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    油茶籽粕發(fā)酵制備乙醇的研究

    2018-01-19 07:52:24聶斌英劉紅民宜春學(xué)院化學(xué)與生物工程學(xué)院江西宜春336000
    中國(guó)油脂 2017年12期
    關(guān)鍵詞:油茶籽氯化銨酵母

    聶斌英,劉紅民 (宜春學(xué)院 化學(xué)與生物工程學(xué)院,江西 宜春 336000)

    乙醇被廣泛應(yīng)用于國(guó)民生活的各個(gè)方面:食品方面被用作各種酒的配制原料;化工方面是許多化工產(chǎn)品不可缺少的基礎(chǔ)原料和溶劑;醫(yī)藥和醫(yī)療方面可用于提取、配制各種醫(yī)藥制劑和消毒液。近年來(lái),由于石油等能源的大量消耗以及工業(yè)的不斷發(fā)展導(dǎo)致對(duì)能源的需求日益增加,乙醇作為清潔、安全、環(huán)保的再生能源被用于燃料及石油添加劑。

    傳統(tǒng)的乙醇生產(chǎn)是以農(nóng)作物(大米、玉米、紅薯等)為原料。但隨著國(guó)家糧食價(jià)格的不斷放寬,乙醇發(fā)酵成本劇增。所以尋求廉價(jià)的、能取代農(nóng)作物發(fā)酵乙醇的原料成為當(dāng)務(wù)之急。

    油茶籽粕中蛋白質(zhì)和糖類的含量在40%~50%。茶籽多糖主要由6種單糖組成,即木糖、葡萄糖、甘露糖、半乳糖、鼠李糖、阿拉伯糖,蛋白質(zhì)和糖類物質(zhì)是生物轉(zhuǎn)化生產(chǎn)乙醇的優(yōu)質(zhì)原料。油茶籽粕中的多糖類以及粗纖維能夠被微生物發(fā)酵生成還原糖,為油茶籽粕生物發(fā)酵生產(chǎn)生物能源乙醇提供了物質(zhì)基礎(chǔ)[1]。因此,如何有效地利用油茶籽粕中的多糖、纖維素與半纖維素轉(zhuǎn)換為還原糖,再進(jìn)一步發(fā)酵為乙醇,是油茶籽綜合開(kāi)發(fā)利用研究的又一課題。

    本文以油茶籽粕為原料,將其粉碎后經(jīng)酸-菌-酶綜合處理后將其中的木質(zhì)纖維、纖維素、半纖維等物質(zhì)轉(zhuǎn)換為還原糖,得到水解液。再用氫氧化鈣進(jìn)行澄清處理,去除糠醛等發(fā)酵抑制劑。向水解液中接種酵母[2]后通過(guò)單因素實(shí)驗(yàn),控制酵母接種量、pH、氯化銨添加量、鈣鎂離子比的變化,28℃下發(fā)酵48 h,以乙醇得率為指標(biāo)確定各變量范圍,排除影響較小的因素pH,最后通過(guò)響應(yīng)面法進(jìn)行實(shí)驗(yàn),得到最佳發(fā)酵條件。

    1 材料與方法

    1.1 實(shí)驗(yàn)材料

    1.1.1 原料與試劑

    油茶籽粕,宜春青龍高科有限公司;黃孢原毛平革菌,廣東省微生物菌種保藏中心;酵母,安琪酵母股份有限公司;纖維素酶(100 000 U/g),和氏璧生物科技有限公司。

    無(wú)水乙醇、濃硫酸、重鉻酸鉀、酒石酸鉀鈉、3,5-二硝基水楊酸、氫氧化鈉、苯酚、無(wú)水亞硫酸鈉、氯化鈣、氯化鎂、氯化銨等均為分析純。

    1.1.2 儀器與設(shè)備

    BS-223S電子天平,北京賽多利斯儀器系統(tǒng)有限公司;LRO數(shù)顯恒溫水浴鍋,國(guó)華電器有限公司;ZHWY-2102C恒溫?fù)u床,上海科導(dǎo)超聲儀器有限公司;SW-CJ-ZD超凈工作臺(tái),蘇州蘇杰凈化設(shè)備有限公司;LX-B35L高壓蒸汽滅菌鍋,上海三中醫(yī)療器材有限公司;UV-2800AH紫外可見(jiàn)分光光度計(jì),上海天普分析儀器有限公司;SPX-250BS-II恒溫培養(yǎng)箱,上海新藥醫(yī)療器械制造有限公司。

    1.2 實(shí)驗(yàn)方法

    1.2.1 油茶籽粕酸-菌-酶預(yù)處理

    油茶籽粕粉碎后,稱取20 g進(jìn)行酸處理:以1∶10 的固液比加入2%的硫酸溶液后在100℃下處理120 min。后將pH調(diào)到6.0,再經(jīng)高壓蒸汽滅菌鍋滅菌后接種2%的黃孢原毛平革菌,在恒溫?fù)u床培養(yǎng)4 d,溫度26℃,pH 6.0,轉(zhuǎn)速150 r/min。菌處理完之后,將樣品取出進(jìn)行滅菌,然后加入1%的纖維素酶,進(jìn)行酶處理,溫度50℃,pH 5.0,時(shí)間10 min[3]。

    1.2.2 去除抑制劑

    將樣品過(guò)濾后往濾液中加入2 g氫氧化鈣,與樣液快速充分?jǐn)嚢杌旌?,將pH調(diào)到10.0,靜置1 h后過(guò)濾,再用濃硫酸酸化將pH調(diào)到5.5,靜置1 d后再次過(guò)濾[4]。

    1.2.3 發(fā)酵制備乙醇

    調(diào)節(jié)水解液發(fā)酵初始pH,按一定的鈣鎂離子比添加氧化鈣和氯化鎂,添加一定量的氯化銨并接種酵母,于恒溫?fù)u床厭氧發(fā)酵3 d,溫度28℃,轉(zhuǎn)速130 r/min[5]。

    1.2.4 分析方法

    發(fā)酵前樣液中總還原糖及發(fā)酵后殘?zhí)峭ㄟ^(guò)DNS法測(cè)定。分別取葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)溶液(1 mg/mL)0、0.5、1.0、1.5、2.0、2.5 mL于15 mL比色管中,用蒸餾水補(bǔ)足至10 mL,分別加入DNS試劑2.0 mL,沸水浴加熱2 min,流水冷卻,用蒸餾水補(bǔ)足到15 mL,在520 nm波長(zhǎng)下測(cè)定吸光度,繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線,得出回歸方程。再將樣品取1.0 mL于15 mL比色管中,與葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)溶液做同樣處理,在520 nm波長(zhǎng)下測(cè)定吸光度,將吸光度代入回歸方程中,得到還原糖的含量[6]。

    乙醇含量的測(cè)定通過(guò)重鉻酸鉀氧化分光光度法測(cè)定。分別取乙醇標(biāo)準(zhǔn)溶液(2 mg/mL)0、0.3、0.6、0.9、1.2、1.5 mL于10 mL比色管中,分別加入5.0%重鉻酸鉀溶液(5 g重鉻酸鉀溶于50 mL蒸餾水中,加入10 mL濃硫酸,加水至100 mL)2.0 mL,加水至10 mL,沸水浴加熱10 min,流水冷卻5 min,在600 nm波長(zhǎng)下測(cè)定吸光度,繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線,得出回歸方程。取1.0 mL樣品于10 mL比色管中,與乙醇標(biāo)準(zhǔn)溶液做同樣處理,在600 nm波長(zhǎng)下測(cè)定吸光度,將吸光度代入回歸方程中,得到乙醇的含量[7]。

    乙醇得率按下式計(jì)算。

    式中:R1為乙醇得率,%;M為實(shí)驗(yàn)測(cè)得乙醇量,mg;T為總還原糖量,mg;C為殘?zhí)橇?,mg。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 單因素實(shí)驗(yàn)

    2.1.1 發(fā)酵初始pH對(duì)發(fā)酵的影響

    在發(fā)酵初始pH分別為3.0、4.0、5.0、6.0、7.0,鈣鎂離子比為1∶1,氯化銨添加量為0.75%,酵母接種量為0.4%條件下,考察發(fā)酵初始pH對(duì)發(fā)酵的影響,結(jié)果見(jiàn)圖1。

    圖1 發(fā)酵初始pH對(duì)乙醇得率的影響

    發(fā)酵初始pH對(duì)酵母的生長(zhǎng)及發(fā)酵產(chǎn)乙醇能力有一定的影響。酵母一般在弱酸條件下生長(zhǎng)。當(dāng)發(fā)酵初始pH過(guò)低時(shí),影響酵母細(xì)胞膜的帶電狀態(tài),改變細(xì)胞膜的通透性,影響酵母對(duì)營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)的吸收以及代謝廢物的排放,從而影響細(xì)胞的生長(zhǎng)代謝[8]。當(dāng)發(fā)酵初始pH過(guò)高時(shí),增加了發(fā)酵液染菌的可能性。由圖1可知,隨著發(fā)酵初始pH的增加,乙醇得率先增后降,pH 5.0后乙醇得率的變化不明顯,因此可認(rèn)為發(fā)酵初始pH對(duì)乙醇得率的影響并不大。

    2.1.2 鈣鎂離子比對(duì)發(fā)酵的影響

    在發(fā)酵初始pH為5.0,鈣鎂離子比分別為0.1∶1、1∶1、2∶1、3∶1、4∶1,氯化銨添加量為0.75%,酵母接種量為0.4%條件下,考察鈣鎂離子比對(duì)發(fā)酵的影響,結(jié)果見(jiàn)圖2。

    圖2 鈣鎂離子比對(duì)乙醇得率的影響

    在活細(xì)胞的生長(zhǎng)代謝過(guò)程中,鈣離子和鎂離子都是重要金屬離子,鈣離子對(duì)細(xì)胞骨架有著重要的調(diào)控作用[8]。鎂離子可通過(guò)細(xì)胞分裂周期的影響間接影響酵母的生長(zhǎng)代謝,同時(shí)鎂離子還參與多種物質(zhì)的變化,可促進(jìn)酵母的發(fā)酵能力[9]。目前,國(guó)內(nèi)外已有很多酒廠在酵母發(fā)酵過(guò)程中添加鈣鎂離子,以提高發(fā)酵效率。但是鈣離子的存在會(huì)對(duì)鎂離子有拮抗作用,從而對(duì)發(fā)酵產(chǎn)生抑制作用,因此在酵母發(fā)酵過(guò)程中,必須控制合適的鈣鎂離子比。由圖2可知,隨著鈣鎂離子比的增大,乙醇得率先增后降,鈣鎂離子比在1∶1時(shí),乙醇得率最高。

    2.1.3 氯化銨添加量對(duì)發(fā)酵的影響

    在發(fā)酵初始pH為5.0,鈣鎂離子比為1∶1,氯化銨添加量分別為0.25%、0.50%、0.75%、1.00%、1.25%,酵母接種量為0.4%條件下,考察氯化銨添加量對(duì)發(fā)酵的影響,結(jié)果見(jiàn)圖3。

    圖3 氯化銨添加量對(duì)乙醇得率的影響

    氮源是酵母合成核糖和蛋白質(zhì)等含氮物質(zhì)的重要原料,油茶籽粕中氮含量較低,適當(dāng)改善發(fā)酵液的營(yíng)養(yǎng)成分,可以對(duì)酵母發(fā)酵起到促進(jìn)作用。氮源的添加可以是無(wú)機(jī)氮如銨鹽和尿素等,也可以是有機(jī)氮源如酸性蛋白酶[10]。 由圖3可知,在氯化銨添加量為0.25%~0.75%范圍內(nèi),乙醇得率增加,在氯化銨添加量大于0.75%時(shí),乙醇得率的變化不明顯。

    2.1.4 酵母接種量對(duì)發(fā)酵的影響

    在發(fā)酵初始pH為5.0,鈣鎂離子比為1∶1,氯化銨添加量為0.75%,酵母接種量分別為0.2%、0.3%、0.4%、0.5%、0.6%條件下,考察酵母接種量對(duì)發(fā)酵的影響,結(jié)果見(jiàn)圖4。

    圖4 酵母接種量對(duì)乙醇得率的影響

    酵母接種量對(duì)酵母發(fā)酵產(chǎn)乙醇的能力有很大影響,當(dāng)酵母接種量過(guò)少時(shí),導(dǎo)致發(fā)酵空間利用率不足,造成營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)的浪費(fèi),發(fā)酵能力也不足,從而降低乙醇得率。酵母接種量過(guò)大時(shí),空間不足,營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)也不足,從而酵母之間競(jìng)爭(zhēng)空間和營(yíng)養(yǎng),產(chǎn)生競(jìng)爭(zhēng)性抑制,也會(huì)降低乙醇得率。由圖4可知,隨著酵母接種量的增加,乙醇得率先增后降,在酵母接種量為0.4%時(shí),乙醇得率最高。

    2.2 響應(yīng)面實(shí)驗(yàn)優(yōu)化

    通過(guò)單因素實(shí)驗(yàn)結(jié)果,以乙醇得率(R1)為響應(yīng)值,固定發(fā)酵初始pH 5.0,以鈣鎂離子比(X1),氯化銨添加量(X2),酵母接種量(X3)為自變量,根據(jù)Box-Behnken中心組合實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)原理進(jìn)行實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì),響應(yīng)面因素水平編碼見(jiàn)表1,響應(yīng)面設(shè)計(jì)及結(jié)果見(jiàn)表2,方差分析見(jiàn)表3。

    表1 響應(yīng)面因素水平編碼

    表2 響應(yīng)面設(shè)計(jì)及結(jié)果

    表3 方差分析

    注:P<0.05高度顯著,P<0.1顯著。

    對(duì)擬合方程進(jìn)行一階偏導(dǎo),得出3個(gè)因素的極值點(diǎn),分別為鈣鎂離子比0.87∶1、氯化銨添加量0.76%、酵母接種量0.40%;此時(shí)得到乙醇得率為95.4%。為了便于實(shí)驗(yàn)操作,將實(shí)驗(yàn)條件修正為鈣鎂離子比0.90∶1、氯化銨添加量0.75%、酵母接種量0.40%,在此條件下進(jìn)行3組平行實(shí)驗(yàn),得到乙醇得率的平均值為94.3%,與預(yù)測(cè)值相對(duì)偏差為1.15%。

    3 結(jié) 論

    適度發(fā)展廢物再利用,是解決環(huán)境污染、能源浪費(fèi)、緩解能源危機(jī)的有效途徑。本文通過(guò)單因素實(shí)驗(yàn)確定鈣鎂離子比、氯化銨添加量、酵母接種量這3個(gè)主要影響因素的最適范圍,通過(guò)響應(yīng)面法,建立乙醇得率對(duì)鈣鎂離子比、氯化銨添加量、酵母接種量的回歸模型。確定了油茶籽粕中還原糖發(fā)酵產(chǎn)乙醇的最佳工藝條件為:發(fā)酵初始pH 5.0,鈣鎂離子比0.90∶1,氯化銨添加量0.75%,酵母接種量0.40%。在最佳工藝條件下,乙醇得率為94.3%。

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