劉麗,王貴珍,周延山,楚彬,馬素潔,姬程鵬,田永亮,花立民
(甘肅農(nóng)業(yè)大學(xué)草業(yè)學(xué)院,教育部草業(yè)生態(tài)系統(tǒng)重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,甘肅農(nóng)業(yè)大學(xué)-新西蘭梅西大學(xué)草地多樣性研究中心,甘肅 蘭州 730070)
青藏高原是我國以及東亞氣候系統(tǒng)穩(wěn)定的重要屏障,有豐富多樣、獨(dú)具特色的特殊生態(tài)系統(tǒng)類型和珍稀動(dòng)植物種類,是全球生物多樣性保護(hù)的重點(diǎn)區(qū)域[1]。廣布于該區(qū)的高寒草甸在畜牧業(yè)生產(chǎn)和水源涵養(yǎng)等生態(tài)保育功能中發(fā)揮著極其重要的作用[2]。然而隨著氣候變化、人類干擾等因素,高寒草甸生態(tài)系統(tǒng)退化嚴(yán)重,其中草原鼠害是加劇退化的重要因素[3]。高原鼢鼠(Eospalaxbaileyi)是青藏高原高寒草甸生態(tài)系統(tǒng)優(yōu)勢地下害鼠,當(dāng)其種群密度超過環(huán)境容量時(shí),顯著影響到草地生產(chǎn)力和植物群落結(jié)構(gòu)[4]。但是,高原鼢鼠是土壤疏松、生物多樣性維持的關(guān)鍵物種之一,有著 “生態(tài)系統(tǒng)工程師”的美譽(yù)[5-6]。
種群遺傳分化研究是遺傳資源利用和物種保護(hù)的基礎(chǔ)[7]。遺傳多樣性是決定一個(gè)物種進(jìn)化潛力和抵御不良環(huán)境能力的主要驅(qū)動(dòng)力[8-9]。高原鼢鼠依靠挖掘地下洞道系統(tǒng)完成取食、擴(kuò)散等行為[10]。穩(wěn)定的地下生活環(huán)境和有限的遷移能力使不同地理種群間存在嚴(yán)重的限制性基因流[11]和獨(dú)特的地域種群遺傳結(jié)構(gòu)[12]。蔡振媛等[12]通過測定線粒體控制區(qū)序列變異發(fā)現(xiàn)地理屏障與高原鼢鼠種群間遺傳距離沒有顯著相關(guān)性,種群間遺傳分化中大約79.6%的變異可以由地理隔離解釋。但這些研究多集中在較大尺度的地理區(qū)域和歷史事件對其種群結(jié)構(gòu)的影響[11-12],小尺度特殊地理環(huán)境等對鼢鼠種群遺傳結(jié)構(gòu)影響的研究較少。研究尺度的差異會(huì)對遺傳結(jié)構(gòu)結(jié)果解釋各異,而小尺度上的種群遺傳結(jié)構(gòu)則受到棲息地景觀模式、個(gè)體永久性遷移頻率及由于交配事件導(dǎo)致的基因擴(kuò)散情況等多重因素的影響[13]。為進(jìn)一步研究小尺度生境中環(huán)境因素對種群遺傳的影響,本試驗(yàn)采用微衛(wèi)星標(biāo)記的方法,在祁連山東段高寒草甸區(qū)小尺度下,研究不同地理位置的高原鼢鼠種群遺傳結(jié)構(gòu)特點(diǎn)、基因交流及其影響因素,為該物種生物多樣性保護(hù)和草原鼠害防治提供相關(guān)參考依據(jù)。
試驗(yàn)地選在甘肅省天??h抓喜秀龍鄉(xiāng)高寒草甸區(qū)。該區(qū)位于東祁連山的天祝金強(qiáng)河河谷,地理坐標(biāo)為北緯37°11′,東經(jīng)102°29′,海拔 2710~3080 m。境內(nèi)地形受馬牙雪山和雷公山隆起的影響,形成東西向的峽谷地帶,西高東低。氣候寒冷潮濕,太陽輻射強(qiáng)。年均溫-0.1 ℃,>0 ℃年積溫1380 ℃;年降水量416 mm,多為地形雨,集中于 7、8、9 三個(gè)月。無絕對無霜期,僅分冷熱兩季。天然草地主要為高寒草甸。主要植物有垂穗披堿草(Elymusdahuricus)、矮嵩草(Kobresiahumilis)、線葉嵩草(K.capillifolia)、二裂委陵菜(Potentillabifurca)、秦艽(Gentianamacrophylla)、扁蓿豆(Ruthenianmedic)、早熟禾(Poaannua)、狗娃花(Heteropappushispidus)、黃芪(Astragalusmembranaceus)、棘豆(Oxytropisbella)、蕨麻(Potentillaanserina)、苔草(Carexhumilis)等。
試驗(yàn)材料總共包括163個(gè)高原鼢鼠個(gè)體,試驗(yàn)采樣點(diǎn)分別在甘肅祁連山東段高寒草甸區(qū)的馬營灘(MYT)、下南泥溝(XNG)、馬營河?xùn)|(MYR)和馬營河西(MYL)共4個(gè)樣地,如圖1所示。MYT、XNG、MYL和MYR 的樣地面積分別為7.50,1.60,1.25,1.25 hm2。其中,MYT樣地中高原鼢鼠的個(gè)體采樣點(diǎn)的最遠(yuǎn)直線距離為600 m,采樣點(diǎn)范圍約3 hm2;XNG樣地中采樣點(diǎn)的最遠(yuǎn)直線距離為500 m,采樣點(diǎn)范圍約1 hm2;MYL樣地中采樣點(diǎn)的最遠(yuǎn)直線距離為200 m,采樣點(diǎn)范圍約1 hm2;MYR樣地采樣點(diǎn)的最遠(yuǎn)直線距離為300 m,采樣點(diǎn)范圍約1.2 hm2。4個(gè)樣地共采集鼢鼠的雌性個(gè)體數(shù)量為87;雄性個(gè)體數(shù)量為76。采取典型種群隨機(jī)抽樣法,分別在2014、2015年的5、6、8月用弓箭捕獲鼢鼠,記錄鼢鼠的性別、年齡后解剖獲取部分肝臟組織,置于1.5 mL離心管中,先保存于液氮罐中,在實(shí)驗(yàn)室內(nèi)轉(zhuǎn)入-80 ℃超低溫冰箱中保存。
鼢鼠肝臟組織的總DNA用上海生工生物技術(shù)有限公司提供的試劑盒(Ezup柱式基因組DNA抽提試劑盒,批號(hào):12111677ZS)提取。操作過程中,將蛋白酶K的用量由原來的20 μL增加為40 μL,其他步驟不變。將提取好的DNA保存于-20 ℃的冰箱用于后續(xù)試驗(yàn)。
試驗(yàn)中SSR擴(kuò)增用10個(gè)核苷酸微衛(wèi)星位點(diǎn)的引物(ECTI5、ECTI6、ECTI8、ECTI10、ECTI21、ECTI22、ECTI23、ECTI33、 ECTI48、ECTI49)[14],這些位點(diǎn)在高原鼢鼠種群中具有多態(tài)性,可用于種群位點(diǎn)擴(kuò)增。PCR擴(kuò)增用熒光標(biāo)記的引物,分別用HEX(綠光)、FAM(藍(lán)光)和TAM(黃色)熒光基團(tuán)在5′端標(biāo)記合成熒光引物。
擴(kuò)增體系為25 μL:其中包括1 μL的模板,上下游引物各0.5 μL,dNTP 10 mmol/L 0.5 μL,Taq Buffer 2.5 μL,25 mmol/L MgCl22.0 μL,Taq 酶0.2 μL,ddH2O 17.8 μL。用GeneAmp的PCR擴(kuò)增系統(tǒng)9700,反應(yīng)循環(huán)包括95 ℃下3 min的預(yù)變性(聚合酶激活);接著是10個(gè)循環(huán)95 ℃ 下30 s的變性;在60 ℃下退火30 s,在72 ℃延伸30 s;20個(gè)循環(huán)在95 ℃ 下變性30 s, 在55 ℃退火30 s,在72 ℃延伸30 s;最終72 ℃溫度下再修復(fù)延伸6 min。PCR銀光標(biāo)記產(chǎn)物用毛細(xì)管電泳裝置ABIPRISM3130XL的Gene Scan 500 LIZ分析計(jì)算擴(kuò)增片段的大小。試驗(yàn)中引物擴(kuò)增以及微衛(wèi)星擴(kuò)增反應(yīng)委托上海生工生物工程有限公司完成。
圖1 高原鼢鼠采樣點(diǎn)地理分布Fig.1 Geographic distribution of plateau zokor sampling sites along the study area MYT,MYL, MYR, XNG, 分別代馬營灘、馬營河西邊、馬營河?xùn)|邊、下南泥溝種群。下同。MYT, MYL, MYR, XNG, replace Mayingtan, the west and east side of Maying river, Xianannigou population. The same below.
微衛(wèi)星屬共顯性遺傳,通過STR分型實(shí)驗(yàn)得到每一擴(kuò)增片段的具體大小。使用Popgene(Version 1.3)軟件GenAlex 6.4統(tǒng)計(jì)微衛(wèi)星基因座的等位基因數(shù)(observed number of alleles,Na)、有效等位基因數(shù)(effective number of alleles,Ne)、觀測雜合度(observed heterozygosity,Ho)、期望雜合度(expected heterozygosity,He)、遺傳相似系數(shù)(genetic similarity index,I)、種群間遺傳距離(genetic distance,Ds)、種群間近交系數(shù)(FST)、基因流(Nm)等遺傳分化系數(shù)及卡方檢驗(yàn)種群哈迪溫伯格平衡[15-17]。參照Botstein等[18]的方法計(jì)算多態(tài)信息含量(polymorphism information content,PIC)。利用 Structure和Distruct軟件對等位基因數(shù)據(jù)進(jìn)行遺傳結(jié)構(gòu)推導(dǎo)分析,確定種群類聚數(shù)K值[13]等。用Excel整理制作相關(guān)圖、表。
來自祁連山東段高寒草甸區(qū)4個(gè)采樣點(diǎn)的163個(gè)高原鼢鼠DNA樣品,在10個(gè)微衛(wèi)星位點(diǎn)上進(jìn)行基因分型,4個(gè)種群共獲得164個(gè)等位基因(Na),有效等位基因(Ne)為83.6。MYT、MYL、MYR、XNG種群的平均有效等位基因分別為1.79,1.66,2.17,2.75,平均觀測雜合度(Ho)分別為0.32,0.15,0.23,0.24,平均期望雜合度(He)分別為0.42,0.31,0.42,0.50,平均多態(tài)信息含量(PIC)分別為0.35,0.34,0.47,0.43。處于中等多態(tài)性水平(表1)。
表1 高原鼢鼠4個(gè)地理種群在10個(gè)微衛(wèi)星基因座的多樣性指數(shù)Table 1 The genetic diversity indices of 10 microsatellite loci for four plateau zokor populations
Ne:有效等位基因數(shù);He:期望雜合度;Ho:表觀雜合度;PIC:多態(tài)信息含量; -:無效數(shù)值。
Ne: Number of effective alleles;He: Expected heterozygosity;Ho: Observed heterozygosity;PIC: Polymorphism information content; -: Behalf invalid value.
基于最小Pearsonχ2估計(jì)的哈迪溫伯格平衡(Hardy-Weinberg equilibrium)檢驗(yàn)精確P值的無偏估測對各種群的多基因座檢測(multi-locus test)發(fā)現(xiàn),4個(gè)種群在10個(gè)位點(diǎn)上大多處于極顯著不平衡狀態(tài)(P<0.001)。MYT種群的位點(diǎn)ECTI16、ECTI48和ECTI49、MYL和MYR種群的位點(diǎn)ECTI48、XNG種群的位點(diǎn)ECTI8和ECTI21處于遺傳平衡狀態(tài)(P>0.05)。種群MYL的ECTI8 和ECTI22位點(diǎn)處的基因型單一(表2)。種群偏離哈迪溫伯格平衡,表明高原鼢鼠種群間自由交流具有一定的局限性,或近親交配現(xiàn)象嚴(yán)重。
表2 種群哈迪溫伯格平衡檢驗(yàn)(卡方檢驗(yàn) )Table 2 Hardy-Weinberg equilibrium testing (chi-square test) of plateau zokor populations
ns,無差異顯著性(P>0.05), **差異極顯著(P<0.01),***差異極顯著(P<0.001), -,單型。
ns mean no significant difference,P>0.05, ** mean very significant difference,P<0.01, *** mean extremely significant differences,P<0.001, -, monomorphic.
圖2 用Structure推導(dǎo)的4個(gè)高原鼢鼠種群遺傳結(jié)構(gòu)(K=2, 3, 4, 5)Fig.2 Structure analysis of 4 plateau zokor populations (K=2, 3, 4, 5)
依據(jù)貝葉斯群聚方法[19],利用Structure和Distruct軟件[20]對研究的4個(gè)鼢鼠種群10個(gè)微衛(wèi)星座位等位基因數(shù)據(jù)進(jìn)行遺傳結(jié)構(gòu)推導(dǎo)分析。結(jié)果如圖2所示,分別為當(dāng)遺傳聚類種群數(shù)K=2, 3, 4, 5時(shí)的遺傳結(jié)構(gòu)圖。根據(jù)K值對后驗(yàn)概率自然對數(shù)lnP(D)[21]所做的曲線圖(圖3)表明,在K=2時(shí),lnP(D)的值最大,隨后數(shù)值都較小。分析各種群的遺傳結(jié)構(gòu)可知,本研究中 4個(gè)高原鼢鼠種群被分為 2個(gè)分類簇,分別用紅、綠兩種顏色表示,如圖2所示。即當(dāng)K=2時(shí),4個(gè)種群被分成2組:MYT種群為一組,MYL、MYR、XNG種群聚在一起為一組。
同時(shí)參照 Evanno 等[22]的方法利用 Structure 軟件對來自 4個(gè)不同高原鼢鼠種群進(jìn)行貝葉斯聚類分析,聚類分類從K=1 到K=5,每個(gè)K重復(fù)運(yùn)行 10 次,每次進(jìn)行了 1000000 次馬爾科夫鏈蒙特卡羅重復(fù)搜索(MCMC),舍棄最初的 50000 次。根據(jù) ΔK方法(基于K的似然函數(shù)變動(dòng)率)計(jì)算最大可能性的K值,結(jié)果為K=2(圖4)。這一結(jié)果與根據(jù)K值對后驗(yàn)概率自然對數(shù)lnP(D)做曲線所得結(jié)果一致。
圖3 后驗(yàn)概率自然對數(shù)[ln P(D)]與遺傳聚類種群數(shù)(K)的關(guān)系Fig.3 Relationship of ln probability data [ln P(D)] and population clusters (K)
圖4 利用 Evanno K 方法繪制不同種群分類簇K值變動(dòng)Fig.4 The number of genetic clusters (K) by Delta K for different populations
用GenAlEx軟件進(jìn)行高原鼢鼠居群4個(gè)不同區(qū)域163個(gè)個(gè)體基于10對SSR引物的遺傳距離的主坐標(biāo)分析(PCoA),前2個(gè)極軸坐標(biāo)(Coordinate)分別解釋了高原鼢鼠種群整體遺傳變異的47.58%和8.20%。從圖 5 中可看到位于MYT樣地的個(gè)體聚為一組,而XNG、MYL、MYR三個(gè)樣地的個(gè)體傾向于聚為一組。得到類似的遺傳結(jié)構(gòu)。
圖5 基于遺傳距離的主坐標(biāo)分析(PCoA)Fig.5 Principal coordinate plot of genetic distance(PCoA)
以不同種群間的遺傳結(jié)構(gòu)分析結(jié)果為基礎(chǔ),結(jié)合近交系數(shù)(FST)與基因流(Nm)分析這4個(gè)不同地理種群間的遺傳分化情況。種群間無遺傳分化的標(biāo)準(zhǔn)值為FST=0~0.05[23],阻止種群間遺傳分化的基因流值標(biāo)準(zhǔn)是Nm>1。如表3所示,4個(gè)不同地理種群兩兩之間的FST值都大于0.05,種群間的基因流值都小于1。種群XNG和MYR之間的基因流最大(0.616),MYT和MYL之間的基因流最小(0.040)。XNG樣地與MYR、MYL樣地間的地理距離相當(dāng),但MYR和MYL樣地間存在天然河流,XNG與MYR間的遺傳分化程度(0.061)小于XNG與 MYL間的(0.120);并且河流兩側(cè)樣地MYR與MYL、MYT與MYL間遺傳分化程度分別為0.130、0.470。XNG與MYT樣地間存在公路,XNG與MYT 間的遺傳分化程度(0.339)大于XNG與 MYR間的(0.061)。綜上所述,天然河流和公路可能對種群擴(kuò)散有一定的阻礙作用,特殊棲息地環(huán)境影響種群與其他種群間的信息交流。
表3 4個(gè)高原鼢鼠種群的遺傳分化程度(FST,右上角)和基因流(Nm,左下角)Table 3 Fixation index resulting from comparing subpopulations to the total population (FST, above the diagonal) and gene flow (Nm, below the diagonal) populations
遺傳多樣性是生物固有的特性,是生物長期適應(yīng)與進(jìn)化的產(chǎn)物。每一生物的遺傳多樣性越豐富,對環(huán)境變化的適應(yīng)能力就越強(qiáng),就越容易擴(kuò)展其分布范圍和開拓新的環(huán)境[24]。等位基因數(shù)是種群遺傳多樣性分析的重要參數(shù)之一[25],本研究中高原鼢鼠種群共獲得164個(gè)等位基因,有效等位基因?yàn)?3.6。種群平均多態(tài)信息含量(PIC)為0.40,遺傳多態(tài)性處于中等水平,與蘇軍虎[26]的研究結(jié)果一致。棲息地破碎化及嚴(yán)重的近親繁殖,阻礙種群間基因流動(dòng),是物種遺傳多樣性水平降低主要原因。高原鼢鼠有獨(dú)特的生活方式,主要依靠挖掘地下洞道系統(tǒng)完成活動(dòng)、取食、擴(kuò)散等行為。高耗能的挖掘行為嚴(yán)重制約其長距離的遷移擴(kuò)散活動(dòng),使擴(kuò)散率低于地上活動(dòng)的動(dòng)物[27]。低的遷移能力使種群間的基因流受到限制,增加種群內(nèi)部近親繁殖的可能,最終使種群遺傳多樣性降低,產(chǎn)生明顯的種群遺傳結(jié)構(gòu)模式[28-30]。
對種群遺傳研究發(fā)現(xiàn)種群的遺傳隔離會(huì)有潛在的種的分化,嚴(yán)重的限制性基因流會(huì)導(dǎo)致種群分化[31]。高原鼢鼠種群進(jìn)行遺傳結(jié)構(gòu)推導(dǎo)分析中,在K=2時(shí),lnP(D)和ΔK的值都最大,4個(gè)種群被分成2組:MYT種群為一組,MYL、MYR和XNG種群聚在一起為一組。4個(gè)種群兩兩之間的FST值都大于0.05。種群MYT和MYL之間的遺傳分化程度較高(0.770),并且種群之間較小的基因流值(小于1)不能阻止其分化。種群遺傳學(xué)認(rèn)為空間距離、地理障礙等通常是阻礙基因交流、導(dǎo)致分化的重要因素[32]。XNG與MYR間的遺傳分化程度(0.061)小于XNG與MYL間的(0.120),并且種群XNG和MYR之間的基因流(0.616)大于XNG和MYL之間的(0.313)。MYL和MYR之間的距離不到200 m,中間有河流隔離。XNG與MYT 間的遺傳分化程度(0.339)大于XNG與MYR間的(0.061),XNG與MYT樣地間存在公路。表明在試驗(yàn)范圍內(nèi)特殊島狀棲息地限制了高原鼢鼠種群基因流,河流和公路對種群內(nèi)和種群間個(gè)體交流可能有阻礙作用。蔡振媛等[12]研究發(fā)現(xiàn)種群間遺傳分化中大約79.6%的變異可以由地理隔離解釋。唐利洲等[11]研究結(jié)果表明高原鼢鼠不同地理種群間存在嚴(yán)重限制性基因流。國外其他地下嚙齒動(dòng)物的研究結(jié)果表明地理距離是造成種群遺傳分化的主要原因[33],并且在整個(gè)種群擴(kuò)散過程中河流、裂谷、火山對其有阻礙作用[34-36]。除了MYL種群,MYT種群的多態(tài)信息含量、等位基因數(shù)、期望雜合度都比其他2個(gè)種群的要低。島狀地理環(huán)境限制該種群與外界的交流,增加種群內(nèi)部的個(gè)體交流的機(jī)會(huì),長久積累不利于增加種群遺傳多樣性,進(jìn)而減弱對環(huán)境變化的適應(yīng)能力[37]。
從遺傳學(xué)的角度分析高原鼢鼠遺傳多樣性、遺傳結(jié)構(gòu)特征及影響因素,種群遺傳多樣性處于中等水平,河流和公路對種群基因交流可能有阻礙作用。對高原鼢鼠來說,長期的特殊生存環(huán)境對整個(gè)種群的遺傳特征有較大影響,不利于適應(yīng)新的棲息環(huán)境。高原鼢鼠作為草原害鼠,嚴(yán)重破壞草地植被,控制其種群數(shù)量是草原保護(hù)工作的主要內(nèi)容之一。由于高原鼢鼠對新環(huán)境的適應(yīng)能力較差,可通過改變其棲息地環(huán)境達(dá)到減少種群數(shù)量的目的,有利于草地生態(tài)系統(tǒng)健康持續(xù)發(fā)展。
References:
[1] Sun H L, Zheng D, Yao T D,etal. Protection and construction of the national ecological security shelter zone on Tibetan Plateau. Journal of Geographical Sciences, 2012, 67(1): 3-12.
孫鴻烈, 鄭度, 姚檀棟, 等. 青藏高原國家生態(tài)安全屏障保護(hù)與建設(shè). 地理學(xué)報(bào), 2012, 67(1): 3-12.
[2] Zhou X R, Guo Z G, Guo X H. The role of plateau pika and plateau zokor in alpine meadow. Pratacultural Science, 2010, 27(5): 38-44.
周雪榮, 郭正剛, 郭興華. 高原鼠兔和高原鼢鼠在高寒草甸中的作用. 草業(yè)科學(xué), 2010, 27(5): 38-44.
[3] Fan N C, Wang Q Y, Zhou W Y,etal. The relationship between plateau zokor populations and vegetation damage. Essays of Alpine Meadow Ecosystem International Academic Discussion. Beijing: Science Press, 1988: 109-115.
樊乃昌, 王權(quán)業(yè), 周文揚(yáng), 等. 高原鼢鼠種群數(shù)量與植被破壞程度的關(guān)系. 高寒草甸生態(tài)系統(tǒng)國際學(xué)術(shù)討論文集. 北京: 科學(xué)出版社, 1988: 109-115.
[4] Smith A T, Foggin J M. The plateau pika (Ochotonacurzoniae) is a keystone species for biodiversity on the Tibetan plateau. Animal Conservation, 1999, (2): 235-240.
[5] Golley F B, Petrusewicz K, Ryszkowski L. Smallmam-mals: their productivity and population dynamics. International Biological Programme. England: Cambridge University Press, 1975: 1-23.
[6] Jones C G, Lawton J H, Shachak M. Organisms as ecosystem engineers. Oikos, 1994, 69: 373-386.
[7] Zhang F M, Ge S. Data analysis in population genetics I. analysis of RAPD data with AMOVA. Biodiversity Science, 2002, 10(4): 438-444.
張富民, 葛頌. 種群遺傳學(xué)研究中的數(shù)據(jù)處理方法Ⅰ.RAPD數(shù)據(jù)的AMOVA分析. 生物多樣性, 2002, 10(4): 438-444.
[8] Chen L Z. Biodiversity Situation and It’s Conservation Measure in China. Beijing: Science Press, 1993: 99-113.
陳靈芝. 中國的生物多樣性現(xiàn)狀及其保護(hù)對策. 北京: 科學(xué)出版社, 1993: 99-113.
[9] Hedrick P W. Genetics of Populations. 2nd ed. Massachusetts: Jones and Bartlett Publishers, 2000: 1-61.
[10] Zhang Y M, Liu J K. Effects of plateau zokor (Myospalaxfontanierii) on plant community and soil in an alpine meadow. Journal of Mammalogy, 2003, 84: 644-651.
[11] Tang L Z, Yu L, Wang J J,etal. Gene flows of eospalax baileyi geographical populations. Journal of Anhui Agricultural Sciences, 2010, (10): 5123-5124.
唐利洲, 于龍, 王俊杰, 等. 高原鼢鼠種群間基因流研究. 安徽農(nóng)業(yè)科學(xué), 2010, (10): 5123-5124.
[12] Cai Z Y, Zhang T Z, Ci H X,etal. Mitochondrial phylogeography and genetic diversity of plateau zokor (Myospalaxbaileyi). Acta Theriologica Sinica, 2007, 27(2): 130-137.
蔡振媛, 張同作, 慈海鑫, 等. 高原鼢鼠線粒體譜系地理學(xué)和遺傳多樣性. 獸類學(xué)報(bào), 2007, 27(2): 130-137.
[13] Mora M S, Mapelli F J, Gaggiotti O E,etal. Dispersal and population structure at different spatial scales in the subterranean rodent (Ctenomysaustralis). BMC Genetics, 2010, 11(9): 1-14.
[14] Su J H, Ji W H, Howitt R,etal. Novel microsatellite markers obtained from Gansu zokor (Eospalaxcansus) and cross-species amplification in Plateau zokor (Eospalaxbaileyi). Biochemical Systematics and Ecology, 2014, 57: 128-132.
[15] Yeh F C, Boyle T. POPGENE version 1.3-Microsoft Windows-based freeware for population genetic analysis. [2016-06-24]. https://sites.ualberta.ca/~fyeh/popgene.pdf. html.
[16] Piggott M P, Banks S C, Taylor A C. Population structure of brush-tailed rock-wallaby (Petrogalepenicillata) colonies inferred from analysis of faecal DNA. Molecular Ecology, 2006, 15(1): 93-105.
[17] Favre L, Balloux F, Goudet J,etal. Female-biased dispersal in the monogamous mammalCrocidurarussula: evidence from field data and microsatellite patterns. Biological Sciences, 1997, 264(1): 127-132.
[18] Botstein D, White R L, Skolnick M. Construction of a genetic linkage map in man using restriction fragment length polymorphism. American Journal of Human Genetics, 1980, 32(3): 314-331.
[19] Falush D, Stephens M, Pritchard J K. Inference of population structure using multilocus genotype data: linked loci and correlated allele frequencies. Genetics, 2003, 164(4): 1567-1587.
[20] Rosenberg N A. Distruct: a program for the graphical display of population structure. Molecular Ecology Notes, 2004, 4: 137-138.
[21] Rossiter S J, Benda P, Dietz C,etal. Rangewide phylogeography in the greater horseshoe bat inferred from microsatellites: implications for population history, taxonomy and conservation. Molecular Ecology, 2007, 16(22): 4699-4714.
[22] Evanno G, Regnaut S, Goudet J. Detecting the number of clusters of individuals using the software STRUCTURE: a simulation study. Molecular Ecology, 2005, 14(8): 2611-2620.
[23] Wright. Evolution and the Genetics of Populations. America: University of Chicago Press, 1978.
[24] Jie X M, Yun J F. Genetic diversity and detective methods of plant. Grassland of China, 2000, (6): 51-59.
解新明, 云錦鳳. 植物遺傳多樣性及其檢測方法. 中國草地, 2000, (6): 51-59.
[25] Masatoshi N, Sudhir K. Molecular Evolution and Phylogeny. Lv B Z, Zhong Y, Gao L P, translate. Beijing: Higher Education Press, 2002: 204-207.
Masatoshi N, Sudhir K. 分子進(jìn)化與系統(tǒng)發(fā)育. 呂寶忠, 鐘揚(yáng), 高莉萍, 譯. 北京: 高等教育出版社, 2002: 204-207.
[26] Su J H. Study on Population Genetic Structure of Two Kinds of Typical Native Animals in the Eastern Qinghai-Tibetan Plateau. Lanzhou: Agricultural University, 2014.
蘇軍虎. 青藏高原東緣兩類典型土著動(dòng)物種群遺傳結(jié)構(gòu)分析. 蘭州: 甘肅農(nóng)業(yè)大學(xué), 2014.
[27] Wei W H, Wang Q Y, Zhou W Y,etal. The population dynamics and dispersal of plateau zokor after removing. Acta Theriologica Sinica, 1997, 17(1): 53-61.
魏萬紅, 王權(quán)業(yè), 周文揚(yáng), 等. 滅鼠干擾后高原鼢鼠的種群動(dòng)態(tài)與擴(kuò)散. 獸類學(xué)報(bào), 1997, 17(1): 53-61.
[28] Duffy J E. Genetic population structure in two tropical sponge-dwelling shrimps that differ in dispersal potential. Marine Biology, 1993, 116(3): 459-470.
[29] Duran S, Palacín C, Becerro M A,etal. Genetic diversity and population structure of the commercially harvested sea urchinParacentrotuslividus(Echinodermata,Echinoidea). Molecular Ecology, 2004, 13(11): 3317-3328.
[30] Duran S, Pascual M, Estoup A,etal. Strong population structure in the marine sponge Crambe crambe (Poecilosclerida) as revealed by microsatellite markers. Molecular Ecology, 2004, 13(3): 511-522.
[31] Quan Y C, Li D Y, Cao D C,etal. Population genetic variation and structure analysis on five populations of mirror carpCyprinuscarpioL. using microsatellites. Hereditas, 2006, 28(12): 1541-1548.
全迎春, 李大宇, 曹鼎辰, 等. 微衛(wèi)星DNA標(biāo)記探討鏡鯉的種群結(jié)構(gòu)與遺傳變異. 遺傳, 2006, 28(12): 1541-1548.
[32] Hewitt G M. Genetic consequences of climatic oscillations in the Quaternary. Philosophical Transactions of the Royal Society of London Series B: Biological Sciences, 2004, 359: 183-195.
[33] Mora M S, Cutrera A P, Lessa E P,etal. Phylogeography and population genetic structure of the Talas tuco-tuco (Ctenomystalarum): integrating demographic and habitat histories. Journal of Mammalogy, 2013, 94(2): 459-476.
[34] Van Daele P, Verheyen E, Corkery I,etal. Trends in skull morphology in relation to differential molecular evolution in African mole-rats of the chromosomally hyperdivers genusFukomys(Bathyergidae, Rodentia) from the Zambezian region. Italian Journal of Mammalogy, 2006, (Suppl 1): 143.
[35] Brown G G, Gadaleta G, Pepe G,etal. Structural conservation and variation in the D-loop-containing region of vertebrate mitochondrial DNA. Journal of Molecular Biology, 1986, 192(3): 503-511.
[36] Jianping S U. Energy cost of foraging and optimal foraging in the fossorial rodent (MyospalaxbaileyI). Acta Theriologica Sinica, 1992, 2: 4.
[37] Huenneke L F. Ecological implications of genetic variation in plant populations//Falk D A, Holsinger K E. Genetics and Conservation of Rare Plants. New York: Oxford University Press, 1991: 31-44.