以tuf基因為靶標的5種16SrⅠ組植原體環(huán)介導恒溫擴增技術*

王圣潔 王勝坤 林彩麗 于少帥 汪來發(fā) 樸春根 郭民偉 田國忠

(1.中國林業(yè)科學研究院森林生態(tài)環(huán)境與保護研究所 國家林業(yè)局森林保護學重點實驗室 北京 100091; 2.中國林業(yè)科學研究院熱帶林業(yè)研究所 廣州 510520)

以tuf基因為靶標的5種16SrⅠ組植原體環(huán)介導恒溫擴增技術*

王圣潔1王勝坤2林彩麗1于少帥1汪來發(fā)1樸春根1郭民偉1田國忠1

(1.中國林業(yè)科學研究院森林生態(tài)環(huán)境與保護研究所 國家林業(yè)局森林保護學重點實驗室 北京 100091; 2.中國林業(yè)科學研究院熱帶林業(yè)研究所 廣州 510520)

【目的】 建立一種能夠特異性檢測和鑒定16SrⅠ組植原體的環(huán)介導恒溫擴增技術，實現(xiàn)16SrⅠ組植原體的快速檢測。【方法】 以植原體tuf基因作為靶標，通過序列比對，設計多組具有特異性的LAMP引物組，篩選出一套適用于16SrⅠ組植原體的特異性檢測體系。以16SrⅡ組、16SrⅤ組、16SrⅩⅨ組植原體樣品按照此檢測體系進行反應，來驗證其特異性； 同時將稀釋后的感病組織樣品同步進行PCR和LAMP檢測，以確定其檢測靈敏度。對來自不同省市的6份田間樣品以及9份組培樣品進行檢測，以驗證其檢測的穩(wěn)定性?！窘Y果】 16SrⅠ-LAMP在恒溫63 ℃條件下40 min內完成擴增，能檢測5種分別引起泡桐叢枝、苦楝叢枝、桑樹萎縮、萵苣黃化和長春花綠變病的16SrⅠ組植原體，不能檢測其他組植原體包括16SrⅡ組的花生叢枝、甘薯叢枝、臭矢菜叢枝、16SrⅤ組的棗瘋病、紅花槐叢枝、櫻桃致死黃化和16SrⅩⅨ組的板栗黃化皺縮植原體。通過在反應液中加入鈣黃綠素肉眼判斷綠色為陽性結果，褐色為陰性結果，與用熒光定量設備進行判讀擴增曲線的結果一致。相比于PCR檢測，16SrⅠ-LAMP檢測的靈敏度提高了8倍； 16SrⅠ-LAMP能夠快速檢測出來自不同區(qū)域的田間泡桐發(fā)病樣品、感病泡桐組培苗和嫁接傳病脫毒苗?！窘Y論】 以tuf基因作為靶標，建立能同時檢測5種16SrⅠ組植原體的環(huán)介導恒溫擴增技術，具有高效、特異、操作簡便、檢測時間短及成本較低等優(yōu)點，適合于基層和現(xiàn)場檢測。

植原體； 環(huán)介導恒溫擴增；tuf基因； 快速檢測

Abstract： 【Objective】 The purpose of this study is to develop an isothermalmethod known as loop-mediated isothermal amplification (LAMP) for detection of 16SrⅠ group phytoplasmas. The method would make it possible to achieve simple and rapid detection of this pathogen.【Method】 In present study, several sets of LAMP primers were designed using thetufgene as the target, and then the most appropriate set was selected to develop LAMPmethod for detection of 16SrⅠ group phytoplasmas. The specificity of LAMP was tested by using 3 other groups of phytoplasma (16SrⅡ, 16SrⅤ, 16SrⅩⅨ) which are closely related to 16SrⅠ group. The sensitivities between LAMP and PCR for detecting phytoplasma were compared by using two-fold serially diluted DNA extracted from phytoplasma-infected paulownia as templates. The LAMP method was used to detect the paulownia witches’-broom phytoplasmas from 6 provinces in China and 9 kinds of tissue culture seedlings.【Result】 The 16SrⅠ-LAMP was efficiently amplified with the targettufgene sequences in 40 min at constant temperature of 63 ℃, by which five 16SrⅠ group phytoplasmas causing paulownia witches’-broom, chinaberry witches’-broom, mulberry dwarf, lettuce yellows and periwinkle phyllody diseases were detected, but no phytoplasmas from 16SrⅡ (peanut witches’-broom, sweet potato witches’-broom, cleome witches’-broom), 16SrⅤ (jujube witches’-broom, cherry lethal yellows,Bischofiapolycarpawitches’-broom,Robiniahispidawitches’-broom), and 16SrⅩⅨ (chestnut yellows crinkle) as well as healthy plant control were detected. The result of LAMP were observed by the color changes of reaction solution added to calcein, the reaction solution was green for positive samples and orange for negative ones, which were in agreement with the result by detecting amplification curve through the fluorescent quantitation device. Compared with conventional PCR amplification, the detection sensitivity of 16SrⅠ-LAMP was 8-fold higher. The PaWB samples collected from different regions and different graft-inoculted tissue culture seedlings could be detected correctly with corresponding LAMP assay.【Conclusion】 This is the first report of application of the LAMP assay technique for the simple，efficient，and specific detection of 16SrⅠ group phytoplasmas targeting on phytoplasmatufgene. suitable for grass-roots and field testing and for the rapid diagnosis of phytoplasma associated diseases.

Keywords： phytoplasma； loop mediated isothermal amplification(LAMP)；tufgene； rapid detection

植原體(phytoplasma，原稱mycoplasma-like organism)，是一類無細胞壁的原核生物，此類病害具有分布范圍廣、傳播速度快、致病力強、染病植物難以治愈等特點(McCoyetal., 1979)。該病原在全世界范圍內引起了許多重要的糧食作物、蔬菜、觀賞植物和果樹等經(jīng)濟林木的嚴重病害(Firraoetal., 2004)，如由16SrⅣ組植原體引起的椰子(Cocosnucifera)致死黃化病，因其很難治愈和快速致死椰樹而影響到全球的椰子生產(Bertaccinietal., 2014)；由16SrⅤ組植原體引起的葡萄(Vitisvinifera)黃化病，在法國西南部發(fā)生，造成該地區(qū)80%葡萄感病，產量減少20%～30%(Magarey， 1986)；由16SrⅩ組植原體引起的蘋果叢簇病，在歐洲的蘋果(Malussieversii)林中暴發(fā)，造成果實減小、質量減輕，影響蘋果的質量和商品價值，給德國和意大利等國的蘋果生產造成嚴重損失(Strauss， 2009)。植原體種類多樣，根據(jù)國際比較菌原體研究組(international research programme on comparative mycoplasmology,IRPCM)基于16SrRNA基因序列RFLP的分類規(guī)則，目前已報道植原體有30余組(Zhaoetal., 2016)，而且每個組內又劃分為許多亞組，其中翠菊(Callistephuschinensis)黃化組植原體(16SrⅠ組)，無論從種類、多樣性還是傳播范圍上來看都是分布最廣和危害最嚴重的。Lee等(2004)將翠菊黃化組植原體分成了16SrⅠ-A亞組的翠菊黃化、番茄(Lycopersiconesculentum)巨芽、洋蔥(Alliumcepa)黃化，16SrⅠ-B亞組的萵苣(Lactucasativa)黃化、桑(Morusalba)萎縮、繡球花(Hydrangeamacrophylla)變葉，16SrⅠ-C亞組的橄欖(Canariumalbum)叢枝、三葉草(Trifoliumrepens)變葉、草莓(Fragaria×ananassa)綠瓣，16SrⅠ-D亞組的泡桐(Paulowniaspp.)叢枝，16SrⅠ-E亞組的藍莓(Vacciniumangustifolium)萎縮等15個亞組，其中在我國發(fā)生和危害比較嚴重的該組植原體包括泡桐叢枝、苦楝叢枝、桑樹萎縮、萵苣黃化以及長春花(Catharanthus)綠變等。此外，16SrⅡ組植原體引起的花生(Arachis)叢枝、甘薯(Dioscoreaesculenta)叢枝和臭矢菜(Cleomeviscosa)叢枝， 16SrV組植原體引起的棗瘋病、槐樹(Sophora)叢枝病、櫻桃(Cerasuspseudocerasus)致死黃化以及重陽木(Bischofiapolycarpa)叢枝等也發(fā)生比較嚴重， 這些植原體病害給我國林業(yè)及農業(yè)造成了嚴重的經(jīng)濟損失(賴帆等, 2008)。2013年國家林業(yè)局把泡桐叢枝病和棗瘋病列入了全國林業(yè)危險性有害生物名單。由于植原體尚不能實現(xiàn)體外培養(yǎng)，針對該類病害的高度抗性品種又很難獲得，實際生產中該類病害的防治措施主要依靠清除染病的植株、杜絕侵染來源、綜合治理媒介昆蟲以切斷傳播途徑等措施。因此，建立快速、高效、簡便的植原體檢測技術，有助于及時發(fā)現(xiàn)病原和感病植物，提前采取控制措施，對該類病害防治具有重要意義(耿顯勝等, 2015)。

植原體的檢測，早期主要依靠生物學、電鏡觀察、抗生素試驗相結合的傳統(tǒng)方法進行，這些方法耗時長，檢測靈敏度也不高，而且檢測結果還容易被其他因素干擾(朱澂等, 1991)。隨著生物技術的發(fā)展，基于酶聯(lián)免疫反應、核酸雜交以及PCR技術的檢測方法相繼建立，檢測的靈敏度和準確性不斷提高(蘭平等, 2001; 廖曉蘭等, 2002)，但是這些方法往往需要精密的變溫設備以及復雜的分析儀器，且操作程序復雜，檢測時間長，對檢測人員的技術水平及熟練程度要求較高，大大限制了此類診斷方法的使用和推廣。環(huán)介導恒溫擴增技術(loop-mediated isothermal amplification, LAMP)是Notomi等(2000)開發(fā)的一種恒溫核酸擴增方法，是一種新型的分子診斷方法。該方法具有特異性強、操作簡單、不需要復雜的儀器、檢測周期短和結果可視化的特點，非常適合作為基層和現(xiàn)場的病害診斷方法進行推廣使用。自該技術建立以來，已經(jīng)廣泛地應用到真菌、細菌、病毒等病原菌的檢測中(戴婷婷等, 2016; 張永江等, 2016; 賈雅菁等, 2016)，其中也包括一些針對植原體的LAMP檢測技術，如Tomlison等(2010)以16S—23S間隔區(qū)作為靶標建立了翠菊黃化、草莓綠瓣、三葉草變葉、杏(Armeniaca)褪綠卷葉和圣保羅島椰子枯萎病植原體的LAMP檢測方法;Bekele等(2011)以IGS和23S作為靶標序列建立了番木瓜(Carica)黃化和銀膠菊(Parthenium)叢枝植原體的LAPMP檢測方法;Nair等(2016)以16SrRNA基因作為靶標建立了引起椰子根枯萎和檳榔(Areca)葉黃化植原體的LAMP檢測體系。

目前,針對我國發(fā)生普遍的植原體所建立的LAMP檢測技術報道較少，僅見韓劍等(2015)用16SrRNA基因作為靶標設計引物開展的LAMP可視化檢測棗瘋病植原體的研究；而針對我國發(fā)生普遍而嚴重的16SrⅠ組植原體引起的泡桐叢枝、苦楝叢枝等病害的快速檢測技術尚未見報道。因此本研究以蛋白延伸因子EF-Tu編碼基因(tuf)作為靶標基因設計LAMP引物，針對泡桐叢枝、苦楝叢枝等16SrⅠ組植原體，建立了16SrⅠ-LAMP檢測技術，以期為16SrⅠ組植原體的田間快速精準診斷、植物繁殖材料的帶菌檢測以及病害的精準高效檢疫和防控提供技術支撐。

1 材料與方法

1.1材料與試劑

試驗所使用的植原體感染材料及其健康對照，采集自我國不同地區(qū)，其編號及分類信息詳見表1。CTAB法植物基因組DNA快速提取試劑盒(DN14)購自北京艾德萊生物科技有限公司；恒溫核酸擴增試劑盒購自廣州迪澳生物科技有限公司； 2 × PCR預混液購自博邁德生物科技有限公司。

NanoDrop2000超微量分光光度計為賽默飛世爾科技公司產品；Rotor-Gene3000熒光定量PCR儀為澳大利亞Corbett公司產品；朗基A300 PCR儀為杭州朗基科學儀器有限公司產品；恒溫水浴鍋為上海亞榮生化儀器產品。

表1 植原體病害及健康對照樣品信息①Tab.1 Information of phytoplasma disease and healthy plant samples

① PaWB： 泡桐叢枝Paulownia witches’-broom； PH： 健康泡桐Healthy Paulownia； CWB： 苦楝叢枝Chinaberry witches’-broom； CH： 健康苦楝Healthy chinaberry； MD： 桑樹萎縮Mulberry dwarf； MH： 健康桑樹Healthy mulberry； LY： 萵苣黃化 Lettuce yellows； LH： 健康萵苣Healthy lettuce； PePWB： 長春花綠變Periwinkle phyllody； PeH： 健康長春花Healthy periwinkle； PnWB： 花生叢枝Peanut witches’-broom； PnH： 健康花生Healthy peanu； SpWB： 甘薯叢枝Sweet potato witches’-broom； SpH： 健康甘薯Healthy sweet potato； ClWB： 臭矢菜叢枝Cleome witches’-broom； ClH： 健康臭矢菜Healthy cleome； JWB： 棗瘋病Jujube witches’-broom； JH： 健康棗樹Healthy jujube； BiWB： 重陽木叢枝Bischofiapolycarpawitches’-broom； BiH健康重陽木HealthyBischofiapolycarpa； CeLY： 櫻桃致死黃化Cherry lethal yellows； CeH： 健康櫻桃Healthy cherry； RoWB： 紅花槐叢枝Robiniahispidawitches’-broom； RoH： 健康槐樹HealthyRobiniahispida； CnYC： 板栗黃化皺縮Chestnut yellows crinkle； CnH健康板栗Healthy chestnut.下同The same below.

1.2植物總DNA提取與PCR擴增檢測

稱取1～2 g新鮮植物材料，液氮冷凍并充分研磨，取0.10 g研磨后的粉末，參照CTAB法植物基因組DNA快速提取試劑盒(DN14)說明書提取總DNA，提取的總DNA -20 ℃保存?zhèn)溆?。利用植原體通用引物R16mF2/R16mR1(Gundersenetal.,1996)對提取的植物總DNA進行PCR擴增，PCR擴增體系及反應條件參考李永等(2005)的方法進行。25 μL擴增反應體系中含有制備的DNA模板1 μL，正反向引物各0.5 μL(10 μmol·L-1)，2 × PCR預混液(0.05 U·μL-1TaqDNA 聚合酶, 4 mmol·L-1MgCl2和 0.4 mmol·L-1dNTPs)12.5 μL，ddH2O補至25 μL。反應條件： 94 ℃ 5 min； 94 ℃ 45 s, 52 ℃ 45 s, 72 ℃ 1 min, 共35個循環(huán)； 72 ℃延伸10 min。PCR產物經(jīng)1%瓊脂糖凝膠電泳檢測。

1.316SrⅠ-LAMP檢測體系的建立

1.3.1 LAMP引物的設計與合成 在GeneBank中下載不同組植原體tuf基因的核酸序列，利用DNAMAN軟件對上述序列進行比較及相似性比對，找出不同組植原體的基因差異位點和高度保守區(qū)域，使用榮研公司的LAMP引物在線設計軟件Primer Explorer V4，按照LAMP引物篩選原則，針對16SrⅠ組植原體tuf基因的保守序列，設計多套LAMP引物，從中篩選出一套特異性好的引物(表2)。LAMP擴增的引物包括正向外引物F3、反向外引物B3、正向內引物FIP(FIC+F2)、反向內引物BIP(BIC+B2)。引物由生工生物工程(上海)股份有限公司按照HPLC純度級別合成。

表2 LAMP引物序列及PCR擴增引物序列Tab.2 The primers used for loop-mediated isothermal amplification and PCR

1.3.2 LAMP擴增反應的體系與條件 參考廣州迪澳生物科技有限公司所提供的恒溫擴增試劑盒，建立植原體16SrⅠ-LAMP擴增體系，并以試劑盒所提供的陽性和陰性標樣做對照。

16SrⅠ-LAMP擴增體系為： 總體積45 μL，包含有10 μmol·L-1PaWB-F3 0.5 μL、10 μmol·L-1PaWB-B3 0.5 μL，40 μmol·L-1PaWB-FIP 1 μL、40 μmol·L-1PaWB-BIP 1 μL，LAMP反應液RM(2×)12.5 μL，8 U·μL-1BstDNA聚合酶1 μL，熒光染料10×SYBR Green Ⅰ 0.5 μL，待測樣品DNA 0.5 μL，用超純水補齊到25 μL，同時加入20 μL密封液。反應條件為： 將配制好的反應管混勻后離心，置于63 ℃恒溫反應60 min，80 ℃滅活5 min。

1.3.3 LAMP擴增產物的判斷方法LAMP 反應結束后，采用2種方法鑒別陽性LAMP擴增結果： 1) 將擴增反應管置于恒溫熒光檢測儀或熒光PCR儀中，實時讀取熒光信號，如果出現(xiàn)“S”形擴增曲線則判定為陽性，即待測樣品中含有植原體； 如果無“S”形擴增曲線則判定為陰性，即待測樣品中無植原體； 2) 在擴增產物中加入1 μL顯色液(鈣黃綠素-氯化錳溶液)，在日光下肉眼觀察顏色變化， 如果擴增產物變?yōu)榇渚G色則判定為陽性，即待測樣品中含有植原體； 如果擴增產物仍為橘黃色則判定為陰性，即待測樣品中無植原體。

1.416SrⅠ-LAMP檢測體系的特異性驗證

應用建立的16SrⅠ-LAMP檢測體系對收集的我國不同地區(qū)發(fā)生的不同16Sr組植原體病害進行特異性驗證。供試的樣品包括16SrⅠ組： 泡桐叢枝、苦楝叢枝、桑樹萎縮病、長春花綠變和萵苣黃化的發(fā)病與健康組織樣品(于少帥， 2016)； 16Sr Ⅱ組： 花生叢枝、甘薯叢枝和臭矢菜叢枝的發(fā)病與健康組織樣品； 16SrⅤ組： 棗瘋病、重陽木叢枝、紫花槐(Sophorajaponicavar.violacea)叢枝和櫻桃致死黃化的發(fā)病與健康組織樣品和白杜的發(fā)病組織樣品。提取各樣品基因組DNA進行LAMP擴增，反應結束后觀察LAMP反應結果。試驗至少重復3次。

1.516SⅠ-LAMP檢測體系的靈敏度試驗

利用本實驗室組培保存的泡桐叢枝組培苗作為標準樣品提取基因組DNA，測定基因組DNA濃度后，用滅菌的ddH2O按2倍梯度進行稀釋。隨后以稀釋后的稀釋液作為模板，同時進行LAMP擴增反應和以R16mF2和R16mR1為引物的常規(guī)PCR和LAMP檢測，每個梯度設置3次重復，反應結束后觀察結果，比較2種方法的靈敏度。

1.616SrⅠ-LAMP檢測體系檢測的穩(wěn)定性及應用

供試樣品包括6份來自貴州貴陽、遼寧大連、河北保定、河南開封、福建福州和北京海淀的田間采集泡桐叢枝樣品，1份泡桐叢枝的組培苗(BJ+)，1份健康泡桐的組培苗(BJ-)，1份實驗室組培保存的南陽泡桐叢枝組培苗(NY)，3份不同品系脫毒組培苗(MB33、ZH3、ZP16)以及相對應的這3個品系進行病組織微芽嫁接傳病的組培苗(鄧寶紅，2016)，同時提取植物總DNA。并以此為模板，同步進行常規(guī)PCR、巢式PCR和LAMP檢測，比較不同檢測方法的檢測效果，并驗證LAMP檢測體系的穩(wěn)定性。

2 結果與分析

2.116SrⅠ-LAMP檢測方法的建立

試驗以泡桐叢枝為檢測對象，健康泡桐為對照，同時用恒溫核酸擴增試劑盒自帶陽性樣品(positive)與陰性樣品(negative)作為對照(確定酶是否失活和反應體系穩(wěn)定性)，篩選以tuf基因作為靶標設計的多套LAMP引物組，并參考恒溫擴增試劑盒所提供的反應程序，建立植原體16SrⅠ-LAMP檢測體系。從圖1可以看出，試劑盒自帶陽性樣品(positive)和泡桐叢枝樣品(PaWB)均出現(xiàn)了“S”形擴增曲線，加入顯色液后變成翠綠色，而試劑盒自帶陰性樣品(negative)和健康泡桐樣品(PH)均未出現(xiàn)擴增曲線和變色反應。16SrⅠ-LAMP檢測體系從基因組DNA加入至陽性結果出現(xiàn)，可以在40 min內完成，實現(xiàn)對16SrⅠ組植原體染病組織的快速檢測。

2.216SrⅠ-LAMP檢測方法的特異性

以不同來源、不同16Sr組別的植原體感染的組織材料及其對應的健康組織材料的基因組DNA作為模板，按照所建立的LAMP檢測體系進行反應，驗證LAMP體系的檢測特異性。結果表明， 泡桐叢枝(PaWB)、苦楝叢枝(CWB)、桑樹萎縮病(MD)、長春花綠變(PePWB)和萵苣黃化(LY)5種感病的組織材料均可以產生良好的擴增曲線，并且均能在40 min以內出現(xiàn)信號，16SrⅡ組、16SrⅤ組、16SrⅩⅨ組植原體感染的組織材料以及所有的健康組織材料都沒出現(xiàn)擴增曲線(圖2)。擴增產物經(jīng)溶解性曲線分析，基本處于相同的溫度(圖3)，顯色反應結果也與擴增曲線檢測結果吻合(圖4)。由此表明所建立的16SrⅠ-LAMP擴增體系可以完成5種16SrⅠ組植原體的檢測，而且特異性良好，對其他組的植原體及健康對照不產生陽性結果。

圖1 16SrⅠ-LAMP檢測結果的熒光檢測及顯色反應Fig.1 Amplification plot and colorimetric analysis of 16SrⅠ-LAMP products

圖2 16SrⅠ-LAMP檢測體系特異性驗證熒光檢測Fig.2 Specificity test of 16SrⅠ-LAMP using amplification plot

圖3 16SrⅠ-LAMP檢測體系特異性溶解性曲線Fig.3 Solubility curve of 16SrⅠ-LAMP using amplification plot

圖4 16SrⅠ-LAMP檢測體系特異性驗證顯色Fig.4 Specificity test of 16SrⅠ-LAMP using colorimetric analysis1.PaWB; 2.CWB; 3.MD; 4.PePWB; 5,6.PnWB; 7.SpWB; 8.ClWB; 9.JWB; 10.BiWB; 11.CeLY; 12.RoWB; 13.CnYC; 14.PH; 15.CH; 16.MH; 17.PeH; 18.LH; 19.PnH; 20.SpH; 21.ClH; 22.JH; 23.BiH; 24.CeH; 25.RoH; 26.CnH.

2.316SrⅠ-LAMP檢測方法的靈敏度

以泡桐叢枝病組培苗的植物總DNA作為原液，按2倍梯度進行稀釋，以稀釋后的稀釋液作為模板，同步進行PCR和LAMP檢測，PCR結果以1%瓊脂糖凝膠電泳進行判讀，LAMP結果以顯色法進行判讀。結果顯示，PCR在2-11倍的稀釋模板下時無明顯擴增反應，達到檢測下限(圖5)，LAMP在2-13倍的稀釋模板時仍有確定的陽性結果，但在2-14倍的稀釋模板時顏色變化不明顯，達到檢測下限(圖6)。LAMP的檢測靈敏度較普通PCR提高了8倍。

2.416SrⅠ-LAMP檢測泡桐叢枝方法的穩(wěn)定性及應用

利用建立的16SrⅠ-LAMP檢測方法，對來自貴陽、保定、北京、福州、大連和開封6個地區(qū)的田間泡桐叢枝病樣品以及實驗室組培保存的不同品系泡桐叢枝病苗、脫毒苗和病組織微芽嫁接接種脫毒苗共15份樣品進行檢測，并與普通PCR、巢式PCR的檢測結果進行比較。結果(表3)表明， 6份來自不同省市的田間采集的泡桐叢枝病樣品、1份泡桐叢枝新組培苗(BJ+)、1份實驗室保存的南陽泡桐叢枝病組培苗(NY)的檢測結果皆為陽性，1份健康泡桐新組培苗(BJ-)、3份不同品系脫毒組培苗(MB33、ZH3、ZP16)的檢測結果均為陰性，病組織微芽嫁接接種脫毒苗(病接穗-脫毒砧木)18天后，NY-MB33、NY-ZH3的檢測結果為陽性。NY-ZP16的PCR、LAMP檢測結果為陰性，而巢式PCR檢測結果為陽性。綜合以上結果分析，不論針對田間樣品還是組培樣品，16SrⅠ-LAMP檢測方法均可以穩(wěn)定地實現(xiàn)對病組織中泡桐叢枝植原體的準確檢測。但是從檢出率上來看，LAMP與PCR相當(66.66%)，但比巢式PCR略低(73.33%)。不同品系脫毒苗微芽嫁接傳病試驗顯示，與MB33、ZH3品系相比，植原體在ZP16品系的嫁接傳毒效果較差，可能與該品系抗病性更強有關，為植原體抗性品系潛在選育對象。

圖5 泡桐叢枝病樣品的普通PCR檢測Fig.5 Detection of PaWB DNA dilution with conventional PCR

圖6 泡桐叢枝病樣品的LAMP檢測Fig.6 Detection of PaWB DNA dilution with LAMP

編號No．樣品描述Sample來源Source檢測結果ResultPCRNestedPCRLAMPPaWB?GZGY泡桐叢枝病田間樣品FieldPaWB貴州貴陽Guiyang，Guizhou+++PaWB?LNDL泡桐叢枝病田間樣品FieldPaWB遼寧大連Dalian，Liaoning+++PaWB?HBBD泡桐叢枝病田間樣品FieldPaWB河北保定Baoding，Hebei+++PaWB?HNKF泡桐叢枝病田間樣品FieldPaWB河南開封Kaifeng，Henan+++PaWB?FUFZ泡桐叢枝病田間樣品FieldPaWB福建福州Fuzhou，F(xiàn)ujian+++PaWB?BJHD泡桐叢枝病田間樣品FieldPaWB北京海淀Haidian，Beijing+++BJ+泡桐叢枝病新組培苗PaWBtissuecultureBJ-健康泡桐新組培苗PHtissuecultureNY泡桐叢枝病保存組培苗PaWBtissuecultureMB33脫毒組培苗Phytoplasma?freetissuecultureZH3脫毒組培苗Phytoplasma?freetissuecultureZP16脫毒組培苗Phytoplasma?freetissuecultureNY?MB33病組織微芽嫁接脫毒苗Graftingtissueculturewithdis?easedscionNY?ZH3病組織微芽嫁接脫毒苗GraftingtissueculturewithdiseasedscionNY?ZP16病組織微芽嫁接脫毒苗Graftingtissueculturewithdiseasedscion組培室Tissuecultureroom+++———+++—————————++++++—+—

3 討論

植原體病害是系統(tǒng)侵染性病害，媒介昆蟲是自然傳播途徑，而種苗和各種營養(yǎng)繁殖材料包括種根、接穗、砧木、塊根、塊莖等是病害人為傳播的主要途徑。從源頭上杜絕病原的自然和人為傳播擴散是防止此類病害流行的最常用也是最根本的方法。因此植原體的準確快速診斷、實用檢測與鑒別方法的建立在病害各方面的研究中都至關重要，特別是在病害監(jiān)測、種苗檢疫及綜合防治方面占據(jù)著無法替代的地位并發(fā)揮著關鍵作用。較之常規(guī)核酸擴增的檢測方法，新型的核酸等溫擴增技術包括LAMP、滾環(huán)擴增技術(RCA)、單引物擴增技術(SPIA)、切刻內切酶介導恒溫擴增技術(NEMA)、依賴核酸序列擴增技術(NASBA)、重組酶聚合酶擴增技術(RPA)等已開始廣泛應用于病毒、細菌、真菌病害的早期檢測中(汪琳等, 2011)。其中LAMP技術的改進和不斷完善與發(fā)展使得檢測病原靶標核酸的擴增可以在恒溫條件下進行，簡化了試驗步驟，避免了對昂貴熱循環(huán)儀器的依賴，在縮短檢測時間的同時，使得其更能滿足快速、簡便、現(xiàn)場檢測的需求； 而且該技術不僅可用于各類病原微生物的檢測和鑒定，也可用于腫瘤和轉基因生物的檢測、基因拷貝的定量、微生物單核苷酸多態(tài)性和基因分型(Fakruddin， 2011)。16SrⅠ-LAMP是針對泡桐叢枝病等16SrⅠ組植原體靶序列的6個區(qū)域設計特異性引物，在擴增過程中，在鏈置換DNA聚合酶的作用下，形成啞鈴狀結構，并以此為復制單元實現(xiàn)核酸的恒溫擴增； 而且擴增的副產物——焦磷酸鎂沉淀，可以通過指示劑鈣黃綠素、HNB等進行可視化的結果判斷，不再需要通過瓊脂糖凝膠電泳判斷擴增結果，從而實現(xiàn)了擴增結果更快速、更高通量的檢測和鑒定。本研究采用了熒光曲線和顯色2種方法對結果加以判定，起到了相互驗證的效果，同時進一步提高了檢測準確性。Bekele等(2011)為了確證陰性檢測結果，設置植物COX或ACTIN基因序列引物作為內參(Vuetal., 2016)。本研究利用試劑盒附帶的陽性和陰性標樣對照標樣同樣起到了避免出現(xiàn)假陽性或假陰性試驗結果的目的，因而每次測定都要設置內參或陽性和陰性對照標樣，是發(fā)現(xiàn)檢測體系問題、保證檢測結果可靠性的必要條件。

LAMP檢測技術的關鍵在于靶標基因的選擇和引物組合的篩選，靶標基因要選擇種內高度保守、種間變異較高的序列。由于植原體對植物的專性寄生特性，因而要求LAMP引物不能擴增寄主植物的同源基因。目前以保守的16S、23S和IGSDNA為靶標基因的植原體LAMP檢測技術已見報道，但這些技術主要針對的是國外發(fā)生比較普遍的翠菊黃化、椰子黃化萎縮等植原體病害的檢測，且不同LAMP檢測體系的特異性也有很大差異，如Obura等(2011)基于16S DNA設計的LAMP引物能夠檢測不同組的植原體，而多數(shù)引物僅能檢測同組內的植原體。本研究首次以持家基因tuf基因作為靶標基因建立了16SrⅠ組植原體病害的LAMP檢測技術，特異性較好，檢測靈敏度比普通PCR技術提高了8倍，填補了我國在16SrⅠ組植原體快速檢測領域的空白；而且本檢測體系不僅能檢測16SrⅠ-D亞組的泡桐叢枝植原體，也能檢測16SrⅠ-B亞組桑樹萎縮、苦楝叢枝病等植原體，所以推測其對該組內相同亞組或者不同亞組的其他國內外植原體也能實現(xiàn)檢測，但這需要后續(xù)試驗驗證。已知我國發(fā)生的主要16SrⅠ組植原體的tuf基因序列變異范圍(0.73%～0.74%)高于16Sr DNA(低于0.42%)，推測應該更有利于設計組內亞組或株系特異性的引物(于少帥, 2016)。Sugawara等(2012)曾用植原體的持家基因groEL設計引物用于植原體的檢測，并隨其變異性大于16S等基因但所設計的LAMP引物也能檢測16SrⅠ組的多種植原體，這與tuf基因LAMP引物檢測的結果類似。

對于LAMP檢測植原體的靈敏度，不同研究因選擇的靶標序列、引物、測定方法、植原體種類等不同而得出了差異很大的結論。如有報道采用濁度法和溴化乙錠染色瓊脂糖電泳檢測LAMP的靈敏度比巢式PCR還高100倍(Oburaetal., 2011)； 而Sugawara等(2012)研究發(fā)現(xiàn)不同的引物其檢測靈敏度不同，分別比常規(guī)PCR高10倍和100倍。本研究體系的檢測靈敏度高于普通PCR但低于巢式PCR，可能與引物特性或者無環(huán)引物有關。

針對LAMP技術容易出現(xiàn)痕量樣品氣溶膠污染、特異性靶標選擇困難等問題，本研究注意到通過將樣品制備室與檢測室分離，選擇新的靶標，避免進行瓊脂糖凝膠電泳，在反應管中添加密封液等措施可以有效地減少假陽性的出現(xiàn)，取得了理想的檢測效果。針對反應結果的判斷方式，預計將LAMP技術與橫向側流試紙結合(蔡怡等, 2016)，亦或是將LAMP與微流控芯片技術結合(Gansenetal., 2012)，在加快檢測速度的同時，可能會提高植原體檢測通量及自動化檢測能力。另外在檢測樣品制備和成品制備、運輸方面仍有很大的改進和完善空間，比如嘗試一步法DNA提取，或者直接裂解樣品進行擴增(茍大平等, 2015)，篩選不同的凍干保護劑，制成干粉制劑，增長產品的貨架期等(吳彤等, 2016)。為了直接在田間進行大量樣品的快速檢測，已有研究采用葉片、花、果部位直接勻漿而不必經(jīng)過DNA提純步驟即能取得理想的植原體檢測效果，這可能與LAMP檢測體系對樣品中存在的抑制物質較PCR不敏感有關，從而為該技術在病害檢疫和生產上的推廣應用展示了更廣闊的前景(Jungheetal., 2016; Kogovseketal., 2015)。

泡桐在我國分布廣泛，且經(jīng)歷過種苗與種根大規(guī)模引種栽培，使得泡桐叢枝病在全國大部分泡桐種植區(qū)擴展蔓延，在危害比較嚴重的黃淮平原等病害適生暴發(fā)流行區(qū)，病害的發(fā)生率在70%以上。通過工廠化的脫毒育苗，進行無毒苗栽培以及加大抗性品系的栽培面積，可以有效控制此類病害的大流行(鄧寶紅， 2016)。本研究所建立的快速檢測體系，可以為快速地鑒定脫毒組培苗的帶毒情況提供更簡便、快捷、實用的新技術，且檢測靈敏度比常規(guī)PCR略高。在抗病品系篩選中，通過微芽嫁接傳病，LAMP技術可以為快速鑒定出具有抗性的一些品種提供強有力的支持，加快優(yōu)良抗病品系的選育和推廣應用。本試驗所涉及的3個品系中，通過感病組織材料NY微芽嫁接傳病，脫毒組培苗MB33和ZH3均被成功傳毒，且植原體在其苗中繁殖正常，濃度較高；而脫毒組培苗ZP16經(jīng)過微芽嫁接傳病后，并未顯示明顯的叢枝現(xiàn)象；普通PCR和LAMP均未檢出植原體，只有通過巢式PCR才檢出低濃度植原體的存在，由此說明植原體在此品系中繁殖受限，ZP16品系可以作為潛在抗病品系進行選育。

4 結論

本研究以tuf基因作為靶標，首次建立了針對我國泡桐叢枝病、苦楝叢枝病、桑樹萎縮病、萵苣黃化及長春花綠變5種16SrⅠ組植原體的環(huán)介導恒溫擴增技術。該技術快速、簡便、結果可視化，適合科研單位及基層生產單位使用。通過在應用實踐中進一步技術改進、優(yōu)化和完善，將在植原體的早期診斷、脫毒苗檢測以及抗性品種選育等方法發(fā)揮很大的作用，為植原體病害的科學防治提供技術支撐。

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(責任編輯 朱乾坤)

Loop-MediatedIsothermalAmplificationAssayforDetectionofFivePhytoplasmasBelongingto16SrⅠGroupBasedonTargettufGene

Wang Shengjie1Wang Shengkun2Lin Caili1Yu Shaoshuai1Wang Laifa1Piao Chungen1Guo Minwei1Tian Guozhong1

(1.KeyLaboratoryofForestProtectionofStateForestryAdministrationResearchInstituteofForestEcology,EnvironmentandProtection,CAFBeijing100091; 2.ResearchInstituteofTropicalForestry,CAFGuangzhou510520)

S763； S718.87

A

1001-7488(2017)08-0054-10

10.11707/j.1001-7488.20170807

2017-01-02；

2017-03-12。

“十二五”農村領域國家高技術研究發(fā)展科技計劃(863)課題(2012AA101501)；林業(yè)微生物資源子平臺運行與服務項目(NIMR2016-7)。

*田國忠為通訊作者。研究期間宋傳生采集了貴陽泡桐叢枝病樣，李永采集了紅花槐叢枝病樣，在此一并表示感謝。