張瑞琴, 林思思, 李 敏, 沈 利, 李 琨, 李永渝△
(1同濟大學醫(yī)學院病理生理教研室,消化系統(tǒng)疾病研究所,上海 200092; 2山西醫(yī)科大學第二醫(yī)院西院病理科,山西 太原 030053; 3遵義醫(yī)藥高等專科學校生理教研室,貴州 遵義 563000; 4同濟大學醫(yī)學院病原生物教研室,上海 200092)
大麻制劑HU210對實驗性急性胰腺炎的干預作用及其與Toll樣受體4信號通路的可能關(guān)系*
張瑞琴1,2, 林思思1, 李 敏3, 沈 利4, 李 琨1, 李永渝1△
(1同濟大學醫(yī)學院病理生理教研室,消化系統(tǒng)疾病研究所,上海 200092;2山西醫(yī)科大學第二醫(yī)院西院病理科,山西 太原 030053;3遵義醫(yī)藥高等專科學校生理教研室,貴州 遵義 563000;4同濟大學醫(yī)學院病原生物教研室,上海 200092)
目的: 研究大麻類制劑HU210對雨蛙肽(caerulein,CAE)誘導的野生型(wild-type,WT)和Toll樣受體4基因敲除(tlr4-/-)小鼠急性胰腺炎(acute pancreatitis,AP)的干預作用,并探討其作用機制。方法: 將成年C57BL/10J小鼠及相同背景的tlr4-/-小鼠各隨機分成3組: AP組、AP+HU210組及正常對照組。小鼠腹腔注射CAE(50 μg·kg-1·h-1)6次及脂多糖(10 mg/kg)1次復制AP模型;AP+HU210組在造模前及造模后各腹腔注射1次HU210(50 μg/kg);對照組注射生理鹽水替代CAE和脂多糖。造模處理后3 h,取血處死小鼠,取胰腺、肺組織及腸道Peyer’s結(jié)。結(jié)果: 與對照組相比,無論在WT或tlr4-/-小鼠,AP造模后胰腺病理評分,血漿淀粉酶活性,血漿IL-6、TNF-α及MCP-1水平,以及肺MPO活性均明顯升高(P<0.05),P38蛋白表達明顯上調(diào)(P<0.05)。同時,AP造模后,與WT小鼠相比,tlr4-/-小鼠血漿IL-6、TNF-α及MCP-1水平,以及胰腺P38及p-P38蛋白表達均明顯降低(P<0.05),Peyer’s結(jié)CD3+、CD4+T淋巴細胞百分比及CD4+/CD8+比值明顯降低(P<0.05)。 HU210干預使2種小鼠AP模型的胰腺病理學評分和肺MPO活性的升高明顯得到改善(P<0.05);在WT小鼠,而非tlr4-/-小鼠,AP引起的血漿淀粉酶活性和胰腺P38及p-P38蛋白表達的變化在HU210干預后明顯逆轉(zhuǎn)(P<0.05)。結(jié)論: TLR4主要參與AP全身炎癥反應,其機制可能依賴TLR4-P38 MAPK信號通路;大麻制劑HU210對AP的干預主要通過抑制炎癥細胞的浸潤發(fā)揮組織保護作用,與TLR4信號通路的關(guān)系似乎不明顯。
急性胰腺炎; 大麻素類; Toll樣受體4; 炎癥介質(zhì)
急性胰腺炎(acute pancreatitis,AP)是發(fā)生在胰腺的一種常見的炎癥性疾病,多數(shù)患者的病變局限于胰腺及胰腺周圍組織,約20%的患者由于并發(fā)全身性炎癥反應綜合征(systemic inflammatory response syndrome, SIRS)和多器官功能障礙綜合征(multiple organ dysfunction syndrome, MODS),導致該疾病死亡率高達30%[1]。AP的發(fā)病機制涉及到多因素、多環(huán)節(jié),已有的學說包括“胰酶自身消化學說”、“炎癥因子學說”、“氧化應激學說”、“腸道細菌移位學說”等等[2]。其中,大量研究關(guān)注到疾病發(fā)病過程中多種炎癥因子的作用,有大量研究表明,白細胞介素6(interleukin 6, IL-6)、腫瘤壞死因子α(tumor necrosis factor α, TNF-α)及單核細胞趨化蛋白1(monocyte chemotactic protein-1, MCP-1)等炎癥因子參與AP發(fā)生發(fā)展,與AP引起的并發(fā)癥有著密切的聯(lián)系[3]。研究還揭示,多條細胞信號通路涉及AP的炎癥反應,其中包括Toll樣受體4(Toll-like receptor 4, TLR4)信號通路,這些通路的激活參與了AP時促炎細胞因子的產(chǎn)生和釋放以及炎癥的擴布[4-5]。
大麻類物質(zhì)用于治療炎癥性疾病已有上千年的歷史,由于中樞神經(jīng)的副作用使其應用受到限制。近20年來,隨著內(nèi)源性大麻系統(tǒng)被發(fā)現(xiàn)、人工合成大麻制劑的問世及對AP發(fā)病機制認識的不斷深入,使得人們將目光關(guān)注到此類制劑在臨床治療上的可能性和有效性。本實驗在課題組前期研究的基礎上,選用人工合成的大麻制劑HU210,用野生型(wild-type, WT)和tlr4基因敲除(tlr4-/-)小鼠,通過對胰腺組織病理評分、胰酶活性、炎癥細胞因子和趨化因子水平以及腸道Peyer’s 結(jié)T淋巴細胞亞群的檢測,進一步探討AP的發(fā)病機制和HU210對AP的作用及其機制。
1 材料
1.1 動物 成年tlr4-/-小鼠及其相同背景的C57BL/10J野生型小鼠各24只,體重25~30 g,雌雄各半,購自南京大學實驗動物中心。動物處于溫度(23±2)℃、濕度(50~60)%環(huán)境中,給予標準飲食、自由飲水喂養(yǎng)。
1.2 主要試劑及藥物 雨蛙肽(caerulein, CAE)及脂多糖(lipopolysaccharide, LPS)購自Sigma;HU210購自Tocris Bioscience,使用時溶于溶劑(無水乙醇∶Tween 80∶生理鹽水=1∶1∶18);淀粉酶和髓過氧化物酶(myeloperoxidase, MPO)試劑盒購自南京建成生物工程研究所;TNF-α和IL-6試劑盒購自R&D Systems;MCP-1試劑盒購自深圳達科為生物技術(shù)公司;免疫組化抗體(P38α多克隆抗體和p-P38多克隆抗體)購自CST;流式抗體(CD3-PerCP、CD4-FITC和CD8-PE抗體)購自BioLegend。
2 方法
2.1 AP模型構(gòu)建及分組 實驗前小鼠禁食不禁水12 h,參照Ding等[6]的方法復制AP模型。WT和tlr4-/-小鼠隨機各分為3組,每組8只:(1)AP組,小鼠腹腔注射雨蛙肽50 μg/kg,每小時1次,連續(xù)注射6次,末次加注脂多糖10 mg/kg;(2)AP+HU210組,AP造模方法同前,在造模前及造模后用HU210(50 μg/kg)腹腔注射各1次(AP組注射溶劑);(3)對照(control,CON)組使用相同次數(shù)和劑量的生理鹽水替代雨蛙肽和脂多糖。末次腹腔注射后3 h將小鼠處死,收集血漿、胰腺、肺及腸道Peyer’s結(jié)。
2.2 胰腺組織病理學評估 將胰腺組織置入4%甲醛固定液過夜,再進行常規(guī)脫水、石蠟包埋、組織切片、HE染色。光學顯微鏡下觀察胰腺組織病理改變,請專業(yè)病理醫(yī)師閱片及評分(標準參照文獻[7])。簡言之,水腫評分如下:0,無水腫;1,小葉間水腫;2,腺泡腫脹,小葉間隙增大;3,明顯小葉分隔。炎細胞浸潤評分:0,無浸潤;1,炎細胞浸潤導管內(nèi);2,炎細胞浸潤<50%;3,炎細胞浸潤>50%。壞死評分:0,無壞死;1,點狀壞死<5%;2,灶狀壞死5%~20%;3,彌漫性壞死>20%。最后病理評分分值范圍0~9。
2.3 血漿淀粉酶活性及炎癥介質(zhì)水平檢測 放入抗凝管的血液離心取上清液。血漿淀粉酶按照生化試劑盒說明書操作。TNF-α、IL-6及MCP-1按照ELISA試劑盒產(chǎn)品說明書操作進行檢測。
2.4 肺組織MPO活性檢測 按照試劑盒說明書配成5%的肺組織勻漿,靜置后取上清液按要求進行操作,計算單位組織濕重的MPO活性。
2.5 胰腺組織中P38及p-P38的蛋白表達 采用免疫組織化學法檢測,石蠟切片脫蠟至水,使用染色試劑盒(Bioss)按要求操作,加P38α多克隆抗體(1∶40稀釋)或p-P38多克隆抗體(1∶25稀釋)4 ℃過夜,生物素標記山羊抗兔IgG抗體37 ℃孵育1 h,滴加辣根酶標記鏈霉卵白素工作液37 ℃孵育1 h,DAB(Boster)顯色,20 min后蘇木素復染,常規(guī)封片。使用Image-Pro Plus 6.0軟件進行數(shù)據(jù)獲取,結(jié)果以對照組的值為100%,AP組和AP+HU210組的值分別以相應對照組的百分比表示。
2.6 小腸Peyer’s結(jié)的T淋巴細胞亞群檢測 參照李敏等[8]介紹的方法機械分離取小腸Peyer’s結(jié),加入1 mL磷酸緩沖鹽溶液(phosphate-buffered saline, PBS)碾磨后收集細胞懸液進行細胞計數(shù)。取10 μL 1×109/L細胞懸液血清封閉后加入100 μL熒光活化細胞分選緩沖液(fluorescence-activated cell sorting buffer, FACS buffer;由PBS、5%小牛血清和1%疊氮鈉按照18∶1∶1配成)和0.5 μL CD3-PerCP、0.25 μL CD4-FITC、0.5 μL CD8-PE抗體混合液,剩余的細胞懸液混合后等量分裝,血清封閉后分別單獨加入FACS buffer及上述3種抗體之一,避光4 ℃孵育30 min。離心機設置1 500 r/min離心5 min,棄上清加200 μL PBS,轉(zhuǎn)移至流式細胞管,流式細胞儀進行檢測后使用FlowJo 7.6采集數(shù)據(jù),結(jié)果以測得的細胞數(shù)占T淋巴細胞百分比表示。
3 統(tǒng)計學處理
數(shù)據(jù)用均數(shù)±標準差(mean±SD)或者均數(shù)±標準誤(mean±SEM)表示,用SPSS 20.0軟件進行統(tǒng)計分析。tlr4-/-或WT小鼠各組間分別進行單因素方差分析,若方差齊,用LSD法兩兩比較,若方差不齊,采用Kruskal-Wallis檢驗。觀察兩種小鼠AP組之間和AP+HU210組之間的差異,采用雙因素方差分析。以P<0.05為差異有統(tǒng)計學意義。
1 胰腺組織病理學的變化
光鏡下,WT和tlr4-/-小鼠的正常胰腺組織腺泡細胞及導管排列緊密,AP造模后胰腺腺泡細胞壞死,間質(zhì)明顯水腫、出血及炎細胞浸潤,病理學評分較對照組明顯升高(P<0.01)。HU210干預使2種AP小鼠的胰腺組織水腫和炎細胞浸潤程度明顯減輕,病理學評分較各自AP組明顯降低(P<0.01)。AP時胰腺組織病理學變化及HU210的干預效果在WT和tlr4-/-小鼠之間無明顯差異,見圖1A、B。
2 血漿淀粉酶活性的變化
如圖1C所示,與對照組相比,AP組WT和tlr4-/-小鼠血漿淀粉酶活性顯著升高(P<0.01);HU210干預后,WT小鼠血漿淀粉酶活性明顯下降(P<0.05),tlr4-/-小鼠的變化不顯著。
Figure 1.Effects of HU210 treatment on the severity of AP in WT andtlr4-/-mice. A: the pathological images of pancreas (HE staining, ×400); B: the pathological scores of pancreas; C: the amylase activity in plasma. Mean±SEM.n=6.**P<0.01vscontrol (CON) group;#P<0.05,##P<0.01vsAP group.
圖1 HU210對急性胰腺炎WT和tlr4-/-小鼠胰腺病理及血漿淀粉酶活性的影響
3 血漿IL-6、TNF-α及MCP-1水平的變化
AP組WT和tlr4-/-小鼠血漿IL-6、TNF-α和MCP-1水平均較各自對照組顯著升高(P<0.01),HU210干預未見明顯降低作用。然而,值得注意的是,與WT小鼠相同處理組比較,tlr4-/-小鼠AP組或AP+HU210組,其血漿IL-6、TNF-α和MCP-1水平均明顯降低(P<0.01),見圖2。
Figure 2.Effects of HU210 treatment on IL-6 (A), TNF-α (B) and MCP-1 (C) levels in plasma in WT andtlr4-/-mice with AP. Mean±SEM.n=6.**P<0.01vscontrol (CON) group;△△P<0.01vsWT.
圖2 HU210對急性胰腺炎WT和tlr4-/-小鼠血漿炎癥介質(zhì)水平的影響
4 肺組織髓過氧化物酶活性的變化
如圖3所示,無論WT或tlr4-/-小鼠,AP造模后其肺組織MPO活性較對照組明顯增高(P<0.01)。HU210干預明顯降低肺MPO活性(P<0.05),表明HU210減輕AP時肺內(nèi)中性粒細胞的浸潤。AP組tlr4-/-小鼠肺MPO活性較WT小鼠有所降低,但差異無統(tǒng)計學意義。
Figure 3.Effect of HU210 treatment on lung MPO activity in WT andtlr4-/-mice with AP. Mean±SEM.n=6.**P<0.01vscontrol (CON) group;#P<0.05vsAP group.
圖3 HU210對急性胰腺炎WT和tlr4-/-小鼠肺MPO活性的影響
5 胰腺組織中P38及p-P38蛋白表達的變化
與對照組相比,AP造模后,在WT小鼠,胰腺P38和p-P38蛋白表達明顯升高(P<0.01),大麻制劑HU210明顯降低這些變化(P<0.05);而在tlr4-/-小鼠,AP組胰腺P38蛋白、而非p-P38蛋白表達較對照組有所增高(P<0.05),HU210對此無明顯影響。有趣的是,與AP組WT小鼠相比,AP組tlr4-/-小鼠胰腺P38和p-P38蛋白表達水平明顯降低(P<0.05),見圖4。
6 小腸Peyer’s結(jié)T淋巴細胞亞群的變化
在WT小鼠,與對照組相比,AP組小腸Peyer’s結(jié)中CD3+T淋巴細胞和CD4+T淋巴細胞比例有所減少,CD4+/CD8+比值明顯降低(P<0.01);在tlr4-/-小鼠,AP組的小腸Peyer’s結(jié)中淋巴細胞變化不大,與WT小鼠AP組的變化比較,差異顯著(P<0.05)。HU210干預對WT或tlr4-/-小鼠小腸Peyer’s結(jié)中淋巴細胞的影響均不明顯,見圖5。
AP的發(fā)病機制復雜,涉及機體調(diào)控因素眾多。本實驗采用雨蛙肽,一種膽囊收縮素(cholecystokinin, CCK)的類似物,當大劑量注射時可通過促進胰酶過度分泌而誘導AP發(fā)生。LPS為革蘭氏陰性細菌細胞壁的主要成分,是TLR4的配體,通過TLR4信號通路,引起體內(nèi)巨噬細胞、中性粒細胞及內(nèi)皮細胞等活化,促進釋放白細胞介素1、6、8和TNF-α、組胺等生物活性物質(zhì),使小血管損傷、管壁擴張,導致微循環(huán)障礙,進而加重胰腺病變。我們參照Ding等[6]的方法,對小鼠腹腔注射CAE+LPS來復制AP模型,觀察到胰腺組織水腫、出血、炎細胞浸潤及點狀腺泡細胞壞死,血漿淀粉酶活性增加,增多的促炎細胞因子釋放入血,肺組織炎細胞浸潤,均為重型AP的表現(xiàn)。
Figure 4.Effects of HU210 on pancreatic P38 (A) and p-P38 (B) protein expression in WT andtlr4-/-mice with AP (immunohistochemical staining,×400). Mean±SEM.n=3.*P<0.05,**P<0.01vscontrol (CON) group;#P<0.05vsAP group;△P<0.05vsWT.
圖4 HU210對WT和tlr4-/-小鼠急性胰腺炎胰腺P38和p-P38蛋白表達的影響
已知,炎癥反應本質(zhì)上是一種機體對抗致病因子的一系列抗損傷過程,涉及多因素、多系統(tǒng)的參與。然而過度的炎癥反應會加重組織細胞的損傷。Toll樣受體(Toll-like receptors, TLRs)是生物進化過程中一種古老的天然免疫受體,也是哺乳動物體內(nèi)唯一將細胞外抗原識別信息向細胞內(nèi)傳遞并引發(fā)炎癥反應的跨膜蛋白[9]。TLR4是TLR家族的一員,主要識別革蘭氏陰性細菌細胞壁成分LPS,通過細胞內(nèi)信號活化P38絲裂原活化蛋白激酶(mitogen-activated protein kinase, MAPK)以及核因子κB(nuclear factor κB, NF-κB),促使促炎細胞因子的合成和釋放。目前,TLR4在AP的發(fā)病機制的作用仍存在爭議。一些研究認為TLR4除分布于免疫相關(guān)細胞,還分布于胰腺導管上皮細胞、血管內(nèi)皮細胞及胰島細胞的細胞膜上,CAE誘導的AP胰腺TLR4mRNA表達上調(diào),TNF-α、IL-6和IL-2水平升高[10],而通過抑制TLR4可以降低炎癥介質(zhì)[11]。另有研究表明TLR4在CAE誘導的AP中對胰腺組織損傷及AP相關(guān)肺損傷無明顯作用[12]。Sawa等[13]認為TLR4缺陷對十二指腸閉合術(shù)誘導的AP胰腺組織無影響,但可減輕AP相關(guān)的肝和腎損傷。在本課題組的前期實驗中,我們發(fā)現(xiàn)AP時,TLR4的下游信號分子P38 MAPK及其磷酸化形式在胰腺組織表達增加,而使用P38 MAPK抑制劑SB203580抑制其活化,可明顯降低炎癥反應和細胞因子水平[14]。本實驗我們選用tlr4基因敲除小鼠探討TLR4在AP發(fā)病機制的作用,看到AP WT小鼠血漿IL-6和TNF-α水平約為tlr4基因缺陷小鼠的4倍,MCP-1的水平約為tlr4基因缺陷小鼠的45倍。同時P38 MAPK作為TLR4的下游信號分子,tlr4基因的缺陷使得P38及其磷酸化形式p-P38蛋白表達相應地下降,結(jié)果表明TLR4-P38 MAPK信號通路參與AP,尤其是伴有內(nèi)毒素血癥時的全身炎癥反應。
Figure 5.Changes of T-lymphocyte subsets in the intestinal Peyer’s patches of WT andtlr4-/-mice with AP after HU210 treatment detected by flow cytometry. Mean±SD.n=6.**P<0.01vscontrol group;△P<0.05vsWT.
圖5 WT和tlr4-/-小鼠各組腸道Peyer’s結(jié)中CD3+、CD4+T淋巴細胞百分比及CD4+/CD8+比值的變化
機體的炎癥反應調(diào)控涉及多系統(tǒng)、多器官。20世紀90年代,Marzo等[15]首次提出內(nèi)源性大麻素系統(tǒng)(endocannabinoid system, ECS),該系統(tǒng)由內(nèi)源性大麻素物質(zhì)、大麻素受體[主要包括大麻素受體1(cannabinoid receptor 1, CB1)和大麻素受體2(cannabinoid receptor 2, CB2)],以及參與內(nèi)源性大麻素物質(zhì)合成、轉(zhuǎn)運及降解的酶類組成。最近大量研究顯示,ECS廣泛參與機體炎癥反應、包括AP以及其它胃腸道炎癥疾病的調(diào)控[16-18]。CB2主要通過調(diào)控P38 MAPK信號通路及NF-κB信號通路調(diào)節(jié)炎癥因子的合成和釋放,該受體的激活具有抗炎作用[19]。Michalski等[16]發(fā)現(xiàn)AP患者胰腺組織CB受體表達上調(diào),內(nèi)源性大麻素物質(zhì)水平升高;此外,人工合成的CB1/CB2受體激動劑HU210治療小鼠實驗性AP,減緩AP相關(guān)性疼痛,減輕炎癥反應和胰腺病理損傷,而不伴有中樞神經(jīng)系統(tǒng)副作用。Michler等[20]研究證實,HU210主要是通過活化CB2減輕AP的胰腺組織損傷和肺組織MPO活性。本課題組之前的研究證實HU210通過減輕炎癥反應及減少胃泌素和胃蛋白酶分泌,可以保護胃組織抵抗AP引起的急性胃腸黏膜病變[17]。本實驗結(jié)果顯示,HU210干預AP小鼠,使其胰腺組織損傷減輕,血漿淀粉酶活性及肺組織MPO活性降低,胰腺組織P38和p-P38的表達下調(diào)。大麻制劑HU210作為CB受體激動劑,參與激活ECS而發(fā)揮對AP的干預作用,其作用機制是否與其抑制TLR4-P38 MAPK信號通路有關(guān)?從實驗結(jié)果看到,無論對WT或tlr4基因敲除小鼠,HU210均可明顯改善AP胰腺組織病理改變、降低肺部炎細胞浸潤;而對于AP時的高胰淀粉酶血癥及上調(diào)的P38和p-P38,HU210的對抗作用僅在WT鼠明顯表現(xiàn)出來,對tlr4基因敲除鼠無影響,說明HU210改善 AP組織病理和功能損傷的作用主要是通過抑制組織炎癥細胞的浸潤,而不依賴TLR4-P38 MAPK信號通路。另外,無論WT或tlr4基因敲除小鼠,HU210對CAE+LPS引起的小鼠重癥AP其顯著升高的血漿炎癥介質(zhì)水平無明顯逆轉(zhuǎn),提示HU210對AP全身炎癥因子的表達無明顯作用,說明合并內(nèi)毒素血癥的重癥AP其機體炎癥反應的嚴重性和復雜性,其中涉及多因素、多系統(tǒng)的參與。
綜上所述,本實驗結(jié)果揭示TLR4-P38 MAPK信號通路參與AP,尤其是伴有內(nèi)毒素血癥時的全身炎癥反應。大麻制劑HU210對AP組織的保護作用,可能主要是通過抑制炎癥細胞,尤其是抑制中性粒細胞的浸潤,對 TLR4信號通路的依賴不明顯。
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(責任編輯: 林白霜, 羅 森)
Effects of cannabinoid HU210 on experimental acute pancreatitis and possible relationship with Toll-like receptor 4 signaling pathway
ZHANG Rui-qin1, 2, LIN Si-si1, LI Min3, SHEN Li4, LI Kun1, LI Yong-yu1
(1DepartmentofPathophysiology,InstituteofDigestiveDisease,TongjiUniversitySchoolofMedicine,Shanghai200092,China;2DepartmentofPathology,WestBranchofTheSecondHospital,ShanxiMedicalUniversity,Taiyuan030053,China;3DepartmentofPhysiology,ZunyiMedicalandPharmaceuticalCollege,Zunyi563000,China;4DepartmentofPathogenBiology,TongjiUniversitySchoolofMedicine,Shanghai200092,China.E-mail:liyongyu@#edu.cn)
AIM: Using Toll-like receptor 4 gene knockout (tlr4-/-) mice and the wild-type (WT) mice with the same C57BL/10J genetic background, the effects of HU210, a cannabis preparation, on caerulein (CAE)-induced acute pancreatitis (AP) and the potential mechanisms were investigated. METHODS: WT ortlr4-/-mice were randomly divided into AP group, AP+HU210 group and control group. AP was induced by intraperitoneal injection of CAE (50 μg·kg-1·h-1) for a total of 6 times and lipopolysaccharide (LPS) at 10 mg/kg 6 h after the first injection of CAE. HU210 (50 μg/kg) was given 30 min before and 4 h after the first injection of CAE in AP+HU210 group. The animals in control group were given normal saline instead of CAE and LPS in the same way. The mice were sacrificed 3 h after the last injection. The blood, the pancreas, the lungs and the intestinal Peyer’s patches were harvested. RESULTS: Compared with control group, the pancreatic pathological score and P38 protein expression, plasma amylase activity and inflammatory mediator levels, and lung MPO activity were significant increased (P<0.05) in both WT andtlr4-/-mice with AP. Compared with the WT mice with AP, thetlr4-/-mice with AP showed significantly low levels of IL-6, TNF-α and MCP-1 in the plasma, low expression levels of pancreatic P38 and p-P38 protein (P<0.05), and mild alterations of CD3+T-lymphocytes, CD4+T-lymphocytes and the ratio of CD4+/CD8+(P<0.05). The administration of HU210 attenuated the pancreatic pathological changes and the lung MPO activity in both stains of mice with AP (P<0.05). However, the inhi-bitory effects of HU210 on the increased amylase activity in the plasma and the increased protein levels of pancreatic P38 and p-P38 were remarkable (P<0.05) in WT mice instead of intlr4-/-mice. CONCLUSION: TLR4 is mainly involved in AP-related systemic inflammatory response and its mechanism may be dependent on TLR4-P38 MAPK signaling pathway. The intervention of HU210 in AP plays a protective role mainly by inhibiting the infiltration of inflammatory cells, and the relationship with TLR4 signaling pathway is not obvious.
Acute pancreatitis; Cannabinoids; Toll-like receptor 4; Inflammatory mediators
1000- 4718(2017)06- 1112- 07
2016- 11- 28
2017- 03- 15
國家自然科學基金資助項目(No. 81270477; No.31571181)
R363.2
A
10.3969/j.issn.1000- 4718.2017.06.025
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