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    槐角多糖表征及抗氧化吸濕保濕性能研究

    2017-03-23 08:42:14李彩霞高海寧
    食品與機械 2017年12期
    關(guān)鍵詞:槐角吸光螯合

    李彩霞 - 鄭 雪 高海寧 - 張 勇

    (1. 河西學(xué)院農(nóng)業(yè)與生物技術(shù)學(xué)院,甘肅 張掖 734000; 2. 甘肅省高校河西走廊特色資源利用省級重點實驗室,甘肅 張掖 734000)

    槐角又稱槐實,為豆科植物國槐(SophorajaponicaL.)的果實,是一味常用中藥[1]。陳明珠等[2]對槐角化學(xué)成分進(jìn)行了研究,發(fā)現(xiàn)其含有黃酮、異黃酮、三萜皂苷、氨基酸、生物堿、磷脂和多糖等多種藥理活性成分。目前國內(nèi)外學(xué)者對槐角多糖研究已有報道,劉景東等[3]研究發(fā)現(xiàn),槐角含有豐富的多糖;Ertan A等[4]對槐豆膠與卡拉膠的熱相變協(xié)同作用進(jìn)行了研究,發(fā)現(xiàn)槐豆膠與其他親水膠體相互作用產(chǎn)生凝膠;卞云霞等[5]研究了槐豆多糖及其配合物的抑菌活性,結(jié)果顯示不同的配合物對供試菌抑菌效果有差異,以上研究側(cè)重于多糖與凝膠復(fù)配方面的報道,而未見多糖的抗氧化及保濕方面的研究。國槐資源豐富,其多糖含量高,因此有一定的研究價值。

    天然多糖廣泛存在于自然界中,是構(gòu)成生命的四大基本物質(zhì)之一,具有抗氧化、抗腫瘤、抗衰老、降血糖、抗輻射,調(diào)節(jié)人體免疫力等作用[6-8],同時又具有強吸水性、乳化性、高黏度性和成膜性[9],因此可以作為功能性添加劑,在醫(yī)藥、食品等領(lǐng)域中有廣泛應(yīng)用前景。

    本試驗以槐角果皮和種子為材料,采用雙酶法從槐角果皮和種子中提取多糖,通過紅外光譜對結(jié)構(gòu)進(jìn)行表征,并考察多糖對ABTS自由基、DPPH自由基、超氧陰離子自由基的清除作用及對亞鐵離子的螯合能力,綜合評價多糖的體外自由基清除活性,同時探討多糖的吸濕和保濕性能,以期為槐角多糖在天然抗氧化劑和化妝品等領(lǐng)域的開發(fā)利用提供依據(jù)。

    1 材料和方法

    1.1 材料與試劑

    槐角:采自河西學(xué)院,剝離果皮和種子,分別洗凈、陰干、粉碎、過篩(60目),保存?zhèn)溆茫?/p>

    2,2-聯(lián)氮-雙(3-乙基苯并噻吡咯林-6-磺酸(ABTS)、菲洛嗪(Ferrozine)、二苯代苦味肼基 (DPPH):純度≥99%,美國Sigma公司;

    L-甲硫氨酸:分析純,北京拜爾迪生物公司;

    氯化硝基四氮唑藍(lán)(NBT):分析純,南京奧多福尼生物科技有限公司;

    葡聚糖:純度≥99%,國藥集團化學(xué)試劑有限公司;

    果膠酶:3.2 U/g,北京雙旋微生物培養(yǎng)基制造廠;

    纖維素酶:≥1 000 U/mg,北京奧博星生物技術(shù)有限公司;

    正丁醇、氯仿等試劑:分析純,上海中秦化學(xué)試劑有限公司。

    1.2 儀器與設(shè)備

    電子分析天平:AE200型,梅特勒-托利多國際貿(mào)易(上海)有限公司;

    可見分光光度計:S-24型,上海棱光技術(shù)有限公司;

    循環(huán)水式真空泵:SHZ-2000型,河南省鞏義市英峪予華儀器廠;

    數(shù)顯恒溫水浴鍋:HH-4型,國華電器有限公司;

    高速冷凍離心機:CR21GII型,日本日立公司;

    冷凍干燥機:MiLLROCK型,美國米爾洛克公司;

    旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)器:RE-2000A型,鞏義市京華儀器有限責(zé)任公司;

    酸度計:pH510型,安萊立斯儀器科技(上海)有限公司;

    紅外光譜儀:Nicolet iS50型,美國Thermo Scientific公司。

    1.3 試驗方法

    1.3.1 槐角果皮和種子多糖的提取及含量測定

    (1) 提取工藝流程:

    原料→粉碎→石油醚脫脂→干燥→雙酶法提取[以檸檬酸-檸檬酸鈉緩沖液為溶劑,料液比1∶20 (g/mL),混合酶(纖維素酶∶果膠酶質(zhì)量比1∶1)添加量0.5%,底物濃度5%,初始pH 4.8,酶解溫度50 ℃,酶解時間1 h]→高溫滅酶(80~90 ℃,10 min)→冷卻至室溫→離心(5 000 r/min,10 min)→上清液→減壓濃縮(至原液體積的 1/10)→醇沉(濃縮液中加入3倍體積95%乙醇,靜置過夜)→離心(5 000 r/min,5 min)→沉淀按1∶5 (g/mL)加入蒸餾水→加入 1/4 體積的Sevage試劑脫蛋白(3次)→醇沉(加入3倍體積95%乙醇,靜置過夜)→離心(5 000 r/min,10 min)→沉淀冷凍干燥(-40~-47 ℃,壓力17.42 Pa)→槐角果皮/種子多糖

    (2) 多糖含量測定:根據(jù)文獻(xiàn)[10]修改如下,準(zhǔn)確稱取105 ℃干燥至恒重的葡聚糖100 mg,溶解后定容于100 mL容量瓶中,并稀釋成100 μg/mL葡聚糖標(biāo)準(zhǔn)溶液。精密吸取葡聚糖標(biāo)準(zhǔn)溶液0.00,0.20,0.40,0.60,0.80,1.00 mL用蒸餾水補充至2.00 mL,加入1 mL 6%苯酚,搖勻,然后加入5 mL 濃H2SO4,置于室溫下反應(yīng)20 min,冷卻后于490 nm處測定吸光度,繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線,并求得Y=0.005 8X+0.000 1(R2=0.999 2)的線性回歸方程。

    根據(jù)1.3.1方法提取多糖,稀釋一定倍數(shù)后,精密吸取1 mL,按標(biāo)準(zhǔn)曲線制作方法操作,在490 nm處測定吸光度,按式(1)計算多糖的得率:

    (1)

    式中:

    Y——多糖得率,%;

    C——標(biāo)準(zhǔn)曲線上查得的多糖含量,μg;

    V——多糖提取液總體積,mL;

    N——樣品的稀釋倍數(shù);

    M——樣品的重量,g;

    VS——測定時所取溶液的毫升數(shù),mL。

    根據(jù)上述方法測定果皮和種子多糖粗提物中多糖含量,并計算其純度。

    1.3.2 紅外光譜(IR)表征 取2 mg 左右干燥多糖,加入適量KBr 粉末研磨混勻后,壓片,在波數(shù)4 000~400 cm-1內(nèi)掃描果皮和種子多糖的紅外光譜圖。

    1.3.3 多糖的抗氧化性測定

    (1) 對ABTS自由基的清除作用測定:根據(jù)文獻(xiàn)[11]修改如下,將2.00 mL稀釋成一定質(zhì)量濃度(種子:92.80~464.02 μg/mL;果皮:197.63~988.16 μg/mL)的多糖溶液和2.00 mL的ABTS混合為反應(yīng)體系,2.00 mL蒸餾水和2.00 mL 的ABTS混合液為對照組,2.00 mL蒸餾水和2.00 mL 多糖溶液的混合液為空白組,將各組在暗處靜置6 min,在734 nm處測定吸光度。以不同質(zhì)量濃度的VC作陽性對照。按式(2)計算ABTS自由基的清除率。

    (2)

    式中:

    R——清除率,%;

    A0——對照組吸光值;

    Ai——多糖溶液吸光值;

    Aj——空白組吸光值。

    (2) 對DPPH自由基的清除能力:根據(jù)文獻(xiàn)[12]修改如下:將2.00 mL稀釋一定質(zhì)量濃度的槐角果皮(或種子)多糖溶液和2.00 mL的DPPH溶液(0.15 mmol/L的95%乙醇溶液)為測定組,2.00 mL蒸餾水和2.00 mL DPPH溶液為對照組,2.00 mL多糖溶液和2.00 mL 95%乙醇為樣品空白組,搖勻,在室溫下避光靜置30 min,在517 nm波長下測定吸光度,以VC作陽性對照,DPPH自由基清除率按式(3)計算:

    (3)

    式中:

    R——清除率,%;

    A0——未加多糖溶液對照組吸光值;

    Ai——加多糖溶液吸光值;

    Aj——以95%乙醇代替DPPH溶液時的吸光值。

    (3) 對超氧陰離子自由基的清除能力測定:參照文獻(xiàn)[13],根據(jù)式(4)計算超氧陰離子自由基的清除率。

    (4)

    式中:

    R——清除率,%;

    A0——蒸餾水代替多糖的吸光值;

    Ai——加入多糖溶液吸光值;

    Aj——多糖溶液的本底吸光值。

    (4) 對亞鐵離子的螯合能力測定:根據(jù)文獻(xiàn)[6],金屬螯合率按式(5)計算:

    (5)

    式中:

    R——螯合率,%;

    A0——蒸餾水代替多糖溶液吸光值;

    Ai——加多糖溶液的吸光值;

    Aj——多糖溶液的本底吸光值。

    1.3.4 吸濕保濕性能測定

    (1) 槐角果皮和種子多糖的吸濕性:根據(jù)文獻(xiàn)[6]修改如下,將200 mL的硫酸銨飽和溶液置于干燥器底部,使干燥器內(nèi)的相對濕度為81%。準(zhǔn)確稱取充分干燥后的果皮多糖、種子多糖、甘油、殼聚糖各0.5 g于稱量瓶,置于濕度和溫度相對恒定的干燥器中并密封。放置3,15,19,28,39,45,50,67,76,90 h后,分別稱量樣品放置前后的質(zhì)量,根據(jù)式(6)計算多糖的吸濕率。

    (6)

    式中:

    A——吸濕率,%;

    Wo——樣品放置前質(zhì)量,g;

    Wn——樣品吸水后質(zhì)量,g。

    (2) 槐角果皮和種子多糖的保濕性:根據(jù)文獻(xiàn)[14]修改如下:在干燥器底部放入200 g 烘干的變色硅膠,準(zhǔn)確稱取充分干燥后的果皮多糖、種子多糖、甘油、殼聚糖各1 g置于內(nèi)徑30 mm恒重的稱量瓶中,分別加入1 mL蒸餾水,充分搖勻,放入干燥器中并密封。放置6,15,21,27,39,50,70 h,分別稱量樣品放置不同時間的水分質(zhì)量(Hn)和添加水分質(zhì)量(Ho),根據(jù)式(7)計算多糖的保濕率。

    (7)

    式中:

    R——保濕率,%;

    Ho——添加的水分質(zhì)量,g;

    Hn——放置不同時間的水分質(zhì)量,g。

    1.4 統(tǒng)計方法

    所有的試驗均3次重復(fù),試驗數(shù)據(jù)采用Excel 2003軟件進(jìn)行統(tǒng)計分析、Origin 9軟件進(jìn)行作圖。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 槐角果皮和種子中多糖含量的比較

    通過雙酶法提取槐角果皮和種子多糖,采用苯酚硫酸法測定槐角果皮和種子中多糖的得率分別為24.7%,11.6%,該數(shù)據(jù)表明槐角種子和果皮中含有豐富的多糖,且果皮中多糖含量高于種子。并測定了果皮和種子多糖粗提物中多糖的含量,分別為72.39%,76.95%,從結(jié)果來看,種子多糖的純度高于果皮多糖的。

    2.2 紅外光譜(IR)分析

    由圖1可知,槐角兩部位多糖均有多糖的特征吸收峰,3 420 cm-1和3 300 cm-1處是多糖中O—H的伸縮振動引起的吸收峰,2 970 cm-1是甲基或亞甲基的C—H伸縮振動所形成的吸收峰[15],1 610 cm-1是—OH 的彎曲振動的吸收峰,1 410 cm-1和1 300 cm-1處是C—O 的變形振動的吸收峰[16],1 140 cm-1左右和1 080 cm-1左右為吡喃型甘露糖和半乳糖上伯、仲羥基的C—O的振動吸收峰[17],893 cm-1是吡喃糖C—H變角振動的吸收峰,果皮多糖在893 cm-1和839 cm-1均有吸收,說明該糖是β-型和α-型2種糖苷鍵吡喃糖對稱振動所產(chǎn)生的吸收峰[18]。

    圖1 槐角果皮和種子多糖紅外光譜圖Figure 1 Infrared spectrogram of polysaccharides of pericarp and seed from Sophora japonica L.

    2.3 多糖的抗氧化活性

    2.3.1 槐角果皮和種子多糖對ABTS自由基的清除能力

    ABTS是一種水溶性的自由基,經(jīng)氧化后生成藍(lán)綠色的陽離子ABTS自由基,向其中加入樣品,如果該樣品含有抗氧化物質(zhì),能夠提供供氫體,則會褪色。在734 nm下吸光度降低,其降低程度與抗氧化物質(zhì)的抗氧化活性有關(guān),通過光吸收的下降程度可反映該物質(zhì)抗氧化活性的強弱[11,19]。由圖2、3可知,槐角果皮、種子多糖和VC溶液均對ABTS自由基有一定的清除能力,其清除率均隨濃度增大而增大。果皮多糖、種子多糖和VC在質(zhì)量濃度分別為247.04,232.01,12.50 μg/mL 時對ABTS自由基的清除率分別為40.05%,71.83%,86.92%,表明多糖對ABTS自由基有很好的清除能力但弱于VC。

    2.3.2 槐角果皮和種子多糖對DPPH自由基的清除作用

    DPPH自由基在517 nm處有最大吸收,當(dāng)反應(yīng)體系中含有抗氧化物時,抗氧化物提供一個電子與其配對結(jié)合,使DPPH自由基的特征紫色消失,其吸收值降低,樣品的抗氧化活性根據(jù)DPPH自由基的清除量來評價[20]。由圖4、5可知,不同部位的多糖對DPPH自由基的清除能力不同,槐角果皮和種子多糖的質(zhì)量濃度分別為494.08,464.02 μg/mL時,清除率分別為15.69%,54.71%,說明種子多糖對DPPH自由基的清除效果優(yōu)于果皮多糖的。VC在25 μg/mL時清除率為86.24%,表明2種多糖的清除效果不及VC。

    圖2 槐角果皮、種子多糖對ABTS自由基的清除作用

    Figure 2 Scavenging activity of polysaccharides of sophora fructus peel, seeds on ABTS radical

    圖3 VC對ABTS自由基的清除作用Figure 3 Scavenging activity of VC on ABTS radical

    圖4 槐角果皮、種子多糖對DPPH自由基的清除作用

    Figure 4 Scavenging activity of polysaccharides of sophora fructus peel, seeds on DPPH radical

    圖5 VC對DPPH自由基的清除作用Figure 5 Scavenging activity of VC on DPPH radical

    2.3.3 槐角果皮和種子多糖對超氧陰離子自由基的清除作用 由圖6、7可知,隨著多糖和VC質(zhì)量濃度的增加,對超氧陰離子自由基的清除率均在增高,在測定范圍內(nèi)呈量效關(guān)系。在清除率為35%時,槐角果皮和種子多糖的質(zhì)量濃度分別為494.08,154.67 μg/mL,而VC溶液在200 μg/mL時清除率為29.76%,說明對超氧陰離子自由基的清除能力種子多糖最優(yōu),VC次之,果皮多糖相對最弱。

    2.3.4 槐角果皮和種子多糖對亞鐵離子的螯合能力 螯合某些金屬離子是抗氧化活性的一個重要機制,后者催化氫過氧化物的降解以及Fenton類反應(yīng),從而抑制了氧化損傷,在天然產(chǎn)物抗氧化活性評價中亞鐵離子螯合能力的測定有著非常重要的意義[21]。由圖8、9可知,隨著果皮和種子多糖及EDTA質(zhì)量濃度的增大,對亞鐵離子的螯合率逐漸增大。當(dāng)螯合率為31%時,槐角果皮、種子多糖的質(zhì)量濃度分別為329.39,154.67 μg/mL,而當(dāng)濃度為200 μg/mL時,EDTA螯合率達(dá)98.73%,對亞鐵離子的螯合能力的大小順序為EDTA>種子多糖>果皮多糖。

    圖6 槐角果皮、種子多糖對超氧陰離子自由基的清除作用

    Figure 6 Scavenging activity of polysaccharides of sophora fructus peel, seeds on superoxide anion radical

    圖7 VC對超氧陰離子自由基的清除作用Figure 7 Scavenging activity of VC on superoxide anion radical

    圖8 槐角果皮、種子多糖對亞鐵離子的螯合能力

    Figure 8 Chelating ability of polysaccharides of sophora fructus peel, seeds on ferrous ion

    圖9 EDTA對亞鐵離子的螯合能力Figure 9 Chelating ability of EDTA on ferrous ion chelating ability

    2.4 吸濕保濕能力

    2.4.1 槐角果皮和種子多糖的吸濕性 由圖10可知,在相對濕度為81%的環(huán)境中,隨著吸濕時間的延長,2種多糖、殼聚糖、甘油的吸濕率逐漸增大。在最初20 h內(nèi),多糖的吸濕率增加幅度較大,隨后槐角果皮、種子多糖及殼聚糖逐漸達(dá)到飽和狀態(tài),三者吸濕性能基本一致。在90 h時槐角果皮多糖、種子多糖,殼聚糖、甘油的吸濕率分別為12.31%,12.99%,12.38%,56.09%,說明多糖有一定的吸濕性,但弱于甘油。

    圖10 吸濕率隨時間變化的曲線Figure 10 Changes of moisture absorption rate for each sample with time changing

    2.4.2 槐角果皮和種子多糖的保濕性 置于干燥器底部的變色硅膠吸附環(huán)境中的水分,使其自身顏色由藍(lán)變紅,根據(jù)多糖水分降低的程度,確定其保濕性。由圖11可知,在硅膠環(huán)境中,各試樣的保濕率呈下降趨勢,在27 h時降幅均稍有減小,在70 h的監(jiān)測范圍內(nèi),槐角果皮多糖、種子多糖、殼聚糖、甘油的保濕性分別為31.73%,31.27%,14.83%,58.44%。說明槐角果皮和種子多糖保濕性能差異不大,二者保濕率低于甘油,而高于保濕劑殼聚糖,均表現(xiàn)出良好的保濕性能。

    3 結(jié)論

    本試驗以槐角果皮和種子作為研究對象,采用雙酶法提取多糖,測得槐角果皮中多糖(24.7%)的得率高于種子的(11.6%),通過酶法提取的槐角多糖高于文獻(xiàn)[22]報道的水浴加熱回流所提取的,說明酶法有利于多糖的提取。本研究結(jié)果表明,果皮和種子粗提取物中,多糖含量分別為72.39%和76.95%,說明粗多糖中含有一定的雜質(zhì),需要更進(jìn)一步分離純化。對多糖進(jìn)行紅外掃描,均具有多糖的特征吸收峰,種子多糖具有β-吡喃糖苷鍵,果皮多糖具有β-型和α-型2種糖苷鍵。

    圖11 保濕率隨時間變化的曲線Figure 11 Changes of moisture retention rate for each sample with time changing

    植物不同部位不同種類的多糖功能各不相同,生物活性也不同[23-24]。從試驗結(jié)果可以看出,種子多糖對ABTS自由基、DPPH自由基、超氧陰離子自由基、亞鐵離子螯合力均高于果皮多糖,可能與糖的種類和結(jié)構(gòu)有關(guān),需要更進(jìn)一步研究。多糖對自由基清除作用表明,種子多糖的清除活性優(yōu)于果皮多糖,對DPPH自由基和超氧陰離子自由基的半數(shù)清除濃度分別為417.76,397.71 μg/mL,與文獻(xiàn)[25]數(shù)據(jù)對比說明種子多糖具有很好的自由基清除活性。

    槐角果皮和種子多糖的吸濕保濕性能結(jié)果顯示,在相同的監(jiān)測時效內(nèi),槐角果皮多糖、種子多糖和殼聚糖三者的吸濕率基本一致,且均低于甘油;保濕性能方面,在39 h時槐角果皮多糖和種子多糖及甘油的保濕率均高于50%,均低于甘油而高于殼聚糖,可見,槐角果皮多糖和種子多糖具有良好的保濕作用。綜上所述,槐角果皮和種子多糖在食品中可以作為增稠劑、保水劑,在化妝品領(lǐng)域可以作為抗氧化劑和保濕劑。本研究僅對粗多糖清除幾種自由基的能力和吸濕保濕性能進(jìn)行了研究,后續(xù)將對其有效成分進(jìn)行分離、純化,為國槐產(chǎn)品的開發(fā)利用提供理論依據(jù)。

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