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    miR—205—5p對鼻咽癌細胞系增殖、遷移和侵襲的影響及其機制

    2018-04-29 00:00:00苗玉賀薈靜李斐斐王云
    青島大學學報(醫(yī)學版) 2018年3期

    [摘要] 目的 觀察微小RNA miR-205-5p對鼻咽癌(NPC)細胞系HONE1增殖、遷移和侵襲的影響,探討其作用機制。方法 將人工合成的miR-205-5p模擬物、抑制物及相應(yīng)陰性對照轉(zhuǎn)染至HONE1細胞中,用CCK-8法檢測細胞增殖,細胞劃痕實驗及Transwell小室檢測細胞遷移和侵襲,Western blot檢測miR-205-5p潛在靶基因PTEN、Smad4以及PTEN下游基因蛋白激酶B(AKT)的表達水平。結(jié)果 與對照相比,miR-205-5p模擬物轉(zhuǎn)染細胞增殖、遷移和侵襲能力增強,PTEN和Smad4表達下降,磷酸化AKT(p-AKT)表達升高;而miR-205-5p抑制物轉(zhuǎn)染細胞增殖、遷移和侵襲能力減弱,PTEN和Smad4表達升高,p-AKT表達下降,差異均有統(tǒng)計學意義(t=2.970~8.011,P<0.05)。結(jié)論 miR-205-5p可促進NPC細胞增殖、遷移和侵襲,其機制可能與靶向調(diào)控抑癌基因PTEN和Smad4表達有關(guān)。

    [關(guān)鍵詞] 微RNAs;鼻咽腫瘤;細胞增殖;細胞運動;腫瘤侵潤

    [中圖分類號] R739.63

    [文獻標志碼] A

    [文章編號] 2096-5532(2018)03-0257-06

    鼻咽癌(NPC)是我國較為常見的頭頸部惡性腫瘤之一,其早期診斷困難且缺乏特異的腫瘤標志物,目前NPC的首選治療方法是放療,但對放療不敏感的病人極易復(fù)發(fā)[1-2],因而尋找特異的腫瘤標志物對于NPC的診治至關(guān)重要。微小RNA(miRNA)是細胞內(nèi)源性非編碼單鏈RNA,可通過與靶基因3′UTR互補結(jié)合,使靶mRNA降解或參與轉(zhuǎn)錄后調(diào)控抑制而發(fā)揮生物學作用[3]。近年來,miRNA在腫瘤發(fā)生發(fā)展中的作用以及作為腫瘤防治標志物的研究備受關(guān)注[4]。miR-205在多種腫瘤中表達異常,與腫瘤發(fā)生發(fā)展密切相關(guān),但miR-205在不同腫瘤中的表達和作用不同:miR-205可作為抑癌基因在乳癌[4]、前列腺癌[5]、腎癌[6]和黑色素瘤[7]等腫瘤中發(fā)揮作用,但也可作為癌基因參與肺癌[9]和子宮內(nèi)膜癌[10]的發(fā)生發(fā)展。有研究顯示,NPC組織中miR-205的表達高于鼻咽對照組織[11-13],推測其在NPC發(fā)生發(fā)展過程中可能起癌基因的作用,但這還需要進一步的體內(nèi)外實驗驗證,而且miR-205在NPC中的作用機制尚不清楚。因此,本研究通過體外實驗觀察miR-205-5p對NPC細胞系HONE1增殖、遷移和侵襲的影響,并探討其機制,從而為明確miR-205-5p參與NPC的作用機制及尋找NPC診斷、治療和預(yù)后判斷潛在標志物提供實驗依據(jù)。

    1 材料與方法

    1.1 細胞系與試劑

    NPC細胞系HONE1由廣東醫(yī)學院病理科朱偉教授贈予;miR-205-5p的模擬物、抑制物以及相應(yīng)陰性對照均由廣州銳博生物科技有限公司合成;DMEM培養(yǎng)基和胎牛血清(美國Gibco公司);LipofectamineTM2000、Trizol(美國Invitrogen公司);Mir-X miRNA First-Strand Synthesis以及Mir-X miRNA qRT-PCR SYBR試劑盒(購自大連Takara公司);CCK-8試劑盒(武漢博士德生物科技有限公司);基質(zhì)膠(美國BD公司);Transwell chamber(美國康寧公司);PTEN、蛋白激酶B(AKT)、磷酸化AKT(p-AKT)和Smad4單克隆抗體(英國Abcam公司);β-actin一抗、二抗(北京博奧生物有限公司);Western顯色液(北京碧云天公司)。

    1.2 miRNA轉(zhuǎn)染及表達檢測

    根據(jù)miRBase上公布的人miR-205-5p核苷酸序列人工合成其模擬物、抑制物及相應(yīng)陰性對照序列。將HONE1細胞接種于6孔板,當細胞融合度達到80%以上時,以LipofectamineTM2000分別轉(zhuǎn)染miR-205-5p 模擬物(miR-205 mimics)及其對照(mimics NC),miR-205-5p抑制物(miR-205 inibitor)及其對照(inhibitor NC)。轉(zhuǎn)染24 h以后采用Trizol法提取各組細胞RNA,用Takara反轉(zhuǎn)錄試劑盒將總RNA反轉(zhuǎn)錄成cDNA,采用qRT-PCR檢測各組miR-205-5p表達水平,以U6作為內(nèi)參。以2-△△Ct表示實驗組與對照組的相對表達量,取3次實驗均值。

    1.3 CCK-8法檢測細胞增殖

    取miR-205 mimics、miR-205 inhibitor以及相應(yīng)對照轉(zhuǎn)染24 h的細胞,按每孔1×107/L的密度將細胞接種于96孔板中,每孔加入100 μL培養(yǎng)液,并置于37 ℃、含體積分數(shù)0.05 CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng),并在培養(yǎng)后1~7 d,加入CCK-8溶液10 μL繼續(xù)孵育1 h,每組設(shè)5個復(fù)孔,用酶聯(lián)免疫檢測儀于波長450 nm處檢測吸光度。取3次實驗均值繪制細胞增殖曲線。

    1.4 細胞劃痕實驗

    于6孔板背部均勻畫水平線;收集各組對數(shù)期細胞,將細胞懸液密度調(diào)至7×107/L進行鋪板;待細胞匯合至95%以上時,用無菌槍頭垂直于水平線畫線,以PBS清洗3次后加入2 mL無血清DMEM培養(yǎng)液。在0、48 h時,于倒置顯微鏡下觀察拍照。使用Image J軟件測定劃痕的寬度并計算閉合率:48 h的閉合率=(0 h劃痕寬度-48 h劃痕寬度)/0 h劃痕寬度×100%。取3次實驗平均值。

    1.5 Transwell細胞遷移和侵襲實驗

    Transwell細胞遷移實驗:胰蛋白酶消化轉(zhuǎn)染24 h后的各組細胞,用不含血清的培養(yǎng)液洗2次并重懸細胞,使細胞密度達到3×108/L;取200 μL細胞懸液置于37 ℃預(yù)溫的Transwell小室,吸取含血清的完全培養(yǎng)液650 μL置于下室,于37 ℃、含體積分數(shù)0.05 CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng);孵育24 h后,以PBS洗小室,使用棉簽擦除微孔膜上側(cè)細胞,甲醇固定25 min,10 g/L結(jié)晶紫染色20 min,蒸餾水沖洗,在顯微鏡下觀察,取9個視野拍照并計數(shù)。Transwell細胞侵襲實驗:將基質(zhì)膠用無血清培養(yǎng)液按1∶6稀釋,將稀釋后的基質(zhì)膠80 μL鋪于上室,孵育6 h,其余步驟與Transwell細胞遷移實驗相同,48 h后觀察并統(tǒng)計細胞數(shù)目。取3次實驗平均值。

    1.6 Western blot檢測PTEN、AKT和Smad4蛋白表達

    收集轉(zhuǎn)染72 h后的細胞,提取蛋白,采用BCA法測定蛋白濃度,取50 μg蛋白在100 g/L SDS-PAGE凝膠上電泳,總蛋白分離后,轉(zhuǎn)至PVDF膜上。于搖床上用50 g/L脫脂奶粉室溫封閉1~2 h(磷酸化蛋白使用牛血清清蛋白封閉,其余步驟相同),加入一抗(1∶1 000稀釋)4 ℃孵育過夜,采用TBST洗膜3次,加入辣根過氧化物酶標記的二抗(1∶2 000稀釋),室溫反應(yīng)2 h,以TBST洗膜3次。用發(fā)光試劑ECL(A液和B液)進行顯色,暗室曝光并保存圖片。應(yīng)用Image J軟件進行條帶灰度分析,目的蛋白相對表達量以目的條帶灰度值/β-actin條帶灰度值表示。

    1.7 統(tǒng)計學分析

    應(yīng)用SSPS 17.0統(tǒng)計軟件進行分析,計量資料數(shù)據(jù)以[AKx-D]±s表示,組間比較采用t檢驗或t′檢驗,以P<0.05為差異具有統(tǒng)計學意義。

    2 結(jié)果

    2.1 轉(zhuǎn)染細胞中miR-205-5p的表達水平

    miR-205 mimics組細胞中miR-205-5p的表達量比mimics NC組增加約90倍,過表達顯著,差異具有統(tǒng)計學意義(t′=24.683,P<0.01);miR-205 inhibitor組細胞中miR-205-5p表達量比inhibitor NC 組下降顯著,差異具有統(tǒng)計學意義(t′=8.122,P<0.05)。見圖1A。

    2.2 miR-205-5p對細胞增殖的影響

    培養(yǎng)后2~6 d,miR-205 mimics組吸光度值高于mimics NC組,差異具有統(tǒng)計學意義(t=2.970~6.239,P<0.05);培養(yǎng)后3~7 d,miR-205 inhibitor組吸光度值均低于inhibitor NC組,差異具有統(tǒng)計學意義(t=4.828~8.011,P<0.01)。見圖1B。

    2.3 miR-205-5p對HONE1細胞遷移的影響

    劃痕48 h時,與相應(yīng)對照組相比較,miR-205 mimics組細胞劃痕閉合率增加,差異有統(tǒng)計學意義(t=3.950,P<0.05);miR-205 inhibitor組細胞劃痕閉合率降低,差異有統(tǒng)計學意義(t=3.482,P<0.05)。見圖2A、B。Transwell小室測定各轉(zhuǎn)染組細胞遷移情況,miR-205 mimics組遷移的細胞數(shù)高于mimics NC組,差異具有統(tǒng)計學意義(t=4.517,P<0.05);miR-205 inhibitor組遷移的細胞數(shù)低于inhibitor NC組,差異亦具有統(tǒng)計學意義(t=4.047,P<0.05)。見圖2C、D。

    2.4 miR-205-5p對HONE1細胞侵襲的影響

    Transwell小室的細胞侵襲實驗顯示,miR-205 mimics組侵襲細胞數(shù)高于對照組,差異具有統(tǒng)計學意義(t=4.818,P<0.01);miR-205 inhibitor組侵襲細胞數(shù)低于對照組,差異亦具有統(tǒng)計學意義(t=4.441,P<0.05)。見圖2E、F。

    2.5 miR-205-5p預(yù)測靶基因的蛋白表達水平

    與相應(yīng)對照組相比,miR-205 mimics組細胞中PTEN蛋白表達下降,miR-205 inhibitor組細胞中PTEN蛋白表達升高,差異均具有統(tǒng)計學意義(t=4.205、4.423,P<0.05)。與相應(yīng)對照組相比,miR-205 mimics組和miR-205 inhibitor組細胞中的AKT總蛋白表達水平均無明顯改變,但p-AKT在miR-205 mimics組細胞中的表達有顯著升高(t=4.252,P<0.05),在miR-205 inhibitor組細胞中的表達顯著下降(t=4.269,P<0.05)。與相應(yīng)對照組相比較,Smad4在miR-205 mimics組細胞中的表達顯著下降(t=3.773,P<0.05),而在miR-205 inhibitor組細胞中的表達顯著升高(t=3.133,P<0.05)。見圖3。

    3 討論

    有miRNA表達譜研究顯示,NPC組織中miR-205-5p的表達水平高于鼻咽正常組織或者非癌組織[9-11]。本研究體外細胞學實驗表明,miR-205-5p過表達可提高NPC細胞系HONE1增殖、遷移和侵襲的能力,而miR-205-5p表達下調(diào)可減弱細胞增殖、遷移和侵襲的能力。以往只有極少研究初步探討了miR-205-5p對NPC細胞系的作用,結(jié)果顯示miR-205-5p過表達可促進CNE2、6-10B和9-4E細胞增殖、遷移和侵襲,并抑制細胞凋亡[14-15];可增強CNE1細胞增殖和黏附[16]。上述體內(nèi)外研究均表明,miR-205-5p在NPC發(fā)病中可能起癌基因的作用,該作用與miR-205在子宮內(nèi)膜癌和肺癌中的作用類似[9-10,17-18],但與在乳癌、腎癌、前列腺癌、黑色素瘤和頭頸部腫瘤(發(fā)生于口腔、口咽部、下咽部和喉部)等中的抑癌作用則不同,在這些腫瘤組織中miR-205表達下調(diào)[5-8,19]。由此可見,miR-205在腫瘤中所起的作用具有組織細胞特異性。miRNA在不同組織細胞中發(fā)揮不同作用,可能與其所處的細胞微環(huán)境不同有關(guān),不同組織細胞類型的腫瘤都具有特異的miRNA表達譜[20]。

    miRNA主要通過靶向抑制靶基因表達而發(fā)揮作用,本研究通過軟件預(yù)測miR-205-5p靶基因,選擇潛在靶基因PTEN和Smad4以及PTEN下游基因AKT在細胞學水平進行驗證。PTEN是目前發(fā)現(xiàn)的唯一具有磷酸酶活性的腫瘤抑制基因,主要通過調(diào)節(jié)磷脂酰肌3-激酶(PI3K)/AKT信號通路發(fā)揮作用[21]。在本研究中,NPC細胞系HONE1中miR-205-5p過表達導(dǎo)致PTEN蛋白表達水平下降和p-AKT蛋白表達增加,而miR-205-5p表達下調(diào)導(dǎo)致PTEN蛋白表達水平升高和p-AKT表達減少,推測miR-205-5p可能通過靶向作用于PTEN使其表達下調(diào),從而激活A(yù)KT,使HONE1細胞的增殖、遷移和侵襲能力增強。miR-205-5p對PTEN或PTEN/AKT的靶向調(diào)控作用在非小細胞肺癌細胞系[22]、子宮內(nèi)膜癌細胞系[10]和卵巢癌細胞系中亦得到驗證。

    Smad4在1996年首次被確定為抑癌基因,其家族成員為轉(zhuǎn)化生長因子-β(TGF-β)信號傳導(dǎo)過程中的轉(zhuǎn)錄因子,通過TGF-β調(diào)控與細胞生長和分化相關(guān)基因的轉(zhuǎn)錄,參與調(diào)節(jié)細胞周期、增殖、凋亡和分化。本研究miR-205-5p過表達HONE1細胞中Smad4的表達水平下降,而miR-205-5p表達下調(diào)HONE1細胞中Smad4蛋白表達水平則升高,推測miR-205-5p可通過直接作用于Smad4在HONE1細胞中發(fā)揮作用,是否通過作用于TGF-β信號通路尚需驗證。目前已有研究在肺癌[9]和卵巢癌[23]中驗證了miR-205-5p與Smad4之間的靶向關(guān)系,本研究首次在NPC細胞中驗證該靶向關(guān)系。

    有少數(shù)研究對miR-205在NPC中的作用機制進行了探討,MAO等[12]的研究結(jié)果表明,miR-205-5p對CNE2細胞的促進增殖、遷移和侵襲作用與靶向調(diào)控PTEN/AKT信號通路相關(guān);而NIE等[15]和LIU等[12]研究表明,miR-205-5p可分別靶向作用于抑癌基因p53誘導(dǎo)核蛋白1和多聚體免疫球蛋白受體參與NPC的發(fā)生發(fā)展。軟件預(yù)測及實驗研究顯示,miRNA參與腫瘤發(fā)生發(fā)展的機制復(fù)雜多變,一種miRNA可以調(diào)控多個靶基因,而一個靶基因也可被多個miRNA調(diào)節(jié)。因此,miR-205-5p參與NPC發(fā)生發(fā)展的機制還需要更深入研究,從而為NPC的診斷和治療提供新靶點。

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