趙天智,周玉照,李燦榮,張小苗
(大理農(nóng)林職業(yè)技術學院,云南大理 671003)
豬腸道微生態(tài)區(qū)系由復雜多樣的微生物組成,腸道菌群的種類及數(shù)量變化直接影響豬的健康和生理功能。豬腸道有益菌群一旦遭到破壞,會使豬腸道消化吸收功能受損,降低生產(chǎn)性能。目前,主要有兩種調(diào)節(jié)豬腸道菌群的方法:益生菌和益生元。研究表明,飼料中添加益生菌可顯著增加腸道有益菌的種類和數(shù)量,改善腸道功能,提高生長豬的免疫力和日增重及飼料轉(zhuǎn)化率(張慧等,2017;秦紅,2016;胡曉芬等,2014;布登付等,2014;嚴念東等,2010)。益生元可被選擇性發(fā)酵而專一性地改善腸道中有益于宿主健康的菌群組成和活性(Roberfroid等,1998)。研究表明,飼糧中添加益生元可以提高生長豬腸道有益菌數(shù)量,降低有害菌數(shù)量,提高豬的生產(chǎn)性能(蘇成文等,2016;秦煒賾,2007;Shim 等,2005)。然而,飼糧中同時添加益生菌和益生元對育肥豬的生產(chǎn)性能的影響研究較少。因此,本試驗以育肥豬為研究對象,探討飼糧中單獨添加復合益生菌、低聚果糖和同時添加復合益生菌及低聚果糖對育肥豬生長性能、腸道菌群、腸道形態(tài)的影響,以期為育肥豬飼喂實踐中應用益生菌和低聚果糖提供理論依據(jù)。
1.1試驗動物與設計選擇體重[(62.50±0.83)kg]基本一致的60頭杜×長×大三元雜交商品豬,隨機分為4組,每組15個重復,每個重復1頭豬。對照組飼喂玉米-豆粕型基礎飼糧(不添加抗生素、益生菌和低聚果糖),試驗Ⅰ組飼喂基礎日糧+0.4%復合益生菌、試驗Ⅱ組飼喂基礎日糧+0.3%低聚果糖、試驗Ⅲ組飼喂基礎日糧+0.3%低聚果糖+0.4%復合益生菌。試驗期為60 d。
1.2試驗飼糧與飼養(yǎng)管理各組基礎飼糧以玉米、豆粕為主要原料,參照NRC(2012)豬營養(yǎng)需要標準配制成全價粉料,飼糧組成及營養(yǎng)水平見表1。試驗豬的飼養(yǎng)管理按照豬場規(guī)定進行。豬只預飼6 d,待采食量恢復正常后進入正試期,各組分別飼喂相應飼糧。豬只自由采食和自由飲水。
表1 基礎飼糧組成及營養(yǎng)水平(風干基礎)
1.3樣品采集試驗結(jié)束前一天晚上豬只禁食、禁水。取樣當天,從各組隨機挑選6只體況基本均勻一致的豬只,肌注4%戊巴比妥鈉溶液進行麻醉。頸動脈放血處死后,迅速打開腹腔,分別在十二指腸、空腸和回腸部位剪取5 cm長的腸段,用載玻片輕輕刮取5 g左右食糜放入離心管中,置于-20 ℃保存,用于測定腸道食糜微生物含量。在十二指腸、空腸和回腸,分別剪取1 cm的腸段,放入10%的福爾馬林溶液中固定,用以制作石蠟切片分析腸道形態(tài)結(jié)構。
1.4測定指標與方法
1.4.1生長性能測定試驗開始和結(jié)束時,于早上8:00逐只稱重空腹豬只體重,分別作為試驗豬只的初始體重和結(jié)束體重。試驗期內(nèi)每天準確記錄各組每頭豬的采食量,以重復為單位,計算平均日采食量(ADFI)、平均日增重(ADG)和料肉比(F/G)。
1.4.2腸道形態(tài)結(jié)構測定將用福爾馬林溶液固定的十二指腸、空腸、回腸取出,經(jīng)石蠟包埋后,切成5 μm切片,蘇木精-伊紅(HE)染色,采用非連續(xù)切片,切取2張切片,在每張切片選取10個典型視野,光學顯微鏡拍照,用Image-Pro Plus 6.0軟件測定相應的絨毛高度(腸腺開口到絨毛頂端的垂直高度)及隱窩深度(絨毛根部上皮凹陷到固有層的長度),并計算絨毛高度/隱窩深度比值。
1.4.3腸道菌群測定取稀釋液將腸道食糜進行10倍的配比稀釋。大腸桿菌、乳酸菌和雙歧桿菌分別以伊紅美藍瓊脂培養(yǎng)基、LBS培養(yǎng)基和BBL培養(yǎng)基在37 ℃條件下培養(yǎng)48 h后進行菌落計數(shù)。具體測定步驟參照文獻的方法進行(周映華等,2015;Torrallardona等,2003)。所有微生物計數(shù)結(jié)果以對數(shù)形式表示。
1.5數(shù)據(jù)統(tǒng)計與處理使用SAS 9.2軟件進行單因素方差分析(One-way ANOVA)。若各組間比較差異顯著,以Duncan’s法進行組間多重比較,結(jié)果以“平均值±標準差”表示(Mean±SD),以P<0.05表示差異顯著。
2.1復合益生菌和低聚果糖對育肥豬生長性能的影響由表2可以看出,飼糧中單獨添加復合益生菌或者低聚果糖或者同時添加益生菌和低聚果糖對育肥豬的結(jié)束體重、ADFI、ADG和F/G均具有顯著影響(P<0.05),試驗Ⅰ組育肥豬的生長性能與試驗Ⅱ組相比,差異不顯著(P>0.05)。試驗Ⅰ組育肥豬的結(jié)束體重、ADFI、ADG分別比對照組顯著提高5.67%、2.81%和13.58%(P<0.05),F(xiàn)/G比對照組顯著降低10.48%(P<0.05)。試驗Ⅱ組育肥豬的結(jié)束體重、ADFI、ADG分別比對照組顯著提高6.83%、2.80%和16.05%(P<0.05),F(xiàn)/G比對照組顯著降低12.78%(P<0.05)。試驗Ⅲ組育肥豬的結(jié)束體重、ADFI、ADG分別比對照組顯著提高13.60%、8.07%、30.86%(P< 0.05),F(xiàn)/G比對照組顯著降低20.40%(P<0.05)。試驗Ⅱ組育肥豬的結(jié)束體重、ADFI、ADG和F/G與試驗Ⅲ組相比,差異不顯著(P>0.05)。
2.2復合益生菌和低聚果糖對育肥豬腸道形態(tài)結(jié)構的影響復合益生菌和低聚果糖對育肥豬腸道形態(tài)結(jié)構的影響見圖1所示。由圖1-A可以看出,試驗Ⅰ組和試驗Ⅱ組育肥豬的十二指腸和回腸絨毛高度與對照組相比無顯著差異(P>0.05)。試驗Ⅱ組育肥豬的空腸絨毛高度顯著高于對照組(P<0.05),與試驗Ⅰ組差異不顯著(P>0.05)。試驗Ⅲ組育肥豬的十二指腸、空腸和回腸絨毛高度均顯著高于其他三組(P<0.05),表明復合益生菌和低聚果糖合用可以增加育肥豬絨毛高度。由圖1-B可知,飼糧中單獨添加0.4%復合益生菌和單獨添加0.3%低聚果糖對育肥豬十二指腸、空腸和回腸隱窩深度無顯著影響(P>0.05)。飼糧中同時添加0.4%復合益生菌和0.3%低聚果糖顯著降低了育肥豬十二直腸、空腸和回腸隱窩深度(P<0.05)。由圖1-C可知,飼糧中單獨添加0.4%復合益生菌和單獨添加0.3%低聚果糖對育肥豬十二指腸、空腸和回腸絨毛高度/隱窩深度比值無顯著影響(P>0.05)。飼糧中同時添加0.4%復合益生菌和0.3%低聚果糖顯著增加了育肥豬十二直腸、空腸和回腸絨毛高度/隱窩深度比值(P<0.05)。
表2 復合益生菌和低聚果糖對育肥豬生長性能的影響
圖1 復合益生菌和和低聚果糖對育肥豬腸道形態(tài)結(jié)構的影響
2.3復合益生菌和低聚果糖對育肥豬腸道菌群的影響由表3可以看出,飼糧中添加0.4%復合益生菌、0.3%低聚果糖、或者添加0.4%復合益生菌+0.3%低聚果糖對育肥豬腸道菌群均具有顯著影響(P<0.05)。試驗Ⅰ組和試驗Ⅱ組育肥豬的腸道菌群數(shù)量無顯著差異(P>0.05)。試驗Ⅲ組育肥豬的腸道乳酸桿菌數(shù)量分別比試驗Ⅱ組、試驗Ⅰ組和對照組提高6.19%、14.25%、16.99%(P<0.05),腸道雙歧桿菌數(shù)量分別比試驗Ⅱ組、試驗Ⅰ組和對照組提高6.23%、14.17%、17.45%(P<0.05),腸道大腸桿菌數(shù)量分別比對照組、試驗Ⅰ組和試驗Ⅱ組降低17.60%、16.64%、9.07%(P<0.05)。試驗Ⅱ組豬的腸道乳酸桿菌數(shù)量、雙歧桿菌數(shù)量分別比對照組提高10.18%和10.56%(P<0.05),腸道大腸桿菌數(shù)量比對照組降低8.32%(P<0.05)。試驗Ⅰ組組豬的腸道乳酸桿菌數(shù)量、雙歧桿菌數(shù)量分別比對照組提高7.18%和8.61%(P<0.05),腸道大腸桿菌數(shù)量比對照組降低12.66%(P<0.05)。
表3 復合益生菌和低聚果糖對育肥豬腸道菌群的影響 Log10cfu/g
3.1復合益生菌和低聚果糖對育肥豬生長性能的影響研究表明,益生菌的作用機理主要在于調(diào)節(jié)腸道菌群微生態(tài)平衡,增加有益菌的數(shù)量,降低有害菌數(shù)量,從而改善豬腸道消化吸收功能,提高豬生產(chǎn)性能(Meng等,2010;陳文輝等,2007;Broom等,2006)。本試驗結(jié)果表明,飼糧中單獨添加0.4%的復合益生菌對育肥豬結(jié)束體重、平均日增重、平均日采食量和料肉比均有顯著影響,與秦紅(2016)和張慧等(2017)的結(jié)果一致,因此,飼糧添加0.4%復合益生菌可顯著提高育肥豬的生長性能。韓美蘭等(2007)研究發(fā)現(xiàn),飼糧中添加果寡糖顯著提高育肥豬的平均日采食量和平均日增重。本試驗得到類似的試驗結(jié)果,0.3%低聚果糖添加組育肥豬的平均日采食量和平均日增重均顯著高于對照組,料肉比顯著低于對照組。本試驗結(jié)果表明,飼糧中同時添加復合益生菌和低聚果糖對育肥豬的生長性能具有顯著的促進作用,其作用大于兩者效應的簡單相加,原因可能在于二者同時添加具有互補作用。
3.2復合益生菌和低聚果糖對育肥豬腸道形態(tài)的影響腸道絨毛高度、隱窩深度和絨毛高度/隱窩深度是衡量腸道消化吸收能力的重要指標:絨毛越長,表明小腸對營養(yǎng)物質(zhì)的吸收能力越高(Dunsford等,1989);隱窩深度越淺,表明小腸分泌活動越強;絨毛高度/隱窩深度越大,表明腸內(nèi)膜面積大,消化吸收能力強(姚浪群等,2003)。秦紅(2017)研究結(jié)果表明,飼料中添加酵母菌顯著降低十二指腸腸絨毛高度,極顯著降低空腸隱窩深度,極顯著提高絨毛高度/隱窩深度;添加乳酸菌極顯著降低十二指腸隱窩深度,顯著提高空腸絨毛高度。本試驗結(jié)果表明,飼糧中添加0.4%復合益生菌對育肥豬十二指腸、空腸和回腸的絨毛高度、隱窩深度、絨毛高度/隱窩深度均沒有顯著影響,這可能與試驗豬群的生理狀態(tài)、飼養(yǎng)環(huán)境、益生菌數(shù)量和活性等有關。本試驗結(jié)果表明,飼糧中添加0.3%低聚果糖對對育肥豬十二指腸、空腸和回腸的絨毛高度、隱窩深度、絨毛高度/隱窩深度均沒有顯著影響。然而,飼糧中同時添加0.4%復合益生菌和0.3%低聚果糖對育肥豬腸道的絨毛高度、隱窩深度、絨毛高度/隱窩深度均具有顯著影響,表明復合益生菌和低聚果糖對腸道形態(tài)的影響具有互補效應。
3.3復合益生菌和低聚果糖對育肥豬腸道菌群的影響豬腸道微生物菌群的種類、數(shù)量及平衡狀態(tài)對豬腸道的消化吸收能力、免疫功能具有重要影響。秦紅(2016)研究結(jié)果表明,飼料中添加酵母菌和芽孢桿菌可以顯著增加腸道乳酸菌和雙歧桿菌的數(shù)量,降低大腸桿菌的數(shù)量。項明潔等(2005)和張澤生等(2016)研究結(jié)果表明,低聚果糖對雙歧桿菌和乳酸桿菌的生長增殖均表現(xiàn)出促進作用。本試驗得到了類似的試驗結(jié)果,添加0.4%復合益生菌組豬的腸道乳酸桿菌數(shù)量、雙歧桿菌數(shù)量分別比對照組提高7.18%和8.61%(P<0.05),腸道大腸桿菌數(shù)量比對照組降低12.66%(P<0.05);添加0.3%低聚果糖組育肥豬腸道雙歧桿菌數(shù)量和乳酸桿菌數(shù)量分別比對照組提高10.56%和10.17%(P<0.05),大腸桿菌數(shù)量比對照組降低9.38%。本試驗還發(fā)現(xiàn),飼糧中同時添加0.4%復合益生菌和0.3%低聚果糖對腸道菌群數(shù)量的影響大于二者單獨添加的作用效果。
飼糧中添加0.4%復合益生菌和0.3%低聚果糖均可改善育肥豬腸道菌群,提高育肥豬的生長性能,其中0.3%低聚果糖的添加效果優(yōu)于0.4%復合益生菌的添加效果。從飼喂實踐來看,飼糧中同時添加益生菌和低聚果糖對育肥豬的生長性能效果最佳。
[1]布登付,鄭中華.益生菌發(fā)酵濕料對肥育豬生長性能及腹瀉率的影響 [J].養(yǎng)豬,2014,6:47~ 48.
[2]陳文輝,周映華,李秋云,等.復合益生菌制劑對斷奶仔豬生產(chǎn)性能和腹瀉率的影響[J].湖南畜牧獸醫(yī),2007,3:14~15.
[3]韓美蘭.水飛薊、果寡糖配伍飼料對育肥豬生產(chǎn)性能的影響[D].延吉市:延邊大學,2007.
[4]胡曉芬,李翀,陳莉,等.益生菌緩解抗生素對生長豬飼料干物質(zhì)消化率及后腸微生物的影響[J].養(yǎng)豬,2014,6:38~40.
[5]秦紅.益生菌對育肥豬腸道屏障功能的影響[D].晉中市:山西農(nóng)業(yè)大學,2016.
[6]秦煒賾.中草藥、低聚果糖、抗生素對育肥豬生產(chǎn)性能的影響[D].延吉市:延邊大學,2007.
[7]蘇成文,肖發(fā)沂,李義,等.小麥日糧中益生菌與甘露寡糖對保育豬生產(chǎn)性能及糞便微生物的影響[J].黑龍江畜牧獸醫(yī),2016,13:117~119.
[8]項明潔,劉明,彭奕冰,等.低聚果糖對雙歧桿菌增殖效果及腸道菌群的影響[J].檢驗醫(yī)學,2005,1:49~51.
[9]姚浪群,薩仁娜,佟建明,等.安普霉素對仔豬腸道微生物及腸壁組織結(jié)構的影響[J].畜牧獸醫(yī)學報,2003,34(3):250~257.
[10]嚴念東,李紹章,魏金濤,等.益生菌發(fā)酵飼料對生長育肥豬生長性能及部分血液生化指標的影響[J].飼料工業(yè),2010,31(3):30~32.
[11]張慧,朱宇旌,李方方,等.微膠囊益生菌對育肥豬生產(chǎn)性能,血液生化和抗氧化指標及養(yǎng)分消化率的影響[J].豬業(yè)科學,2017,34(1):88~ 90.
[12]周映華,胡新旭,卞巧,等.無抗發(fā)酵飼料對生長育肥豬生長性能、腸道菌群和養(yǎng)分表觀消化率的影響[J].動物營養(yǎng)學報,2015,27(3):870~ 877.
[13]張澤生,張麗,呂曉玲,等.菊粉低聚果糖與蔗糖低聚果糖對雙歧桿菌體外增殖的研究[J].中國食品添加劑,2016,1:76~80.
[14]張紫微,卜棚,陳月麗,等.復合益生菌制劑在杜陸二元雜育肥豬中的應用效果[J].飼料研究,2017,16:1~6.
[15]Broom L J,Miller H M,Kerr K G,et al. Effects of zinc oxide and Enterococcus faecium SF68 dietary supplementation on the performance,intestinal microbiota and immune status of weaned piglets[J]. Research in Veterinary Science,2006,80(1):45~ 54.
[16]Dunsford B R,Knabe D A,Haensly W E. Effect of dietary soybean meal on the microscopic anatomy of the small intestine in the early weaned pig[J]. Journal of Animal Science,1989,67(7):1855.
[17]Meng Q W,Yan L,Ao X,et al. Influence of probiotics in different energy and nutrient density diets on growth performance,nutrient digestibility,meat quality,and blood characteristics in growing finishing pigs[J]. Journal of Animal Science,2010,88(10):3320.
[18]Roberfroid M B,Van Loo J A,Gibson G R. The bifidogenic nature of chicory inulin and its hydrolysis products[J]. Journal of Nutrition,1998,128(128):11~ 19.
[19]Shim S B. Effects of prebiotics,probiotics and synbiotics in the diet of young pigs[J]. Wageningen Universities,2005.
[20]Simon O,Jadamus A. Probiotic feed additives effectiveness and expected modes of action[J]. Journal of Animal & Feed Sciences,2001,10(1):51~ 67.
[21]Torrallardona D,Conde M R,Badiola I,et al. Effect of fishmeal replacement with spray dried animal plasma and colistin on intestinal structure,intestinal microbiology,and performance of weanling pigs challenged with Escherichia coli K99[J]. Journal of Animal Science,2003,81(5):1220~ 1226.