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    不同品種小麥籽粒中β-葡聚糖含量的比較研究

    2017-01-17 02:29:31白沙沙于佳立陳月曉崔亞娟
    中國食物與營養(yǎng) 2016年12期
    關(guān)鍵詞:葡聚糖試管緩沖液

    白沙沙,趙 萌,于佳立,陳月曉,崔亞娟

    (1北京市營養(yǎng)源研究所,北京 100069;2北京聯(lián)合大學(xué),北京 100094)

    不同品種小麥籽粒中β-葡聚糖含量的比較研究

    白沙沙1,趙 萌1,于佳立2,陳月曉1,崔亞娟1

    (1北京市營養(yǎng)源研究所,北京 100069;2北京聯(lián)合大學(xué),北京 100094)

    建立了酶解法(葡聚糖酶、β-葡萄糖苷酶、葡萄糖氧化酶和過氧化氫酶)測定小麥籽粒中的β-葡聚糖含量,對該方法的標(biāo)品測定回收率和加標(biāo)回收率進(jìn)行研究,利用該方法測定了8個品種小麥籽粒中β-葡聚糖含量,并分析其含量的差異性。結(jié)果表明:酶解法具有良好的測定結(jié)果;8個品種小麥籽粒中β-葡聚糖含量在0.44%~0.68%之間,小麥籽粒中β-葡聚糖含量由于品種和產(chǎn)地的不同而呈現(xiàn)一定的差異性,試驗(yàn)結(jié)果為從膳食中攝入β-葡萄糖提供了參考。

    小麥;β-葡聚糖;酶解法

    β-葡聚糖廣泛存在于植物、微生物和動物體內(nèi),具有抗腫瘤、抗炎、降低膽固醇、調(diào)節(jié)血糖、降血脂、提高人體免疫力等[1-5]多種生理功能,對慢性病的預(yù)防和調(diào)理具有重要意義。小麥及其制品是人們?nèi)粘I攀车闹饕任?,中國居民膳食指南推薦每人每日攝入量在250~400g[6],因此研究測定不同品種小麥籽粒中β-葡聚糖含量對篩選和培育富含β-葡聚糖的小麥品種具有指導(dǎo)作用,為從膳食中攝入β-葡聚糖提供了參考[7,8]。

    β-葡聚糖含量的測定方法主要有酶解法、苯酚-硫酸法、剛果紅法、熒光法、高效液相色譜法[9-15 ]等。酶解法測定谷物β-葡聚糖是利用特定的β-葡聚糖內(nèi)切酶酶解得到寡糖,經(jīng)葡萄糖苷酶水解后采用葡萄糖氧化酶/過氧化氫酶試劑測定葡萄糖的含量,該內(nèi)切酶主要是針對(1,3)、(1,4)糖苷鍵鏈接的β-葡聚糖,酶法專一性酶解β-葡聚糖,其測定含量準(zhǔn)確可靠,AOAC992.28[16]、AOAC995.16[17]方法和我國農(nóng)業(yè)標(biāo)準(zhǔn)NY/T2006-2011[18]測定谷物大麥及燕麥中β-葡聚糖含量均為酶解法。

    酶解法是利用葡聚糖酶專一性水解(1,3)、(1,4)-β-D-葡聚糖[19]生成寡糖,利用β-葡萄糖苷酶將寡糖水解成葡萄糖,葡萄糖氧化酶酶解葡萄糖生成葡萄糖酸和過氧化氫,在過氧化氫酶作用下過氧化氫與4-氨基安替比林氧化縮合生成紅色醌類化合物,510nm處測定吸光度值,其吸光度值與葡萄糖含量成正比,根據(jù)葡萄糖轉(zhuǎn)化β-葡聚糖脫水轉(zhuǎn)換因子可以求得β-葡聚糖含量。本研究以8個品種小麥籽粒為試驗(yàn)材料采用酶解法測定其β-葡聚糖含量,利用統(tǒng)計(jì)分析法確定8個品種小麥籽粒中β-葡聚糖含量的差異性。

    1 材料與方法

    1.1 材料與試劑

    1.1.1 小麥樣品制備 本實(shí)驗(yàn)選擇2015年夏季收獲的冬小麥,品種為:衡觀35(河南輝縣)、西農(nóng)979(河南輝縣)、濟(jì)麥22(河北邢臺)、小偃22(西安楊凌)、老麥16(河北邢臺)、周麥16(河南鶴壁)、小寶豐(河南鶴壁)和農(nóng)夫399(河北邯鄲)共8個品種。

    樣品制備:小麥?zhǔn)斋@脫粒除雜除塵后自然晾曬至干燥。干燥后的小麥籽粒用萬能粉碎機(jī)磨成全麥粉,過40目篩,烘干至恒質(zhì)量,備用。

    1.1.2 主要試劑 乙醇:分析純,北京化工廠;磷酸二氫鈉:分析純,北京化工廠;乙酸鈉:分析純,北京化工廠;酶試劑及葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)購自愛爾蘭Megazyme公司,其中葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)品濃度為1mg/mL,葡聚糖酶、β-葡萄糖苷酶、葡萄糖氧化酶-過氧化物酶緩沖液混合物均按照酶試劑說明進(jìn)行配置。葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)工作液:移取1mg/mL葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)品20、40、60、80、100μL于試管中,分別添加50mmol/L乙酸鈉緩沖液至200μL,得到試管中葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)品的質(zhì)量分別為20、40、60、80、100μg。試劑空白為200μL 50mmol/L乙酸鈉緩沖液。

    1.2 儀器和設(shè)備

    粉碎機(jī):A11 basic,德國IKA公司;高速冷凍離心機(jī):RXⅡ,日本HITACHI公司;漩渦振蕩器:XW-80A,上海醫(yī)科大學(xué)儀器廠;分光光度計(jì):722S,上海精密科學(xué)儀器有限公司;水浴鍋:DZKW-4六孔,北京中興偉業(yè)儀器有限公司。

    1.3 酶解處理

    精確稱取粉碎待測樣于試管中(精確至0.0001g)。向待測試管中加入0.2mL 50%乙醇溶液,漩渦震蕩分散;加入4.0mL磷酸鈉緩沖液,充分震蕩。將試管放入沸水浴中保持1min,漩渦震蕩數(shù)秒,沸水浴中繼續(xù)保持2min,漩渦震蕩。

    1.3.1 葡聚糖酶酶解 取出試管后于50℃水浴中保溫5min,添加0.2mL葡聚糖酶溶液,漩渦震蕩數(shù)秒,加蓋,50℃水浴保溫60min,其間將試管取出震蕩處理3~4次。此步驟葡聚糖酶將(1,3)、(1,4)-β-D-葡聚糖酶解生成寡糖。

    1.3.2 β-葡萄糖苷酶酶解 取出試管,向其中加入5mL 200mmol/L乙酸鈉緩沖液,混合均勻,室溫下冷卻,離心(1 000×g、10min),取上清液,備用。分別準(zhǔn)確移取0.1mL上清液于試管底部,向其中分別添加0.1mL β-葡萄糖苷酶溶液,反映空白添加0.1mL 50mmol/L乙酸鈉緩沖液,各試管在50℃下保溫10min。此步驟β-葡萄糖苷酶將寡糖水解成葡萄糖。

    1.3.3 顯色反映 分別移取3.0mL葡萄糖氧化酶-過氧化物酶緩沖液混合物至各試管,50℃下反應(yīng)20min,冷卻至室溫。葡萄糖氧化酶酶解葡萄糖生成葡萄糖酸和過氧化氫,在過氧化氫酶作用下過氧化氫與4-氨基安替比林氧化縮合生成紅色醌類化合物。

    1.4 比色測定

    以試劑空白調(diào)零,于510nm處測定吸光度值。

    1.5 計(jì)算

    按照式(1)計(jì)算樣品中β-葡聚糖含量(%):β-葡聚糖含量[18]=△A×F×94×10-4×0.9/W

    (1)

    式(1)中,△A:樣品吸光值與反應(yīng)空白吸光值的差值;F:吸光值轉(zhuǎn)化為μg葡萄糖的轉(zhuǎn)換因子;94:體積校正因子(從9.4mL吸取0.1mL用于分析);0.9:葡萄糖轉(zhuǎn)化為β-葡聚糖的脫水轉(zhuǎn)換因子;W:樣品質(zhì)量,g。

    1.6 數(shù)據(jù)分析

    利用SPSS數(shù)據(jù)分析軟件對實(shí)驗(yàn)結(jié)果進(jìn)行處理。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 標(biāo)準(zhǔn)曲線繪制

    精確移取1mg/mL葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)品0、20、40、60、80、100μL于6支試管中,分別添加50mmol/L乙酸鈉緩沖液至200μL,使得每管中葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)品的質(zhì)量為0、20、40、60、80、100μg。移取3.0mL葡萄糖氧化酶-過氧化物酶緩沖液混合物至各試管,在50℃水浴條件下反應(yīng)20min,取出冷卻至室溫。于510nm處以試劑空白(即0μg試管)調(diào)零,測定各試管吸光度值。吸光度A與葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)品質(zhì)量進(jìn)行線性回歸,得到回歸方程(附圖)。

    附圖 葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)曲線

    2.2 燕麥粉標(biāo)準(zhǔn)品的測定

    采用該方法測定β-葡聚糖標(biāo)示量為8%的燕麥粉標(biāo)準(zhǔn)品中β-葡聚糖含量,準(zhǔn)確稱取0.1g(精確至0.000 1g)燕麥粉標(biāo)準(zhǔn)品,平行測定3次,結(jié)果分別為8.13%、8.12%和7.93%,測定回收率分別為101.6%、101.5%和99.1%,說明該方法具有良好的測定回收率,能夠滿足實(shí)驗(yàn)需要。

    2.3 加標(biāo)回收率測定

    以8%含量燕麥粉標(biāo)準(zhǔn)品添加入空白樣品進(jìn)行加標(biāo)回收率試驗(yàn)。進(jìn)行3個標(biāo)準(zhǔn)添加水平的回收率試驗(yàn),每個添加水平重復(fù)測定3次,分別計(jì)算加標(biāo)回收率和標(biāo)準(zhǔn)偏差,β-葡聚糖3個水平的平均加標(biāo)回收率在98.2%~101.1%,標(biāo)準(zhǔn)偏差在1.86%~4.75%(表1),能夠滿足檢測實(shí)際樣品需要。

    表1 β-葡聚糖加標(biāo)回收試驗(yàn)結(jié)果 單位:%

    2.4 不同品種小麥籽粒β-葡聚糖含量的測定

    按照上述驗(yàn)證的酶解法分別對8個品種小麥籽粒制備的籽粒粉進(jìn)行β-葡聚糖含量的測定,每個品種進(jìn)行4次平行測定,統(tǒng)計(jì)4次測定結(jié)果的平均值和標(biāo)準(zhǔn)偏差。表2結(jié)果顯示,8個小麥品種β-葡聚糖含量在0.40%~0.71%,標(biāo)準(zhǔn)偏差范圍在1.19%~3.73%。其中衡觀35小麥籽粒中β-葡聚糖含量最低,為0.44%;β-葡聚糖含量最高的小麥品種為農(nóng)夫399,為0.68%,是衡觀35小麥籽粒中β-葡聚糖含量的1.6倍左右。為判斷8個小麥品種籽粒中β-葡聚糖含量的差異性,進(jìn)一步對測定結(jié)果進(jìn)行方差分析。

    表2 8個品種小麥籽粒中β-葡聚糖含量

    經(jīng)過SPSS16.0統(tǒng)計(jì)軟件對8個品種小麥籽粒中β-葡聚糖含量進(jìn)行方差分析,表3結(jié)果顯示,含量最低的衡觀35與其余7個品種在P<0.01水平均具有顯著差異;西農(nóng)979與濟(jì)麥22、小寶豐的β-葡聚糖含量差異不顯著,與其他5個品種在P<0.01水平具有顯著差異;濟(jì)麥22與老麥16的β-葡聚糖含量差異不顯著,與小偃22、小寶豐的β-葡聚糖含量在P<0.05水平具有顯著差異,與周麥16、農(nóng)夫399的β-葡聚糖含量在P<0.01水平具有顯著差異;小偃22與老麥16的β-葡聚糖含量差異不顯著,與周麥16、小寶豐、農(nóng)夫399的β-葡聚糖含量在P<0.01水平具有顯著差異;老麥16與周麥16、小寶豐、農(nóng)夫399的β-葡聚糖含量在P<0.01水平具有顯著差異;周麥16與小寶豐、農(nóng)夫399的β-葡聚糖含量在P<0.01水平具有顯著差異;小寶豐與農(nóng)夫399的β-葡聚糖含量在P<0.01水平具有顯著差異。

    采自河南輝縣的衡觀35和西農(nóng)979、河北邢臺的濟(jì)麥22和老麥16、河南鶴壁的周麥16和小寶豐,同一產(chǎn)地的不同品種在P<0.01水平具有顯著差異,品種的不同對小麥籽粒β-葡聚糖含量具有顯著的差異性。

    表3 8個品種小麥籽粒中β-葡聚糖含量差異顯著性

    3 結(jié)論

    本文建立了酶解法測定β-葡聚糖含量,并研究了該方法的標(biāo)品測定回收率和加標(biāo)回收率,通過對β-葡聚糖標(biāo)示量為8%的燕麥標(biāo)準(zhǔn)品進(jìn)行酶解測定,測定結(jié)果與標(biāo)準(zhǔn)值一致,說明酶分解測定β-葡聚糖含量具有良好的測定結(jié)果;通過樣品加標(biāo)回收測定回收率,低、中、高3個添加水平測得回收率在98.2%~101.1%之間,該方法穩(wěn)定、干擾少。

    通過酶解法對衡觀35、西農(nóng)979、濟(jì)麥22、小偃22、老麥16、周麥16、小寶豐和農(nóng)夫399共8個品種小麥籽粒中β-葡聚糖含量進(jìn)行測定,結(jié)果顯示,8個品種小麥籽粒中β-葡聚糖含量在0.40%~0.71%之間。

    對8個品種小麥籽粒β-葡聚糖含量的差異性分析得到:西農(nóng)979與濟(jì)麥22、小寶豐的β-葡聚糖含量差異不顯著;濟(jì)麥22與老麥16的β-葡聚糖含量差異不顯著;小偃22與老麥16的β-葡聚糖含量差異不顯著;其他品種間β-葡聚糖含量均具有一定的顯著性差異。進(jìn)一步分析得到同一產(chǎn)地的不同品種間β-葡聚糖含量存在顯著差異,說明品種的不同是產(chǎn)生β-葡聚糖含量差異的因素。

    4 討論

    酶解法測定小麥籽粒中β-葡聚糖含量的文章未見報道,本研究8種小麥籽粒中β-葡聚糖含量測定結(jié)果在0.40%~0.71%,與單賀年[20]利用HPGPC法(高效凝膠滲透色譜法)測定不同品種小麥β-葡聚糖含量范圍在0.42%~0.61%具有一致性。小麥中β-葡聚糖含量雖低于燕麥和大麥[19]等谷物中β-葡聚糖含量(燕麥3%~7%,大麥5%~11%),基于小麥制品的日攝取量大,篩選和育種β-葡聚糖含量較高的小麥品種對慢性病的預(yù)防和調(diào)理具有重要意義。

    本研究對小麥籽粒中β-葡聚糖含量的測定結(jié)果為進(jìn)一步研究小麥籽粒不同組織結(jié)構(gòu)中(如麩皮、胚乳、糊粉層等)β-葡聚糖的含量提供了基礎(chǔ),進(jìn)一步測定和分析小麥籽粒不同組織結(jié)構(gòu)β-葡聚糖含量,為小麥深加工和開發(fā)β-葡聚糖功能性產(chǎn)品,促進(jìn)谷物β-葡聚糖在食品工業(yè)中的應(yīng)用具有的指導(dǎo)意義?!?/p>

    [1]蔡成剛,蔣新龍,蔣昌海.β-葡聚糖結(jié)構(gòu)功能與開發(fā)研究進(jìn)展[J].農(nóng)產(chǎn)品加工學(xué)刊,2011,9:114-117.

    [2]Judith H,Daniel J S,Kay M B.Physiological responses of men and women to barley and oat extracts(Nu-trimx).II.Comparision of glucose and insulin response[J]. Cereal Chemistry,2003,80(3):80-83.

    [3]Tapola N,et al.Glycemic responses of oat bran products in type 2 diabetic patients[J].Nutrition,Metabolism & Cardiovascular Diseases,2005,15:225-261.

    [4]Volman J J,et al.Dietary modulation of immune function by β-glucans[J]. Physiology & Behavior,2008,94:276-284.

    [5]El Khoury D,Cuda C,Luhovyy L L,et al.Beta Glucan:Health Benefits in Obesity and Metabolic Syndrome[J]. Journal of Nutrition and Metabolism,2012,12:851362.

    [6]中國營養(yǎng)學(xué)會.《中國居民膳食指南》[M].抗薩:西藏人民出版社,2011.

    [7]Adam M B,Brigid T, Kristin K,et al.Major Cereal Grain Fibers and Psyllium in Ralation to Cardiovascular Health[J].Nutrients,2013,5:1471-1487.

    [8]金玉紅,張開利,張興春,等.小麥組分含量與小麥芽β-葡聚糖酶活力的相關(guān)性分析[J].中國糧油學(xué)報,2008,23(5):28-32.

    [9]熊茉君,王 新,張紅霞.β-葡聚糖含量測定方法的比較[J].華西藥學(xué)雜志,2005,20(5):438-440.

    [10]張娟,杜先鋒,饒硯琴.剛果紅法測定燕麥中β-葡聚糖含量的研究[J].安徽農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報,2007,34(1):23-26.

    [11]連喜軍,魯曉翔,劉勤生,等.熒光素鈉法測定β-葡聚糖含量的研究[J].食品研究與開發(fā),2006,27(10):116-119.

    [12]徐建光,梁達(dá)奉,曾練強(qiáng),等.酶解法定量測定葡聚糖的研究[J].化學(xué)與生物工程,2010,27(4):92-94.

    [13]連喜軍,魯曉翔,蔡保松.酶法測定大麥提取物葡聚糖含量研究[J].糧食與油脂,2006,5:12-15.

    [14]宋 萍,李文俊.青稞秸稈中β-葡聚糖含量的測定[J].特產(chǎn)研究,2009,1:50-52.

    [15]呂耀昌,王強(qiáng),趙煒,等.燕麥、大麥中β-葡聚糖的酶法測定[J]. 食品科學(xué),2005,26(1):180-182.

    [16]AOAC Official Method 992.28.(1→3)(1→4)-Beta-D-Glucans in Oat and Barley Fractions and Ready-To-Eat Cereals:1992.

    [17]AOAC Official Method 995.16.β-D-Glucan in Barley and Oats Streamlined Enzymatic Method:1995.

    [18]中華人民共和國農(nóng)業(yè)部農(nóng)產(chǎn)品加工局.NY/T2006-2011.谷物及其制品中β-葡聚糖含量的測定[S].

    [19]申瑞玲,何俊,趙學(xué)偉.谷物β-葡聚糖的提取方法、化學(xué)結(jié)構(gòu)及功能性質(zhì)研究進(jìn)展[J]. 食品科學(xué),2009,30(3):288-291.

    [20]單賀年,鞠興榮,袁建,等.HPGPC測定麥類中β-葡聚糖含量[J].糧食與食品工業(yè),2014,21(6):72-77.

    (責(zé)任編輯 李婷婷)

    Content Comparison of β-Glucan in Different Varieties of Wheat Grain

    BAI Sha-sha1,ZHAO Meng1,YU Jia-li2,CHEN Yue-xiao1,CUI Ya-juan1

    (1Beijing Research Institute for Nutritional Resources,Beijing 100069,China;2Beijing City University,Beijing 100094,China)

    The Enzymatic Hydrolysis Method including dextranase,β-glucosidase,glucose oxidase and catalase was established for the determination on the content of β-glucan in wheat grain.The standard determination recovery rate and sample added recovery rate of the method were investigated and the differences of the β-glucan contents from 8 varieties of wheat grain were compared.The results showed that the Enzymatic Hydrolysis Method had good determination results,and the β-glucan content of 8 varieties of wheat grain were between 0.44% and 0.68%.Differencs were found in the β-glucan content among different varieties.This results provided new insight into the consumption of β-glucan from diet.

    wheat;β-glucan;Enzymatic Hydrolysis Method

    北京市級財政項(xiàng)目“食物中四類植物化學(xué)物檢測技術(shù)的開發(fā)改進(jìn)及植物化學(xué)物配方食品加工方法研究”(項(xiàng)目編號:PXM2014_178102_000011)。

    白沙沙(1987— ),女,碩士,中級工程師,研究方向:食品分析。

    崔亞娟(1979— ),女,博士,研究員,研究方向:食品分析。

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