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    缺氧對(duì)成牙骨質(zhì)細(xì)胞增殖、凋亡及缺氧相關(guān)基因的影響

    2015-06-23 09:51:53韓紅娟任小華
    實(shí)用醫(yī)院臨床雜志 2015年1期
    關(guān)鍵詞:牙骨質(zhì)成骨細(xì)胞引物

    吳 浩,韓紅娟,任小華,梁 琳

    (四川省醫(yī)學(xué)科學(xué)院·四川省人民醫(yī)院 a.口腔科,b.藥學(xué)部,四川 成都 610072)

    缺氧對(duì)成牙骨質(zhì)細(xì)胞增殖、凋亡及缺氧相關(guān)基因的影響

    吳 浩a,韓紅娟a,任小華a,梁 琳b

    (四川省醫(yī)學(xué)科學(xué)院·四川省人民醫(yī)院 a.口腔科,b.藥學(xué)部,四川 成都 610072)

    目的 探討不同時(shí)間缺氧微環(huán)境對(duì)成牙骨質(zhì)樣細(xì)胞OCCM-30增殖、凋亡及缺氧相關(guān)基因的影響,了解缺氧在正畸導(dǎo)致的牙骨質(zhì)吸收中所起的作用。方法 利用三氣培養(yǎng)箱構(gòu)建細(xì)胞缺氧模型,以常氧條件培養(yǎng)為對(duì)照組,利用MTT法測(cè)定細(xì)胞增殖率,流式細(xì)胞術(shù)檢測(cè)細(xì)胞凋亡率,RT-PCR檢測(cè)HIF-1α、VEGF mRNA等相關(guān)基因的表達(dá)變化。結(jié)果 缺氧可以抑制OCCM-30細(xì)胞的增殖,明顯提高細(xì)胞的凋亡率,并能顯著誘導(dǎo)HIF-1α和VEGF mRNA基因的表達(dá),HIF-1αmRNA的表達(dá)水平在24 h達(dá)到頂峰后進(jìn)入平臺(tái)期;而VEGF mRNA的表達(dá)水平在36 h后開(kāi)始逐步上調(diào)。結(jié)論 缺氧微環(huán)境能抑制OCCM-30細(xì)胞增殖,促進(jìn)調(diào)亡及缺氧相關(guān)基因的表達(dá)。

    缺氧;成牙骨質(zhì)樣細(xì)胞;OCCM-30;增殖;HIF-1α

    正畸矯治過(guò)程中,施加于牙齒上的矯治力使牙周組織產(chǎn)生相應(yīng)的組織改建,從而使牙齒移動(dòng)。機(jī)械張/壓應(yīng)力和氧分壓的下降是牙周系統(tǒng)在正畸矯治過(guò)程中受到的主要外界刺激,以前的研究大多關(guān)注機(jī)械張/壓應(yīng)力對(duì)其相關(guān)功能的調(diào)節(jié)。相關(guān)研究表明,缺氧微環(huán)境對(duì)成骨細(xì)胞和破骨細(xì)胞的功能均有很大的影響[1]。正畸能導(dǎo)致牙周血管變化,在牙周形成局部缺氧環(huán)境,正畸牙周改建中也起著同樣重要的作用。本文擬對(duì)缺氧環(huán)境對(duì)成牙骨質(zhì)細(xì)胞增殖、凋亡及缺氧相關(guān)基因的影響作初步的探討,為正畸臨床提供理論基礎(chǔ)。

    1 對(duì)象與方法

    1.1 研究對(duì)象 本實(shí)驗(yàn)所使用的細(xì)胞為美國(guó)華盛頓大學(xué)Somerman教授實(shí)驗(yàn)室提供的成牙骨質(zhì)樣細(xì)胞株OCCM-30。相關(guān)研究表明,OCCM-30細(xì)胞的主要性能完全符合成牙骨質(zhì)細(xì)胞功能特點(diǎn),是成熟、穩(wěn)定的成牙骨質(zhì)細(xì)胞株體系,能作為研究成牙骨質(zhì)細(xì)胞相關(guān)調(diào)控功能的模型[2]。

    1.2 研究方法

    1.2.1 細(xì)胞缺氧 采用德國(guó)Binder三氣培養(yǎng)箱,通過(guò)控制N2的輸入量,用傳感器來(lái)實(shí)現(xiàn)對(duì)O2濃度的實(shí)時(shí)精確控制。將細(xì)胞按1×105個(gè)/毫升接種于中號(hào)培養(yǎng)瓶(50 ml)內(nèi),每瓶2 ml,鏡下觀察細(xì)胞大部分貼壁后(約12 h),將培養(yǎng)瓶轉(zhuǎn)移至三氣缺氧箱內(nèi),當(dāng)氧氣濃度降至預(yù)設(shè)濃度時(shí)(大約1~2小時(shí)),開(kāi)始計(jì)時(shí)。缺氧組條件設(shè)置:2%O2、5%CO2、93%N2;對(duì)照組培養(yǎng)條件:20%O2、5%CO2、75%N2(細(xì)胞正常培養(yǎng)條件)。檢測(cè)時(shí)間點(diǎn):0、6、12、24、36、48、72 h。缺氧完成后按檢測(cè)手段分別收集細(xì)胞。

    1.2.2 MTT法測(cè)定細(xì)胞增殖率 按時(shí)間點(diǎn)收集細(xì)胞,調(diào)節(jié)細(xì)胞濃度為1×104個(gè)/毫升,于96孔板每孔加入200 μl,一段時(shí)間后每孔加入20 μl MTT溶液,繼續(xù)孵育4小時(shí)后吸棄液體,每孔加入DMSO 200 μl,震蕩15分鐘,在酶聯(lián)免疫檢測(cè)儀上選擇570 nm波長(zhǎng),設(shè)立不含任何細(xì)胞的空白對(duì)照孔調(diào)零,測(cè)定每孔的光密度值(OD值)。

    1.2.3 流式細(xì)胞儀檢測(cè)細(xì)胞凋亡 收集缺氧干預(yù)后的細(xì)胞,75%酒精調(diào)整細(xì)胞密度,在4 ℃環(huán)境下固定24小時(shí)。制作碘化吡啶(PI)溶液:將PI溶于中性PBS中,并調(diào)整終濃度為100 μg/ml,4 ℃冰箱中棕色瓶避光保存。將固定好的細(xì)胞離心5分鐘后棄去液體,PBS重懸5分鐘,400目濾網(wǎng)過(guò)濾1次除雜質(zhì),4 ℃冰箱中避光30分鐘,流式細(xì)胞儀檢測(cè)并進(jìn)行分析。

    1.2.4 RT-PCR檢測(cè)HIF-1α、VEGF mRNA的表達(dá)

    引物由寶生物公司代為合成及測(cè)試。HIF-1α 正向引物:5'-TGCTCATCAGTTGCCACTTCC-3',反向引物:5'-CGCTGTGTGTTTTGTTCTTTACCC-3'。VEGF 正向引物:5'-CGACAGAAGGGGAGCAGAAAG-3',反向引物:5'-GCAAGTACGTTCGTTTAACTC-3'。GAPDH正向引物:5'-GAGAGGAGAAGAAGCTTTACAC-3',反向引物:5'-CCAAGCAATTCCAATGAA-3'。逆轉(zhuǎn)錄條件:37 ℃ 15分鐘,85 ℃ 5秒,逆轉(zhuǎn)錄得到模板cDNA。熒光定量PCR檢測(cè)HIF-1α、VEGF mRNA基因的表達(dá)。PCR反應(yīng)體系總體積20 μl,包括PCR正向、反向引物各0.8 μl,SYBR Premix Ex Taq 10 μl,ROX Reference Dye(50×) 0.4 μl,ddH2O 6 μl,DNA 模板 2 μl。設(shè)置好反應(yīng)條件后,計(jì)算機(jī)系統(tǒng)自動(dòng)控制反應(yīng)并實(shí)時(shí)檢測(cè),繪制擴(kuò)增曲線并分析。運(yùn)用△Ct 法來(lái)評(píng)價(jià)實(shí)驗(yàn)結(jié)果,具體方法如下:①根據(jù)每個(gè)樣本的各個(gè)基因的Ct值來(lái)計(jì)算其△Ct 值:△Ct = Ct 目的基因-Ct GAPDH;②根據(jù)步驟①計(jì)算所得△Ct 值計(jì)算相對(duì)于對(duì)照組的△△Ct值:△△Ct =△Ct 實(shí)驗(yàn)組-△Ct 對(duì)照組;③計(jì)算2-△△Ct 的數(shù)值,即為實(shí)驗(yàn)組樣本的目的基因相對(duì)于對(duì)照組樣本的目的基因變化的倍數(shù)。

    1.3 統(tǒng)計(jì)學(xué)方法 數(shù)據(jù)分析采用Excel 2003 version軟件進(jìn)行。計(jì)量資料以均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差表示。采用SNK法、單因素方差分析法(ANOVA)進(jìn)行相關(guān)比較,P< 0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

    2 結(jié)果

    2.1 OCCM-30細(xì)胞缺氧后增殖情況(圖1) MTT分析法結(jié)果顯示,其OD 570 nm值和對(duì)照組相比差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義,提示缺氧可以抑制OCCM-30細(xì)胞的增殖,并且隨著缺氧時(shí)間的延長(zhǎng),缺氧抑制OCCM-30細(xì)胞增殖的作用越明顯。

    2.2 OCCM-30細(xì)胞后凋亡情況(圖2) 流式細(xì)胞術(shù)檢測(cè)表明,缺氧可明顯提高OCCM-30細(xì)胞的凋亡率,而且隨缺氧時(shí)間的延長(zhǎng),OCCM-30細(xì)胞凋亡率逐漸增加。正常培養(yǎng)的各對(duì)照組中細(xì)胞的凋亡率均為(1.52±0.12)%。

    2.3 OCCM-30細(xì)胞中HIF-1α mRNA的表達(dá)變化 隨著缺氧的進(jìn)行,HIF-1α mRNA的表達(dá)逐步上調(diào),在24小時(shí)達(dá)到頂峰,進(jìn)入平臺(tái)期,從24小時(shí)起至72小時(shí),HIF-1α mRNA的表達(dá)水平無(wú)明顯差異(P> 0.05),見(jiàn)圖3。

    圖1 OCCM-30細(xì)胞缺氧后增殖情況 與空白對(duì)照組比較:*P < 0.05,**P < 0.01

    圖2 OCCM-30細(xì)胞缺氧后凋亡情況 與對(duì)照組比較:*P < 0.05,**P < 0.01

    圖3 OCCM-30細(xì)胞缺氧后HIF-1α mRNA的表達(dá)變化 與對(duì)照組比較:*P < 0.05,**P < 0.01

    2.4 OCCM-30細(xì)胞中VEGF mRNA的表達(dá)變化

    細(xì)胞缺氧后6 h組、12 h組、24 h組VEGF mRNA的表達(dá)水平?jīng)]有顯著變化(P> 0.05),從36 h組開(kāi)始,表達(dá)水平逐步上調(diào),與對(duì)照組相比差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P< 0.05),見(jiàn)圖4。

    3 討論

    Steinbrech等[3]研究表明,缺氧能顯著抑制體外培養(yǎng)的成骨細(xì)胞的增殖活性。本實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示,缺氧明顯抑制OCCM-30細(xì)胞的增殖,并且具有明顯的時(shí)間依賴性,隨著缺氧時(shí)間的延長(zhǎng),這種抑制作用越明顯,與大多數(shù)研究結(jié)果一致。但有研究學(xué)者也認(rèn)為,缺氧既有促進(jìn)細(xì)胞增殖的作用,也有抑制效應(yīng),Piret等[4]則認(rèn)為缺氧的具體效應(yīng)與細(xì)胞的種類、缺氧程度密切相關(guān)。缺氧微環(huán)境對(duì)細(xì)胞增殖的調(diào)控是通過(guò)細(xì)胞分裂周期、細(xì)胞代謝相關(guān)蛋白的調(diào)節(jié)來(lái)實(shí)現(xiàn)的,但具體機(jī)制仍待進(jìn)一步研究。

    圖4 OCCM-30細(xì)胞缺氧后VEGF mRNA的表達(dá)變化

    本實(shí)驗(yàn)中對(duì)照組細(xì)胞的凋亡率為1.52%,與文獻(xiàn)報(bào)道的體外培養(yǎng)細(xì)胞的正常凋亡率基本一致,反應(yīng)細(xì)胞正常的更替。細(xì)胞缺氧后6 h,凋亡率高于對(duì)照組,但無(wú)明顯差別,在12 h后,細(xì)胞凋亡率逐步上升,且差異均具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義,說(shuō)明缺氧能顯著提高OCCM-30細(xì)胞的凋亡率。在正畸矯治過(guò)程中,成牙骨質(zhì)細(xì)胞受到了機(jī)械矯治力和缺氧微環(huán)境的共同作用,細(xì)胞凋亡程序啟動(dòng),加速了細(xì)胞凋亡,影響到牙骨質(zhì)受損后的修復(fù)。

    Akeno等的研究表明[5],HIF-1α在細(xì)胞缺氧特異性應(yīng)答的過(guò)程中發(fā)揮了調(diào)控作用,被認(rèn)為是缺氧環(huán)境與細(xì)胞功能變化間的橋梁,是細(xì)胞缺氧后一系列變化的啟動(dòng)因子,接受HIF-1α調(diào)控的下游基因在其增強(qiáng)子或者啟動(dòng)子結(jié)構(gòu)中具備一個(gè)或多個(gè)能與HIF-1α連接位點(diǎn)[6]。本實(shí)驗(yàn)研究顯示,缺氧能顯著誘導(dǎo)HIF-1α mRNA的表達(dá),在缺氧6小時(shí)后,HIF-1α mRNA的表達(dá)量相比對(duì)照組即有明顯的提高,并隨著缺氧時(shí)間的延長(zhǎng)表達(dá)逐步上調(diào),在24小時(shí)達(dá)到頂峰,進(jìn)入平臺(tái)期,從24小時(shí)起至72小時(shí),HIF-1α的表達(dá)水平無(wú)明顯差異??梢钥闯?,在感受到缺氧微環(huán)境后,作為細(xì)胞感受氧分壓下降后的上游基因,HIF-1α在很短時(shí)間內(nèi)調(diào)控即發(fā)生了變化。24小時(shí)后表達(dá)達(dá)到了高峰,可能是由于細(xì)胞內(nèi)HIF-1α mRNA表達(dá)量的持續(xù)增加、累積,抑制了其繼續(xù)轉(zhuǎn)錄,同時(shí),細(xì)胞凋亡率上升,細(xì)胞活力開(kāi)始下降,導(dǎo)致正常的轉(zhuǎn)錄水平下降。

    在骨折/骨損傷修復(fù)中,成骨細(xì)胞分泌表達(dá)的VEGF誘導(dǎo)了新血管的生長(zhǎng),為新骨的形成及重塑提供必要的營(yíng)養(yǎng)支持[7]。同時(shí),VEGF還能通過(guò)影響骨細(xì)胞的分化進(jìn)程、增殖效率來(lái)促進(jìn)骨生成和重塑,在骨折重建過(guò)程中發(fā)揮重要作用[8]。本實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示,缺氧微環(huán)境能顯著誘導(dǎo)OCCM-30細(xì)胞VEGF mRNA的表達(dá)上調(diào),但與成骨方面的研究相比在表達(dá)的時(shí)效性上存在差別,在缺氧后36小時(shí)表達(dá)量才逐步上升,可能是因?yàn)镺CCM-30細(xì)胞具備成牙骨質(zhì)細(xì)胞的特性,成牙骨質(zhì)細(xì)胞與成骨細(xì)胞相比屬于惰性細(xì)胞,大多數(shù)情況下處于未激活狀態(tài),因而在對(duì)缺氧應(yīng)答上存在差異。本實(shí)驗(yàn)尚未觀察到VEGF mRNA表達(dá)在上調(diào)后繼而下降的現(xiàn)象,可能是因?yàn)閷?shí)驗(yàn)設(shè)定觀察時(shí)間較短,需要進(jìn)一步研究。綜上所述,缺氧能顯著抑制成牙骨質(zhì)細(xì)胞的活性,在正畸導(dǎo)致的牙骨質(zhì)吸收過(guò)程中發(fā)揮著重要的作用。

    [1] Amemiya K,Kaneko Y,Muramatsu T,et a1.Osteoblasts responses during hypoxia and reoxygenation in vitro[J].Eur J Oral Sci,2003,111(4):332-338.

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    Effect of hypoxia on proliferation,apoptosis and hypoxia-related gene of cementoblast-like cells

    WUHaoa,HANHong-juana,RENXia-huaa,LIANGLinb

    (a.DepartmentofStomatology,b.DepartmentofPharmacy,SichuanAcademyofMedicalSciences&SichuanProvincialPeople’sHospital,Chengdu610072,China)

    Objective To investigate the influence of hypoxia on proliferation,apoptosis and hypoxia-related gene of cementoblast-like cells in order to understand the role of hypoxia in orthodontic-induced cementum absorption.Methods A cell hypoxic model was constructed by using a special incubator.At the same time,cell cultured under normal oxygenic pressure was used as control.MTT,F(xiàn)CM and RT-PCR were used to measure the proliferation ratio,apoptosis ratio and mRNA expressions of HIF-1α and VEGF.Results Hypoxia could depress the cell proliferation,increase apoptosis ratio and induce mRNA expressions of HIF-1α and VEGF of OCCM-30 cells.The expressions of HIF-1α mRNA reached the highest platform at 24 h after hypoxia while the expression of VEGF mRNA started to increase after 36 h of hypoxia.Conclusion Hypoxia could inhibit the cell proliferation and increase the cell apoptosis and hypoxia-relative gene expressions.

    Hypoxia;Cementoblast-like cell;OCCM-30;Proliferation;HIF-1α

    R780.2

    A

    1672-6170(2015)01-0043-03

    2014-08-20;

    2014-10-10)

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