趙超群,劉 柱,徐瀟穎,羅金文
(浙江省食品藥品檢驗(yàn)研究院,杭州310052)
苯并咪唑是一種含有2個(gè)氮原子的苯并雜環(huán)化合物,這種特殊的結(jié)構(gòu)使得苯并咪唑類化合物具有良好的生物活性[1],可用作組胺受體拮抗劑、質(zhì)子泵抑制劑,還有抗高血壓、抗寄生蟲的治療作用[2]。苯并咪唑類化合物在獸醫(yī)臨床上也應(yīng)用廣泛,是許多寄生蠕蟲疾病的首選藥物,療效明顯[3]。由于一些苯并咪唑類藥物及其代謝物在動物和靶動物安全評價(jià)試驗(yàn)中表現(xiàn)出致畸和致突變的作用,雖然其在體內(nèi)很快代謝,但一些代謝物,如亞砜化物、羥化產(chǎn)物等仍具有胚胎毒性,因此許多國家已將苯并咪唑類藥物及其代謝物同時(shí)作為限用物質(zhì)進(jìn)行監(jiān)控。歐盟規(guī)定阿苯達(dá)唑、芬苯達(dá)唑和奧芬達(dá)唑在牛奶中的殘留限量分別為100,10,10μg·kg-1;我國農(nóng)業(yè)部公告第235號令規(guī)定阿苯達(dá)唑、芬苯達(dá)唑、奧芬達(dá)唑、噻苯咪唑在牛奶中的殘留限量均為100μg·kg-1。但目前使用的標(biāo)準(zhǔn)方法及文獻(xiàn)報(bào)道基本是針對動物源性食品中的苯并咪唑類藥物殘留的檢測[4],對奶粉中的苯并咪唑類藥物殘留檢測方法報(bào)道較少。在質(zhì)量安全意識淡薄和經(jīng)濟(jì)利益的驅(qū)使下,對泌乳牛用藥不當(dāng)或不注意停藥時(shí)間均會造成牛奶中苯并咪唑等獸藥的超標(biāo)殘留,攝入人體后,同樣會影響人體健康。國內(nèi)外報(bào)道的測定苯并咪唑類藥物的方法主要有液相色譜法[5-8]、液相 色譜-質(zhì)譜聯(lián) 用法[9-11]、熒光光譜法[12]、免疫測定法[13]和高效毛細(xì)管電泳法[14]等,但同時(shí)測定奶粉中16種苯并咪唑類藥物殘留的方法鮮見報(bào)道。本工作采用超高效液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜法同時(shí)測定奶粉中的16種苯并咪唑類藥物殘留量,可為建立高效靈敏的方法用于日常檢測提供依據(jù)。
Waters T-QS型液相色譜-質(zhì)譜聯(lián)用色譜儀;Milli-Q型超純水儀;Waters Oasis MCX固相萃取柱(6cc,500mg)。
單標(biāo)準(zhǔn)儲備溶液:0.500g·L-1,分別稱取奧芬達(dá)唑、芬苯達(dá)唑、奧芬達(dá)唑砜、阿苯達(dá)唑、阿苯達(dá)唑-2-氨基砜、阿苯達(dá)唑亞砜、阿苯達(dá)唑砜、甲苯咪唑、氨基甲苯咪唑、羥基甲苯咪唑、噻苯咪唑、5-羥基噻苯咪唑、氟苯咪唑、2-氨基氟苯咪唑、噻苯咪唑酯、丙氧苯咪唑各10.0mg,用甲醇溶解,并定容至20mL,于4℃保存。使用時(shí),取各單標(biāo)準(zhǔn)儲備溶液適量,混合后用乙腈稀釋至所需質(zhì)量濃度,配制成混合標(biāo)準(zhǔn)儲備溶液。
甲醇、乙腈、甲酸均為色譜純,其他所用試劑均為分析純;試驗(yàn)用水為超純水。
1)色譜條件 Waters ACQUITY UPLC BEH色譜柱(2.1mm×50mm,1.7μm);柱溫35℃;流量0.35mL·min-1;進(jìn)樣量2μL;流動相 A 為0.02%(體積分?jǐn)?shù),下同)甲酸溶液,B為乙腈。梯度洗脫程序:0~6.0min時(shí),B由12%升至55%;6.0~6.1min時(shí),B由55%降至12%,保持2min。
2)質(zhì)譜條件 電噴霧正離子源(ESI+),離子源溫度500℃;電離電壓3.5kV;碰撞氣流量800L·h-1;多反應(yīng)監(jiān)測(MRM)模式。16種藥物的監(jiān)測離子對及相關(guān)參數(shù)見表1,其中“*”表示定量離子。
表1 質(zhì)譜參數(shù)Tab.1 MS parameters
1.3.1 樣品提取
稱取樣品2.000 0g至50mL高速離心管中,加入0.1mol·L-1鹽酸溶液8mL溶解,加入乙腈7mL,渦旋混合,超聲提取5min,以4 000r·min-1轉(zhuǎn)速離心5min。
1.3.2 凈化
MCX固相萃取柱(6cc,500mg)經(jīng)甲醇5mL活化,0.1mol·L-1鹽酸溶液5mL平衡后,將樣品上清液全部過柱,控制流量每秒1~2滴,然后依次使用0.1mol·L-1鹽酸溶液5mL、甲醇5mL淋洗,氨水-乙腈(1+9)溶液15mL洗脫。收集全部洗脫液,于38℃旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)至近干,加入乙腈0.5mL,超聲振蕩5min,加入0.025mol·L-1乙酸銨溶液1.5mL,漩渦混勻。取上述溶液0.5mL,加入乙腈(2+8)溶液4.5mL,經(jīng)0.22μm有機(jī)微孔濾膜過濾后轉(zhuǎn)移至進(jìn)樣瓶中,按儀器工作條件進(jìn)行測定。
混合標(biāo)準(zhǔn)溶液的總離子流色譜圖見圖1,16種化合物的提取離子流圖見圖2。
圖1 總離子流色譜圖Fig.1 TIC chromatogram
圖2 16種化合物的提取離子流圖Fig.2 Extraction ion chromatograms of 16compounds
苯并咪唑類藥物屬于弱堿性化合物,中等極性,易溶于極性有機(jī)溶劑,在水中溶解度較小。但奶粉中含有大量蛋白質(zhì)及脂肪等基質(zhì),直接用有機(jī)溶劑提取會沉淀蛋白質(zhì),影響目標(biāo)化合物的提取。試驗(yàn)分別考察了0.1mol·L-1鹽酸溶液-乙腈提取和乙酸乙酯萃取兩種方式對目標(biāo)物的提取效果。
當(dāng)溶液呈酸性時(shí),弱堿性的苯并咪唑類藥物的溶解度增大。試驗(yàn)中先用0.1mol·L-1鹽酸溶液8mL溶解奶粉,再加入乙腈7mL,渦旋混勻,奶粉能在溶液中混合均勻,超聲提取離心后即可上固相萃取柱凈化。
水溶液的酸度對苯并咪唑類藥物的影響較大,當(dāng)調(diào)節(jié)水溶液為堿性時(shí),苯并咪唑類藥物為分子狀態(tài),溶解度減小,更易被有機(jī)溶劑萃取。將奶粉先溶于1%(質(zhì)量分?jǐn)?shù))氫氧化鉀溶液中,加入氯化鈉2g,再用乙酸乙酯萃取2次,合并上清液于38℃旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)至近干,殘?jiān)扔靡译?.5mL超聲溶解,再加入0.1mol·L-1鹽酸溶液1.5mL,避免乙腈與正己烷液液分配脫脂時(shí)產(chǎn)生乳化現(xiàn)象,渦旋混勻,加入正己烷重復(fù)洗滌去脂,脫脂后的樣品加入0.1mol·L-1鹽酸溶液3mL渦旋混勻,上固相萃取柱凈化。
結(jié)果表明:兩種方式的回收率均較高,但基于經(jīng)濟(jì)效益及操作便利性的考慮,試驗(yàn)選擇0.1mol·L-1鹽酸溶液-乙腈提取,具體的提取條件見1.3.1節(jié)。
奶粉中的基質(zhì)較為復(fù)雜,包括蛋白質(zhì)、脂肪、糖類、礦物質(zhì)和維生素等,提取后需凈化才能上機(jī)分析,否則會污染離子源。苯并咪唑類藥物為弱堿性,試驗(yàn)選擇適合于堿性化合物吸附的 Waters Oasis MCX固相萃取柱,對復(fù)雜的樣品基質(zhì)凈化效果較好。同時(shí)需考慮固相萃取柱的飽和載量,試驗(yàn)選用了(6cc,500mg)、(3cc,60mg)等兩種大小的固相萃取柱。結(jié)果表明:當(dāng)使用純對照品上柱分析時(shí),二者保留能力相同。
試驗(yàn)進(jìn)一步分別考察了4,10,20μg·L-1等3個(gè)基質(zhì)加標(biāo)提取液上柱分析時(shí)兩種固相萃取柱保留能力的差別。結(jié)果表明:當(dāng)加標(biāo)質(zhì)量濃度為4μg·L-1時(shí),小體積容量柱的保留為大體積容量柱的90%以上;當(dāng)加標(biāo)質(zhì)量濃度為10μg·L-1時(shí),小體積容量柱的保留約為大體積容量柱的50%;當(dāng)加標(biāo)質(zhì)量濃度為20μg·L-1時(shí),小體積容量柱的保留為大體積容量柱的40%以上。說明當(dāng)使用基質(zhì)加標(biāo)提取液上柱分析時(shí),MCX固相萃取柱(3cc,60mg)會產(chǎn)生過載現(xiàn)象。綜上所述,試驗(yàn)選擇Waters Oasis MCX固相萃取柱(6cc,500mg)為凈化柱。
2.4.1 色譜柱
16種苯并咪唑類藥物在C18色譜柱上均有較強(qiáng)的保留,在相同的流動相比例下分別考察了幾種C18色譜柱對16種苯并咪唑類藥物的分離效果。試驗(yàn)結(jié)果表明:Waters ACQUITY UPLC BEH 色譜柱(2.1mm×50mm,1.7μm)的分離效果較好,除噻苯咪唑與阿苯達(dá)唑-2-氨基砜、2-氨基氟苯咪唑與阿苯達(dá)唑砜、羥基甲苯咪唑與氨基甲苯咪唑不能完全分離,其他各化合物均能很好地分離,且峰形良好,見圖1。試驗(yàn)選擇 Waters ACQUITY UPLC BEH色譜柱為分析柱。
2.4.2 流動相
試驗(yàn)分別用純水和0.02%甲酸溶液為水相,對分離效果進(jìn)行了比較,結(jié)果表明:使用0.02%甲酸溶液響應(yīng)值更高,在ESI+模式下,水相中加入甲酸有利于提高待測化合物的離子化效率。分別以甲醇、乙腈為有機(jī)相,對分離效果進(jìn)行了比較,結(jié)果表明:使用乙腈時(shí),分離效果更好。試驗(yàn)選擇以0.02%甲酸溶液為水相,乙腈為有機(jī)相進(jìn)行梯度洗脫,梯度洗脫程序見1.2節(jié)。
質(zhì)譜中最常用的離子源有大氣壓力化學(xué)電離源(APCI)和電噴霧離子源(ESI)兩種,APCI比較適合于中性或極性小的化合物的分析,而ESI則更適合于極性大的酸性或堿性化合物的分析。苯并咪唑類藥物屬于中等極性的弱堿性化合物,因此試驗(yàn)采用ESI。將混合標(biāo)準(zhǔn)溶液以蠕動泵注射的方式注入質(zhì)譜,分別在正負(fù)離子模式下進(jìn)行掃描,在正離子模式下均有較好響應(yīng)的準(zhǔn)分子離子峰,并在MRM模式下優(yōu)化儀器參數(shù),使測定靈敏度更高。優(yōu)化的質(zhì)譜條件見1.2節(jié)。
苯并咪唑類藥物均有苯并咪唑雜環(huán)結(jié)構(gòu),因此在質(zhì)譜圖中容易出現(xiàn)相同的碎片離子[15],如阿苯達(dá)唑砜與羥基甲苯咪唑的相對分子質(zhì)量相近,在單標(biāo)準(zhǔn)溶液進(jìn)樣,用子離子掃描模式確定監(jiān)測離子對時(shí),阿苯達(dá)唑砜與羥基甲苯咪唑會產(chǎn)生相同的離子對m/z 298/159,298/266。為了使這兩種化合物分離,在保證靈敏度的條件下盡可能選擇各自特有的特征離子對,試驗(yàn)選擇阿苯達(dá)唑砜的監(jiān)測離子對為m/z298.17/224.00,298.17/190.80,羥基甲苯咪唑監(jiān) 測 離 子 對 為 m/z 298.00/265.90,298.00/107.20。優(yōu)化的質(zhì)譜參數(shù)見表1。
稱取空白樣品2.000g置于50mL離心管中,分別加入混合標(biāo)準(zhǔn)儲備液適量,按照試驗(yàn)方法進(jìn)行前處理,作為檢出限及測定下限的基質(zhì)工作溶液。當(dāng)進(jìn)樣量為2μL時(shí),根據(jù)3倍和10倍信噪比,分別確定檢出限(3S/N)以及測定下限(10S/N),結(jié)果見表2。對于前處理復(fù)雜的樣品,當(dāng)定量分析單個(gè)或少量幾個(gè)待測組分時(shí),可采用同位素稀釋內(nèi)標(biāo)法,但當(dāng)分析種類較多的化合物組分時(shí),需要多個(gè)內(nèi)標(biāo),增加了方法的復(fù)雜性和成本。試驗(yàn)中基質(zhì)較單一,采用基質(zhì)加標(biāo)外標(biāo)法定量,以測定下限為最低質(zhì)量分?jǐn)?shù),20倍測定下限為最高質(zhì)量分?jǐn)?shù),作系列質(zhì)量分?jǐn)?shù)基質(zhì)加標(biāo)工作曲線溶液,以峰面積對質(zhì)量分?jǐn)?shù)進(jìn)行線性回歸,結(jié)果見表2。
表2 線性參數(shù)、檢出限和測定下限Tab.2 Linearity parameters,detection limits and lower limits of determination
分別在低(2倍測定下限)、中(4倍測定下限)、高(20倍測定下限)等3個(gè)濃度水平下對空白樣品進(jìn)行加標(biāo)回收試驗(yàn),每個(gè)濃度水平平行測定6次,其加標(biāo)回收率和測定值的相對標(biāo)準(zhǔn)偏差(RSD)見表3。
表3(續(xù))
由表3可知:RSD(n=6)均小于9.0%,表明方法具有較好的重復(fù)性。
將10批奶粉樣品,按照試驗(yàn)方法進(jìn)行測定,通過比較樣品與對照品圖譜的保留時(shí)間以及監(jiān)測離子通道的豐度比,測定樣品中苯并咪唑類藥物的含量。結(jié)果表明:16種苯并咪唑類藥物在10批樣品中均未檢出。
本工作采用超高效液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜法測定奶粉中苯并咪唑類藥物殘留量。方法操作簡單、專屬性強(qiáng)、靈敏度高、準(zhǔn)確性好,可滿足奶粉中的苯并咪唑類藥物殘留量的測定要求。
[1] 張曉峰,許志忠,王延偉,等.具生物活性的苯并咪唑類衍生物研究進(jìn)展[J].廣東化工,2014,41(19):265-266.
[2] 孟江平,耿蓉霞,周成合,等.苯并咪唑類藥物研究進(jìn)展[J].中國新藥雜志,2009,18(16):1505-1514.
[3] 高學(xué)軍,李慶章.苯并咪唑氨基甲酸酯類抗蠕蟲藥物作用機(jī)理研究進(jìn)展[J].東北農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào),2004,35(4):492-495.
[4] 陳飛,萬宇平,馮靜,等.動物組織中苯并咪唑類藥物多殘留ELISA方法的建立[J].中國釀造,2013,32(8):144-147.
[5] 林海丹,林峰,張美金,等.高效液相色譜法同時(shí)測定動物組織中16種苯并咪唑類藥物殘留[J].食品科學(xué),2011,32(2):231-236.
[6] SU S C,CHANG C L,CHANG P C,et al.Simultaneous determination of albendazole,thiabendazole,mebendazole and their metabolites in livestock by high performance liquid chromatography[J].Journal of Food and Drug Analysis,2003,11(4):307-319.
[7] DUSI G,GAMBA V,F(xiàn)AGGIONATO E.Rapid de-termination of the antiparasitic drugs flubendazole and febantel in feeds by HPLC with ultraviolet detection[J].Journal of Pharmaceutical and Biomedical Analysis,2005,38(2):375-379.
[8] GUZMAN-VAZQUEZ A de PRADA,MENA M L,REVIEJO A J,et al.Voltammetric behavior and determination by flow injection with amperometric detection of benzimidazoles[J].Analytical Letters,2004,37(1):65-79.
[9] 湯娟,吳斌,景蘇,等.高效液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜測定奶粉中3種苯并咪唑類藥物殘留[J].質(zhì)譜學(xué)報(bào),2012,33(1):13-17.
[10] 劉琪,朱馨樂,孫雷,等.高效液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜法檢測豬肝中苯并咪唑類藥物及其代謝物的殘留量[J].中國獸藥雜志,2010,44(2):1-6.
[11] 郭強(qiáng),常孝勇.動物組織中苯并咪唑類藥物檢測的LC-MS/MS法研究[J].河南農(nóng)業(yè)科學(xué),2012,41(2):152-156.
[12] ARENAS R V,RAHMAN H,JOHNSON N A.Determination of thiabendazole residues in white and sweet potatoes by liquid chromatography with fluorescence detection[J].J AOAC Int,1995,78(6):1455-1458.
[13] BRANDON D L,HOLLAND K P,DREAS J S,et al.Rapid screening for benzimidazole residues in bovine liver[J].J Agric Food Chem,1998,46(9):3653-3656.
[14] SHEN J Z,TONG J,JIANG H Y,et al.Simultaneous determination of five benzimidazoles in feeds using high-performance capillary electrophoresis[J].J AOAC Int,2009,92(4):1009-1015.
[15] 劉洪斌,于洪俠,劉佳佳,等.高效液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜法檢測牛奶中多種苯并咪唑獸藥殘留[J].分析試驗(yàn)室,2011,30(3):13-17.