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      石墨爐原子吸收光譜法測定發(fā)酵香腸中的鎘

      2018-03-20 03:34:52戴意強(qiáng)劉輝劉恩岐陳安徽陳尚龍
      中國調(diào)味品 2018年3期
      關(guān)鍵詞:原子化灰化香腸

      戴意強(qiáng),劉輝,2,劉恩岐,2,陳安徽,2,陳尚龍,2*

      (1.徐州工程學(xué)院 食品(生物)工程學(xué)院,江蘇 徐州 221018;2.徐州工程學(xué)院 江蘇省食品資源開發(fā)與質(zhì)量安全重點(diǎn)建設(shè)實(shí)驗室,江蘇 徐州 221018)

      Cd不是人體必需的元素,其毒性較大,一般通過食物鏈進(jìn)入人體,并在人體內(nèi)富集,嚴(yán)重威脅人體健康[1,2],眾所周知的“骨痛病”就是由Cd中毒引起的[3]。因此,在食品中對Cd限量有嚴(yán)格的衛(wèi)生標(biāo)準(zhǔn)[4]。適當(dāng)?shù)臉悠非疤幚砜梢杂行У亟档突w干擾,常用的前處理方法有干法灰化、濕法消解和微波消解。干法灰化耗時短,但操作簡單,用酸量小,空白值低[5];濕法消解用酸量大,產(chǎn)生大量有毒有害氣體,但用時短,待測元素?fù)]發(fā)損失小[6];微波消解需要特殊儀器設(shè)備,消解樣品量較小,但耗時短、用酸量小、空白值低[7-9]。

      本試驗將實(shí)驗室所研制的發(fā)酵香腸作為研究對象[10-12],采用石墨爐原子吸收光譜法(GFAAS)測定發(fā)酵香腸中Cd的含量[13-18]。利用單因素試驗,考察各因素對Cd吸光度的影響,選出最佳的基體改進(jìn)劑[19,20],在此基礎(chǔ)上通過正交試驗確定最佳樣品前處理方法、基體改進(jìn)劑添加體積、灰化溫度和原子化溫度,建立GFAAS測定發(fā)酵香腸中Cd的方法。

      1 材料與方法

      1.1 材料與試劑

      發(fā)酵香腸:實(shí)驗室研發(fā)產(chǎn)品。

      1.000 g/L Cd標(biāo)準(zhǔn)溶液:國家化學(xué)試劑質(zhì)檢中心;磷酸二氫銨、濃HNO3、30% H2O2(V/V):均為優(yōu)級純,國藥集團(tuán)化學(xué)試劑公司;十二烷基硫酸鈉、抗壞血酸、乙二胺四乙酸、檸檬酸、酒石酸、(NH4)2SO4、Mg(NO3)2、Pd(NO3)2:均為分析純,天津福晨化學(xué)試劑廠;18.2 MΩ·cm超純水;氬氣(純度>99.99%)。

      1.2 儀器與設(shè)備

      Contra AA 700連續(xù)光源原子吸收光譜儀(配有MPE60自動進(jìn)樣器,簡稱HR-CS AAS) 德國Analytic Jena公司;XT-9900型智能微波消解儀及預(yù)處理裝置、XT-9800型多用預(yù)處理加熱儀 上海新拓微波溶樣測試技術(shù)公司;KSL-1400X-A2 智能箱式高溫爐 合肥科晶材料技術(shù)公司;220V-AC電子可調(diào)萬用電爐(0~2000 W) 上海樹立儀器儀表公司;FA-2004B電子天平(精度0.1 mg) 上海越平科學(xué)儀器公司;CascadaTM智能實(shí)驗室超純水系統(tǒng) 美國頗爾公司。

      1.3 方法

      1.3.1 發(fā)酵香腸工藝流程

      原料肉處理(肥瘦分割)→腌制→絞肉→加入發(fā)酵劑→灌腸(包括結(jié)扎和排氣)→發(fā)酵→干燥→成熟→貯藏。

      1.3.2 儀器工作參數(shù)

      HR-CS GFAAS測定Cd工作參數(shù):分析譜線為228.8018 nm,載氣為高純氬氣,進(jìn)樣體積為20 μL;Cd元素原子化過程溫度參數(shù):灰化溫度、原子化溫度分別為800,1500 ℃,原子化程序升溫速度為1400 ℃/s;基體改進(jìn)劑:10 g/L磷酸二氫銨(加入體積5 μL)。

      1.3.3 基體改進(jìn)劑溶液的配制

      磷酸二氫銨溶液(10 g/L):先將1.00 g磷酸二氫銨放入燒杯中,加入0.5% HNO3(V/V)充分溶解,并轉(zhuǎn)移至100 mL容量瓶中,并以0.5% HNO3(V/V)定容至刻度,搖勻。

      按上述方法,配制酒石酸溶液(1 g/L)、檸檬酸溶液(1 g/L)、抗壞血酸溶液(1 g/L)、十二烷基硫酸鈉溶液(1 g/L)、乙二胺四乙酸(飽和溶液)、(NH4)2SO4溶液(1 g/L)、Pd(NO3)2溶液(1 g/L)、Mg(NO3)2溶液(1 g/L)。

      1.3.4 標(biāo)準(zhǔn)工作曲線的配制

      用0.5% HNO3(V/V)將Cd標(biāo)準(zhǔn)溶液(1.000 g/L)逐級稀釋至5.00 μg/L Cd標(biāo)準(zhǔn)使用液,再將其置于MPE自動進(jìn)樣器中,設(shè)置5個質(zhì)量濃度梯度(0.50,1.25,2.50,3.75,5.00 μg/L)。

      1.3.5 樣品前處理方法

      干法灰化:稱取1.0~1.2 g經(jīng)粉碎、攪勻的發(fā)酵香腸(精確至0.1 mg)置于坩堝中,炭化至無煙后,轉(zhuǎn)移至箱式高溫爐中,高溫灰化(500 ℃,8 h),待灰分冷卻至室溫后,用1% HNO3(V/V)充分溶解,溶解液和坩堝洗滌液經(jīng)過濾后轉(zhuǎn)移至規(guī)格為25 mL的容量瓶中,定容至刻度,搖勻備用;同時以同樣方法做空白試驗。

      濕式消解:取0.4~0.5 g樣品(精確至0.1 mg)和10 mL混合酸(硝酸∶高氯酸為9∶1,V/V)置于具塞錐形瓶中,先振蕩均勻后放置過夜,再加熱消解,直至冒白煙,待消解液冷卻后,用1% HNO3(V/V)洗入規(guī)格為10 mL容量瓶中,再用1% HNO3(V/V)定容至刻度,搖勻備用;同時以同樣方法做空白試驗。

      微波消解:將0.4~0.5 g樣品(精確至0.1 mg)、5 mL濃 HNO3和2 mL 30% H2O2(V/V)一起置于微波消解罐中,經(jīng)輕微震蕩、混勻后進(jìn)行微波消解,待消解完畢后,用小火加熱除酸至近干,用1% HNO3(V/V)洗入規(guī)格為10 mL的容量瓶中,定容至刻度,搖勻備用;同時以同樣方法做空白試驗。

      2 結(jié)果與分析

      2.1 單因素試驗

      2.1.1 基體改進(jìn)劑種類的選擇

      發(fā)酵香腸成分較為復(fù)雜,含有大量蛋白質(zhì)、脂肪等有機(jī)成分和無機(jī)鹽成分,添加適當(dāng)?shù)幕w改進(jìn)劑可以防止灰化過程中Cd的損失,有效地改善吸收峰形和提高Cd的吸光度。將基體改進(jìn)劑種類作為試驗變量,研究基體改進(jìn)劑種類對Cd吸光度的影響,結(jié)果見圖1。

      圖1 基體改進(jìn)劑對吸光度的影響Fig.1 Effect of matrix modifier on absorbancy

      由圖1可知,不同基體改進(jìn)劑對Cd的吸光度影響差異很大,其中10 g/L NH4H2PO4影響最顯著。因此,試驗選擇10 g/L NH4H2PO4作為測定Cd的基體改進(jìn)劑。

      2.1.2 基體改進(jìn)劑添加體積的優(yōu)化

      加入適量的基體改進(jìn)劑可以得到穩(wěn)定性和重現(xiàn)性更好的吸收峰。將基體改進(jìn)劑添加體積作為試驗變量,固定其他試驗因素,利用GFAAS測定Cd的吸光度,結(jié)果見圖2。

      圖2 基體改進(jìn)劑添加體積對吸光度的影響Fig.2 Effect of matrix modifier volume on absorbancy

      由圖2可知,吸光度大小隨基體改進(jìn)劑添加體積的增大而增加,然后趨于穩(wěn)定,并伴隨小幅下降。當(dāng)基體改進(jìn)劑添加體積為5 μL時,Cd的吸光度達(dá)到最大值。

      2.1.3 灰化溫度的優(yōu)化

      灰化溫度過低會使樣品中基體殘留,灰化溫度過高會使樣品中Cd元素?fù)p失,這兩種情況都會影響Cd的吸光度。將灰化溫度作為試驗變量,固定其他試驗因素,利用GFAAS測定Cd的吸光度,結(jié)果見圖3。

      圖3 灰化溫度對吸光度的影響Fig.3 Effect of ashing temperature on absorbancy

      由圖3可知,當(dāng)灰化溫度小于800 ℃時,Cd的吸光度上升明顯;當(dāng)灰化溫度大于800 ℃時,Cd的吸光度明顯下降,表明過高的灰化溫度導(dǎo)致待測元素受到了損失。

      2.1.4 原子化溫度的優(yōu)化

      GFAAS原子化階段的作用是產(chǎn)生原子蒸汽,原子化溫度會影響測定的準(zhǔn)確度和靈敏度,因此在測定Cd吸光度過程中,需要選擇合適的原子化溫度。將原子化溫度作為試驗變量,固定其他試驗因素,利用GFAAS測定Cd的吸光度,結(jié)果見圖4。

      圖4 原子化溫度對吸光度的影響Fig.4 Effect of atomizing temperature on absorbancy

      由圖4可知,當(dāng)原子化溫度在1300~1600 ℃時,Cd吸光度隨原子化溫度升高而增加,當(dāng)原子化溫度大于1600 ℃時,Cd的吸光度隨原子化溫度的增加而緩慢下降。

      2.2 正交試驗設(shè)計及方差分析

      在單因素試驗的基礎(chǔ)上,以前處理方法、基體改進(jìn)劑添加體積、灰化溫度和原子化溫度為影響因素,以Cd的吸光度為指標(biāo),選用L9(34)正交表進(jìn)行正交試驗設(shè)計[21],試驗設(shè)計及結(jié)果見表1,對試驗結(jié)果進(jìn)行方差分析,結(jié)果見表2。

      表1 正交試驗設(shè)計及試驗結(jié)果Table 1 Orthogonal experimental design and results

      由表1可知,4個因素對吸光度的影響順序為A>B>C>D,即前處理方法>基體改進(jìn)劑添加體積>灰化溫度>原子化溫度,其中前處理方法對吸光度的影響最強(qiáng),且分析最佳測定條件為A1B2C2D1。

      表2 正交試驗方差分析Table 2 Variance analysis of orthogonal experiment

      注:F0.05(2,2)=19.00,P<0.05,*表示影響顯著。

      由表2可知,前處理方法對吸光度的影響顯著(P<0.05),基體改進(jìn)劑添加體積、灰化溫度和原子化溫度對吸光度的影響不顯著。

      為了進(jìn)一步驗證正交試驗結(jié)果的可靠性與重現(xiàn)性,在分析最佳測定條件下,重復(fù)測定6次,得到吸光度的平均值為0.1691(高于試驗最佳吸光度0.1675),RSD=3.43%。因此最佳測定條件為A1B2C2D1,即前處理方法為干法灰化,基體改進(jìn)劑添加體積為5 μL,灰化溫度為800 ℃,原子化溫度為1500 ℃。

      2.3 標(biāo)準(zhǔn)工作曲線

      通過Aspect CS軟件設(shè)置Cd的檢測方法,使用HR-CS GFAAS進(jìn)行順序測定。以標(biāo)準(zhǔn)液所配制的Cd質(zhì)量濃度為橫坐標(biāo)、所測定的Cd吸光度為縱坐標(biāo),利用軟件繪制非線性標(biāo)準(zhǔn)工作曲線,所得方程為A=(0.0265347+0.207538×c)/(1+0.1421586×c),相關(guān)系數(shù)為0.9979,特征質(zhì)量濃度為0.04 μg/L,測定結(jié)果表明Cd的質(zhì)量濃度在0.50~5.00 μg/L范圍內(nèi),Cd的質(zhì)量濃度與吸光度呈現(xiàn)良好的關(guān)系。

      2.4 樣品測定和回收率試驗

      發(fā)酵香腸經(jīng)干法灰化后,在最優(yōu)測定條件下平行測定6次,根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)工作曲線,計算得出發(fā)酵香腸中Cd的平均含量為18.24 μg/kg,此含量小于國家標(biāo)準(zhǔn)(GB 2762-2012)中的限量(100 μg/kg),RSD=3.67%。將一定量Cd的標(biāo)準(zhǔn)溶液和發(fā)酵香腸一起進(jìn)行干法灰化(加標(biāo)水平為20 μg/kg),在最優(yōu)試驗條件下平行測定6次,計算得樣品平均加標(biāo)回收率為97.3%,RSD=2.86%,表明使用該方法測定發(fā)酵香腸中Cd,結(jié)果準(zhǔn)確可靠。

      3 結(jié)論

      通過單因素試驗,試驗選擇10 g/L NH4H2PO4作為測定Cd的基體改進(jìn)劑,系統(tǒng)地分析了影響發(fā)酵香腸中Cd測定的因素;再通過正交試驗,篩選出最優(yōu)測定條件,即采用干法灰化進(jìn)行前處理,添加基體改進(jìn)劑體積為5 μL,石墨爐灰化溫度和原子化溫度分別800,1500 ℃;在此條件下,測定發(fā)酵香腸中Cd的含量為18.24 μg/kg,低于國家標(biāo)準(zhǔn),加標(biāo)平均回收率為97.3%,且RSD≤3.67%。

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