critical role in T cell-dependent liver injury in mice initiated by concanavalin A[J]. Gastroenterology, 1996,111(2):462-471.
[19]MIZUHARA H, UNO M, SEKI N, et al. Critical involvement of interferon gamma in the pathogenesis of T-cell activation-associated hepatitis and regulatory mechanisms of interleukin-6 for the manifestations of hepatitis[J]. Hepatology (Baltimore, Md.), 1996,23(6):1608-1615.
[20]TALMADGE J E, GABRILOVICH D I. History of myeloid-derived suppressor cells[J]. Nature Reviews Cancer, 2013,13(10):739-752.
[21]GABRILOVICH D I, BRONTE V, CHEN S H, et al. The terminology issue for myeloid- derived suppressor cells[J]. Cancer Research, 2007,67(1):425-428.
[22]ILKOVITCH D, LOPEZ D M. The liver is a site for tumor-induced myeloid-derived suppressor cell accumulation and immunosuppression[J]. Cancer Research, 2009,69(13):5514-5521.
[23]ZHANG H R, LI Z, WANG L, et al. Critical role of myeloid-derived suppressor cells in tumor-induced liver immune suppression through inhibition of NKT cell function[J]. Frontiers in Immunology, 2017,8(8):129-135.
[24]LIU C M, SUN Y Z, SUN J M, et al. Protective role of quercetin against lead- induced inflammatory response in rat kidney through the ROS-mediated MAPKs and NF-κB pathway[J]. Biochimica et Biophysica Acta, 2012,1820(10):1693-1703.
[25]SAWAYAMA Y, MIYAZAKI Y, ANDO K, et al. Expression of myeloperoxidase enhances the chemosensitivity of leukemia cells through the generation of reactive oxygen species and the nitration of protein[J]. Leukemia, 2008,22(5):956-964.