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    紫色胡蘿卜中花青素的提取、分離及抗氧化活性研究

    2016-12-13 19:21:26虎春艷趙聲蘭劉海鷗林玉萍
    關(guān)鍵詞:花青素抗氧化

    虎春艷 趙聲蘭 劉海鷗 林玉萍

    【摘 要】 目的:從紫色胡蘿卜中提取、分離花青素,并對提取所得的花青素進行體外抗氧化活性研究。方法:以維生素C作為陽性對照,研究不同濃度的花青素對·OH 、H2O2、O2-·的清除效果。結(jié)果:從紫色胡蘿卜提取所得的花青素對·OH 、H2O2、O2-·均有較好的清除率。結(jié)論:紫色胡蘿卜中分離提取的花青素有較好的抗氧化活性。

    【關(guān)鍵詞】 紫色胡蘿卜;花青素;抗氧化;提取分離

    【中圖分類號】R2842 【文獻標志碼】 A 【文章編號】1007-8517(2016)20-0033-03

    紫色胡蘿卜(Purple Carrot)為十字花科蘿卜屬植物,成熟于秋冬季節(jié)。紫色胡蘿卜富含多酚,維生素和β-胡蘿卜素等物質(zhì)外,還含有豐富的花青素(Anthocyanins)?;ㄇ嗨赜址Q花色素,是一類廣泛存在于植物中的水溶性天然色素, 屬黃酮類化合物[1],多以糖苷的形式存在,也稱花色苷。從紅葡萄渣中提取的葡萄皮紅是最早且最豐富的花青素, 它于1879年在意大利上市[2]。花青素作為一種天然食用色素,安全、無毒、資源豐富,而且具有一定營養(yǎng)和藥理作用,在食品、 化妝品和醫(yī)藥等方面有著巨大的應用潛力。

    研究發(fā)現(xiàn),紫色胡蘿卜中所含的花青素主要為穩(wěn)定性較高且生物活性較好的?;ㄇ嗨兀浜空伎偦ㄇ嗨氐?0%以上[3]?;ㄇ嗨啬軠p少動脈粥樣硬化[4-5],具有抗腫瘤[7],抗菌消炎[7],以及清除自由基的抗氧化作用[4,6,8]。在機體的新陳代謝過程中會產(chǎn)生超氧自由基、羥自由基等基團都是很多生理和病理的積極參與者[9]。國內(nèi)對紫色胡蘿卜的研究較少,導致營養(yǎng)價值極高的紫色胡蘿卜一直沒有被大眾所認識[10]。而歐美等國將紫色胡蘿卜作為一種保健食品被大量種植,紫色胡蘿卜汁也深受大眾喜愛[3-7]。本研究系統(tǒng)研究了紫色胡蘿卜中花青素的提取、分離及體外抗氧化活性,為紫色胡蘿卜的深度開發(fā)研究奠定一定的基礎。

    1 儀器與材料

    11 儀器 UV-2450型紫外可見分光光度計(島津企業(yè)管理(中國)有限公司);CP214型號電子天平(奧豪斯儀器(上海)有限公司); TG16-WS高速臺式離心機(長沙湘儀離心機儀器有限公司);HHS11-4R型電熱恒溫水浴鍋(上海醫(yī)療器械五廠)。

    12 材料 硫酸亞鐵、鄰二氮菲、過氧化氫30%、磷酸二氫鈉、磷酸氫二鈉、鄰苯三酚、三(羥甲基)氨基甲烷(Tris)、硫酸亞鐵、無水乙醇、濃硫酸、濃鹽酸等均為國產(chǎn)分析純,為汕頭市達濠精細化學品有限公司產(chǎn)品;紫色胡蘿卜購買自云南滇東北地區(qū)。

    2 方法

    21 花青素的提取 取一定量的新鮮紫色胡蘿卜,去芯、充分搗碎后稱量放入燒瓶內(nèi),加入80%的乙醇(料液比為1∶2),調(diào)節(jié)pH為3~4,在50℃水浴下回流提取1h,趁熱抽濾,濾渣再用80%的乙醇回流提取30min,趁熱抽濾。合并提取液,并將其旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)至無醇味,真空冷凍干燥得粗品。

    22 花青素的分離、純化 采用AB-8型大孔樹脂對粗提的花青素進行純化。其純化流程為:花青素粗體物→AB-8型大孔樹脂吸附1 h→用蒸餾水洗脫糖類、色素等→10%的乙醇(pH=4)洗脫雜質(zhì)→30%乙醇洗脫雜質(zhì)(pH=3~4)→80%乙醇洗脫(pH=3~4)→旋蒸(40℃、30r/min)→花青素純化液→真空冷凍干燥→樣品低溫(4℃以下較好)保存?zhèn)溆谩?/p>

    23 不同濃度的待測液對·OH的清除率 羥自由基清除率的測定方法參考文獻[11-12],10mL具塞試管中加不同濃度的待測液1mL,依次加入1mL 075mmol/L FeSO4,1mL 075mmol/L鄰二氮菲,最后加入001% H2O21mL,37℃保溫1h,4mL蒸餾水調(diào)零,在536nm下測定吸光度。空白管用1mL蒸餾水代替花青素,1mL蒸餾水代替001% H2O2,損傷管用1mL蒸餾水代替花青素,樣品空白管用1mL蒸餾水代替001% H2O2。

    OH清除率=(1-A2-A3A0-A1)×100/%

    式中,A0為空白管的吸光值;A1為損傷管的吸光值;A2為樣品空白管的吸光值;A3為樣品對照管的吸光值。

    24 不同濃度的待測液對H2O2的清除率 測定方法參考文獻[12-13],25mL具塞試管中加不同濃度的待測液1mL,加入40mmol/L H2O2 25mL,加入65mL蒸餾水,室溫反應10min后在230nm下測定吸光度??瞻坠苡?mL蒸餾水代替花青素,樣品空白管用25mL蒸餾水代替H2O2 。

    H2O2清除率=A0-(A1-A2)A0

    式中, A0為不加花青素的吸光度;A1為樣品對照組的吸光度即加花青素又加40mmol/L H2O2;A2為不加40mmol/L H2O2的吸光度。

    25 不同濃度的待測液對O2-·的清除率 采用鄰苯三酚自氧化法產(chǎn)生O2-·,加不同濃度待測液進行清除,測定方法參考文獻[8-12],并略做修改。10mL具塞試管中加入15mL 005mol/L Tris-HCl緩沖溶液(pH=82),15mL蒸餾水,搖勻,25℃水浴中保溫20min,取出后立即加入25℃預熱過的3mmol/L鄰苯三酚05mL(以10mmol/L的HCl配制,空白管用10mmol/L的HCl代替鄰苯三酚)迅速搖勻后倒入比色杯中,在325nm處測定吸光度,計算線性范圍內(nèi)每1min吸光度的增加值,即為鄰苯三酚的自氧化速率ΔA對照。測定待測樣品時加入鄰苯三酚前先加入一定量(15mL)的待測物(不同濃度的花青素),同時減少同體積的蒸餾水,其余操作同上,測出ΔA樣品。

    按上式計算出超氧陰離子的清除率。

    3 結(jié)果與討論

    31 花青素的提取、分離 提取液制備過程中需操作迅速,減少花青素的氧化,提高提取率。先處理好樹脂備用,花青素提取液制備好后立即上樣。質(zhì)量濃度為3g/mL上樣速率為2mL/min,洗脫速率為2mL/min,洗脫體積隨上樣體積增大而增大,可根據(jù)顏色變化進行下樣,即顏色由暗紫色變?yōu)闇\紫色,紫色部分即為有效的花青素。240 g新鮮的紫色胡蘿卜用乙醇提取,經(jīng)大孔樹脂洗脫純化后,再經(jīng)旋蒸冷凍干燥可得花青素樣品約03g。由此可知花青素的提取率為0125%。

    由圖1可知,紫色胡蘿卜提取物最大吸收波長在526nm,而520~530nm為花色苷類物質(zhì)的特征吸收峰,與文獻報道花青素的紫外-可見吸收光譜一致[14]。

    32 不同濃度的待測液對·OH的清除率 由圖2知,隨著花青素和Vc濃度的增大,其對·OH的清除率逐漸增大,并且在同濃度下,Vc對·OH的清除率要稍高于紫色胡蘿卜中花青素對·OH的清除率?;ㄇ嗨貪舛葹?5mg/mL時,其清除率達到了50%以上;花青素濃度為30mg/mL時,其對·OH的清除率為87%,由此可以知道從紫色胡蘿卜中提取的花青素具有較強的抗氧化活性。Vc在06mg/mL時清除率就已經(jīng)達到50%以上,30mg/mL時對·OH的清除率能達到94%。在較高濃度下,花青素和Vc對·OH的清除率比較接近。

    33 不同濃度的待測液對H2O2的清除率 由圖3可知,隨著花青素和Vc的濃度不斷增大,其對H2O2的清除率也不斷增大,花青素的清除率呈現(xiàn)出良好的線性關(guān)系。在花青素濃度為15mg/mL時,花青素對H2O2的清除率就能到達50%,但Vc在其濃度為20mg/mL時,對H2O2的清除率才能達到50%以上; 當濃度低于20mg/mL時,花青素對H2O2的清除率高于Vc對H2O2的清除率;當濃度大于20mg/mL時,花青素對H2O2的清除率低于Vc對H2O2的清除率。

    34 不同濃度的待測液對O2-·的清除率 由圖4、5可知,花青素對O2-·的清除率隨濃度的增大而增大,當花青素的濃度為為15mg/mL時達到50%以上,在濃度為20mg/mL時,其對O2-·的清除率達到90%。濃度越大,對O2-·的清除效果越好。當濃度為008mg/mL時,Vc對O2-·的清除率達到了9667%,在004mg/mL時達到50%以上?;ㄇ嗨貪舛葹?41mg/mL對O2-·的清除率相當于004mg/mL的Vc對O2-·的清除率。從數(shù)據(jù)可看出,Vc對O2-·清除率高于紫色胡蘿卜中的花青素對O2-·清除率。

    4 結(jié)論

    本實驗研究了紫色胡蘿卜中花青素的提取、分離,并對所得花青素進行抗氧化活性的研究。結(jié)果表明,紫色胡蘿卜中提取所得的花青素有很好的抗氧化活性,但其抗氧化活性沒有同濃度的維生素C的活性高,這可能是在花青素的提取分離過程中的部分環(huán)節(jié),導致部分花青素聚集體解離、失去了活性。通過該研究,增加了花青素的來源,提高紫色胡蘿卜的利用價值;使花青素在醫(yī)藥和保健等領域能夠得到更好的應用;此外紫色胡蘿卜物美價廉,含有豐富的糖類物質(zhì),本身具有很好的口感,可以作為很好的保健飲品在日常飲食和市場中推廣。

    參考文獻

    [1]Anna R, Renato C N, Daniela V, et al. Modification of glass transition temperature through carbohydrates addition and anthocyanin and soluble phenol stability of frozen blueberry juices[J]. J Food Eng, 2003,56(2-3) :229 -231.

    [2]Joao RM A, Eleonora DA, Anja P, et al. Characterization of major enzymes and genes involved in flavonoid and proanthocyanidin biosynthesis during fruit development in strawberry (Fragaria×ananassa)[J]. Arch Biochem Biophys, 2007, 465(1) :61 -71.

    [3]Anne C K, Beverly A C, Steven J B, et al. Plasma and Urine Responses Are Lower for Acylated vs Nonacylated Anthocyanins from Raw and Cooked Purple Carrots [J]. Agric. Food Chem,2005,53: 6537-6542.

    [4]Ghiselli A, Nardini M, Baldi A, et al. Antioxidant activity of different phenolic fractions separated from an Italian red wine[J]. Agric. Food Chem,1998, 46: 361-367.

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