肖偉強(qiáng),潘軍,姚新偉,常彥敏,孫明月,許青霞,周麗莉
(鄭州大學(xué)附屬腫瘤醫(yī)院檢驗科,河南 鄭州 450000)
無乳鏈球菌(Streptococcus agalactiae)是 B組鏈球菌 (Group B Streptococcus,GBS)唯一的一個種,是造成孕產(chǎn)婦生殖道感染的重要原因,嚴(yán)重時更可引起泌尿系感染、絨毛膜羊膜炎、產(chǎn)褥感染、新生兒感染等[1,2]。目前無乳鏈球菌的檢測方法有傳統(tǒng)培養(yǎng)、乳膠凝集實驗、免疫層析、實時熒光定量PCR和環(huán)介導(dǎo)恒溫恒溫擴(kuò)增 (loop-mediated isothermal amplification,LAMP)的方法等。LAMP 由日本科學(xué)家Notomi發(fā)明[3],反應(yīng)只需要把基因模板、引物、鏈置換型DNA合成酶、基質(zhì)等共同置于一定溫度下 (60~65℃),可在15~60min內(nèi)實現(xiàn)109~1010倍的擴(kuò)增,最后形成具有頸環(huán)結(jié)構(gòu)長短不一的多個雙鏈DNA。LAMP擴(kuò)增效率高,操作簡單,特異性強(qiáng),底物檢測方便,廣泛用于細(xì)菌類病原微生物的現(xiàn)場檢測。無乳鏈球菌特異性靶基因主要有cfb基因、16S rRNA、16S-23srRNA基因的間隔區(qū)和scpB和ssrA基因等[4]。BLAST比對證明無乳鏈球菌和停乳鏈球菌16S rRNA相似度超過95%,僅在個別位點有差異,引物設(shè)計較難,因此很少有人把16S rRNA作為LAMP擴(kuò)增GBS的靶基因。本文欲在此設(shè)計引物,一方面來探討以16S rRNA為靶基因來檢測GBS的可行性,另一方面來檢驗LAMP方法對序列極其相似的靶基因的區(qū)分能力。
1.1 菌株及來源 無乳鏈球菌標(biāo)準(zhǔn)菌株55191購自ATCC,其余52株無乳鏈球菌和其他131株非無乳鏈球菌(包括化膿鏈球菌12株、停乳鏈球菌停乳亞種11株、停乳鏈球菌似馬亞種23株、馬鏈球菌6株、咽峽炎鏈球菌10株、糞腸球菌20株、中間鏈球菌3株、牛鏈球菌4株、屎腸球菌26株、金黃色葡萄球菌7株、鉛黃腸球菌9株)均來自我室不同時期臨床的分離株。所有無乳鏈球菌、停乳鏈球菌停乳亞種、停乳鏈球菌似馬亞種均再次經(jīng)過16S rRNA通用擴(kuò)增測序后比對確證,方法見文獻(xiàn)[5]。
1.2 儀器與試劑 Bst DNA聚合酶、dNTPs、DNAMarker、細(xì)菌總DNA提取試劑盒均購自大連寶生物,金屬浴和凝膠成像系統(tǒng)購自美國Bio-Rad公司,引物合成由上海生工技術(shù)有限公司完成,其他試劑均購自日本Takara公司。
1.3 LAMP引物設(shè)計 選擇無乳鏈球菌16s rRNA參考基因 NR_040821.1、NR_113262.1、NR_115728.1、NR_117503.1,軟件DNAMAN7.0比對,選擇的序列為無乳鏈球菌的保守區(qū),停乳鏈球菌的可變區(qū)。Primer Explorer(http://primerexplorer.jp/elamp4.0.0/index.html)在線設(shè)計共4條引物:正向外部引物F3,反向外部引物B3,和帶有互補(bǔ)序列的正向內(nèi)部引物FIP和反向內(nèi)部引物BIP,具體位置和序列詳見圖1。
圖1 LAMP引物位置及序列
1.4 LAMP擴(kuò)增的反應(yīng)體系 反應(yīng)體系 25μl,包括:10xBst buffer 【20mMpH 為 8.8 的 Tris-HCl,10mM KCl,10mM(NH4)2SO4,2mM MgSO4,0.1%Triton-100】,25mM MgCl2,2.5mM dNTPs,5M betaine,內(nèi)引物(FIP 和 BIP),外引物(F3 和 B3),Bst DNA 聚合酶,DNA 模板,ddH2O,SYBR Green I。 結(jié)果判讀采用自然光顯色、熒光顯色和2%瓊脂糖凝膠電泳分析的方法。
1.5 LAMP擴(kuò)增的條件優(yōu)化 首先固定LAMP反應(yīng)體系中 FIP/BIP引物的濃度為 1.6μM,F(xiàn)3/B3為0.4μM,模板 2μl,Bst DNA聚合酶最佳反應(yīng)溫度60℃,然后逐一分別配制梯度濃度的dNTPs、betaine、鎂離子,各自采用不同的反應(yīng)時間,根據(jù)反應(yīng)產(chǎn)物瓊脂糖凝膠電泳的結(jié)果對LAMP反應(yīng)體系中的以上變量進(jìn)行優(yōu)化。
1.6 LAMP擴(kuò)增特異性檢測 用優(yōu)化后的LAMP方法對52株無乳鏈球菌和131株非無乳鏈球菌進(jìn)行擴(kuò)增,計算假陰性和假陽性。
1.7 LAMP擴(kuò)增敏感性檢測 將無乳鏈球菌55191接種于 Luria-Bertani培養(yǎng)基,37℃培養(yǎng) 18~24h[6],取100μl菌液進(jìn)行平板計數(shù),之后,將菌液做101~106倍6個梯度的稀釋,煮沸法提取細(xì)菌基因組DNA,分別取 2μl做 LAMP和 Real Time PCR檢測,比較兩種方法的靈敏度。
2.1 LAMP擴(kuò)增條件優(yōu)化 根據(jù)瓊脂糖凝膠電泳條帶的亮度,最終確定25μl反應(yīng)體系中dNTPs、betaine、鎂離子分別為 0.6mM、1.0M、12mM,最佳反應(yīng)時間為60min。
2.2 特異性檢測 僅52株無乳鏈球菌產(chǎn)生梯度條帶,其他細(xì)菌(包括34株停乳鏈球菌)均無任何條帶(圖 2)。
圖2 部分無乳鏈球菌和停乳鏈球菌LAMP擴(kuò)增結(jié)果
2.3 敏感性檢測 經(jīng)平板菌落計數(shù),原始菌液濃度為3.8×105cfu/ml。將原始菌液做101~106倍6個梯度的稀釋,相同方法提取基因組DNA,分別取2μl做PCR和LAMP檢測,結(jié)果顯示,LAMP能檢出104倍的稀釋,而普通PCR僅能檢出102倍的稀釋,前者比后者的靈敏度高出近100倍(圖3)。
圖3 無乳鏈球菌敏感性檢測
16S rRNA是細(xì)菌的系統(tǒng)分類研究中最有用的和最常用的分子鐘,其分子大小適中,存在于所有的生物中,在結(jié)構(gòu)與功能上具有高度的保守性,素有“細(xì)菌化石”之稱,因此根據(jù)細(xì)菌16S rRNA可變區(qū)的差異可以用來區(qū)分不同的菌,目前已成為細(xì)菌種屬鑒定的標(biāo)準(zhǔn)方法[7]。但16S rRNA序列在原核生物中的高度保守性,對于相近種或同一種內(nèi)的不同菌株之間的鑒別分辨力較差,特別是在某些菌屬中,16S rRNA有時差異很小,這就給LAMP引物設(shè)計帶來難度,所以目前僅有軍團(tuán)菌等少數(shù)細(xì)菌的LAMP檢測試劑盒的靶基因為16S rRNA[8],其余LAMP檢測試劑盒多在特異性功能蛋白基因上,或者變異度更大的16S-23S rRNA間隔區(qū)(Intergen ic Spacer Region,ISR)[9]。美國 Yanhong Liu[10]開發(fā)了一種環(huán)介導(dǎo)恒溫擴(kuò)增的方法來區(qū)分停乳鏈球菌、無乳鏈球菌和乳房鏈球菌,他利用16s-23s的間隔區(qū)設(shè)計了三組引物,分別識別這三種細(xì)菌,證明環(huán)介導(dǎo)恒溫擴(kuò)增的方法時間短,靈敏度高,能識別0.1pg的目標(biāo)底物的模板。本文在16S rRNA處設(shè)計引物,克服了種間序列區(qū)分的難度,也成功區(qū)分了上述細(xì)菌,并且具有很高的敏感性和特異性,證明LAMP對GBS檢出的可行性;而且,與Yanhong Liu等人的方法相比,本文更加簡單方便,在16S rRNA處設(shè)計引物,可用于任何細(xì)菌,比選擇單純的功能性蛋白基因或其他特異性基因,具有更好的通用性。
LAMP擴(kuò)增的特異性與其引物設(shè)計有很大關(guān)系。本課題中,引物靶基因參考了Genbank數(shù)據(jù)庫中6條無乳鏈球菌16S rRNA的參考基因,并且盡量選擇了其保守區(qū),但相對停乳鏈球菌則位于最大變異區(qū),所以能有效區(qū)分無乳鏈球菌和停乳鏈球菌。本文的52株無乳鏈球菌均能產(chǎn)生梯度條帶,其他細(xì)菌包括停乳鏈球菌均無任何條帶,說明本方法對僅有個別堿基差異的16S rRNA也能有效區(qū)分,具有很好的特異性。
LAMP擴(kuò)增的敏感性方面,本文證實每ml低至40個菌落即可檢出,顯示出其超高的敏感性。McKenna JP等人利用LAMP技術(shù)擴(kuò)增GBS的sip基因,證明具有100%的特異性,并能檢出最少14各拷貝的基因[11,12];日本 Kimura[13]也曾利用環(huán)介導(dǎo)恒溫擴(kuò)增的方法來擴(kuò)增GBS的cfb基因,證明這種方法在恒溫的條件下能發(fā)現(xiàn)4個拷貝的模板基因,結(jié)合本文的實驗證實,LAMP方法對無乳鏈球菌的檢測具有準(zhǔn)確、高效、靈敏等特點。但隨之而來的,LAMP擴(kuò)增的高靈敏性帶來了不可避免的缺點是假陽性高,因此,盡可能所有反應(yīng)均在單一閉合管中進(jìn)行,避免開蓋污染。本文即在上蓋中,預(yù)加入SYBR Green I,待反應(yīng)結(jié)束后上下混勻顯色,能有效避免污染。
本文的LAMP擴(kuò)增優(yōu)化的條件在1h內(nèi)完成,有人在4條引物的基礎(chǔ)上設(shè)計了一對環(huán)狀引物,能大大加快反應(yīng)速度,在30min內(nèi)既能完成檢測,大大降低了LAMP現(xiàn)場檢測的要求[14,15]。對于本文環(huán)狀引物的適用,還需要進(jìn)一步研究。
總之,本文設(shè)計的在16S rRNA處擴(kuò)增無乳鏈球菌具有很高的靈敏度和特異性,能有效區(qū)分序列高度近似的停乳鏈球菌和無乳鏈球菌。如果利用可隨身攜帶的實時熒光檢測儀,就能在床邊完成對無乳鏈球菌快速、簡單、隨機(jī)的操作,具有很大的市場前景。
[1]Marchant A,Sadarangani M,Garand M,et al.Maternal immunisation:collaborating with mother nature [J].Lancet Infect Dis,2017,17(7):e197-e208.
[2]饒潔,胡凱.女性生殖道無乳鏈球菌帶菌狀況及藥敏結(jié)果分析[J].實驗與檢驗醫(yī)學(xué),2011,29(2):194-194.
[3]Notomi T,Mori Y,Tomita N,et al.Loop-mediated isothermal amplification (LAMP):principle,features,and future prospects[J].J Microbiol,2015,53(2):1-5.
[4]Mousavi SM,Hosseini SM,Mashouf RY,et al.Identification of Group B Streptococci Using 16S rRNA,cfb,scpB,and atr Genes in Pregnant Women by PCR[J].Acta Med Iran,2016,54(8):765-770.
[5]肖偉強(qiáng).交叉感染引起的3株產(chǎn)Ⅰ型新德里金屬β-內(nèi)酰胺酶產(chǎn)氣腸桿菌同源性檢測[J].中華傳染病雜志,2014,25(9):11-13.
[6]尚紅,王毓三,申子瑜.全國臨床檢驗操作規(guī)程[M].第4版.北京:人民衛(wèi)生出版社,2015:654-655.
[7]Yarza P,Yilmaz P,Pruesse E,et al.Uniting the classification of cultured and uncultured bacteria and archaea using 16S rRNA gene sequences[J].Nat Rev Microbiol,2014,12(11):635-45.
[8]Lu X,Mo ZY,Zhao HB,et al.LAMP-based method for a rapid identification of Legionella spp.and Legionella pneumophila[J].Appl Microbiol Biotechnol,2011,92(7):179-87.
[9]Anklam K,Kulow M,Yamazaki W,et al.Development of real-time PCR and loop-mediated isothermal amplification (LAMP)assays for the differential detection of digital dermatitis associated treponemes[J].PLoS One,2017,12(5):e0178349.
[10]Wang D,Liu Y.Development of Primer Sets for Loop-Mediated Isothermal Amplification that Enables Rapid and Specific Detection of Streptococcus dysgalactiae,Streptococcus uberis and Strept ococcus agalactiae[J].Int J Environ Res Public Health,2015,12(9):5735-42.
[11]McKenna JP,Cox C,F(xiàn)airley DJ,et al.Loop-mediated isothermal amplification assay for rapid detection of Streptococcus agalactiae(group B streptococcus)in vaginal swabs-a proof of concept study[J].J Med Microbiol,2017,66(3):294-300.
[12]Xue G,Yu L,Li S,Shen X.Intranasal immunization with GBS surface protein Sip and ScpB induces specific mucosal and systemic immune responses in mice[J].FEMS Immunol Med Microbiol,2010,58(2):202-10.
[13]Kimura K,Yanagisawa H,Wachino J,et al.Rapid and reliable loop-mediated isothermalamplification method fordetecting Streptococcus agalactiae[J].Jpn J Infect Dis,2013,66(10):546-8.
[14]易海華,丁永健,錢志娟,等.環(huán)介導(dǎo)等溫擴(kuò)增技術(shù)檢測痰標(biāo)本中結(jié)核分枝桿菌的研究 [J].中國國境衛(wèi)生檢疫雜志,2008,31(5):7-11.
[15]Notomi T,Mori Y,Tomita N,et al.Loop-mediated isothermal amplification (LAMP):principle,features,and future prospects[J].J Microbiol,2015,53(1):1-5.