煙草染色體片段代換系的構(gòu)建與遺傳評(píng)價(jià)

童治軍 焦芳嬋 方敦煌 陳學(xué)軍 吳興富 曾建敏 謝 賀 張誼寒肖炳光

云南省煙草農(nóng)業(yè)科學(xué)研究院 / 煙草行業(yè)煙草生物技術(shù)育種重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室 / 國家煙草基因工程研究中心, 云南昆明 650021

煙草染色體片段代換系的構(gòu)建與遺傳評(píng)價(jià)

童治軍 焦芳嬋 方敦煌 陳學(xué)軍 吳興富 曾建敏 謝 賀 張誼寒肖炳光*

云南省煙草農(nóng)業(yè)科學(xué)研究院 / 煙草行業(yè)煙草生物技術(shù)育種重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室 / 國家煙草基因工程研究中心, 云南昆明 650021

以綜合性狀優(yōu)良的烤煙種質(zhì) Y3為輪回親本, 抗煙草黑脛病(0號(hào)和 1號(hào)生理小種)和赤星病的雪茄煙種質(zhì)Beinhart 1000-1及優(yōu)質(zhì)烤煙品種K326為供體親本, 連續(xù)回交并結(jié)合分子標(biāo)記輔助選擇, 構(gòu)建國內(nèi)外第一套由256個(gè)具有烤煙Y3遺傳背景并漸滲有Beinhart 1000-1和K326染色體片段株系代換系群體。該群體攜帶377個(gè)代換片段, 分布于煙草24條連鎖群上。每個(gè)株系攜帶1~5個(gè)代換片段, 代換片段長度介于0.05~36.88 cM, 平均長度7.75 cM。代換片段重疊累加總長度為2922.57 cM, 是煙草基因組總長度的2.61倍。代換片段覆蓋總長度為1114.32 cM, 煙草基因組覆蓋率為99.45%。本研究構(gòu)建的片段代換系可用于煙草基因定位、復(fù)雜性狀的QTL分析和標(biāo)記輔助選擇育種。

煙草(Nicotiana tabacum L.); 染色體片段代換系; SSR; 分子標(biāo)記輔助選擇

煙草是我國重要的經(jīng)濟(jì)作物之一, 其品種的選育雖取得了一定成績, 但與 K326等國外引進(jìn)的優(yōu)良品種相比仍有一定差距, 無法完全滿足國內(nèi)煙葉生產(chǎn)對(duì)品種的需求[1]。煙草的產(chǎn)量、品質(zhì)和抗性等重要育種目標(biāo)性狀絕大部分為多基因控制的數(shù)量性狀, 遺傳方式復(fù)雜, 受多基因位點(diǎn)和環(huán)境的共同影響, 且數(shù)量性狀位點(diǎn)(QTL)的鑒定難度較大[2-6]。利用傳統(tǒng)的分離群體, 因?yàn)閿?shù)量性狀本身的復(fù)雜性, 及分離群體遺傳背景的復(fù)雜性, 很難取得QTL定位的滿意結(jié)果。染色體片段代換系(chromosome segment substitution lines, CSSL)是在受體的遺傳背景中代換入某個(gè)或某些供體親本的染色體片段, 并利用回交和分子標(biāo)記輔助選擇(MAS)技術(shù)建立的覆蓋作物整個(gè)基因組的一系列近等基因系[7-9]。與分離群體相比,其遺傳背景簡單、群體遺傳穩(wěn)定、QTL定位及遺傳效應(yīng)分析準(zhǔn)確, 在番茄[10-12]、油菜[13]、萵苣[14]、大麥[15]、小麥[16]、棉花[17]、黃瓜[18-20]、水稻[21-23]等作物中得到了廣泛應(yīng)用, 同時(shí), 也是QTL的精確定位、挖掘和利用新基因資源、實(shí)現(xiàn)分子標(biāo)記技術(shù)和作物育種鏈接的理想材料[24]。

迄今, 國內(nèi)外煙草染色體片段代換系的相關(guān)研究尚未見報(bào)道。雖然煙草基因組測序?yàn)闃?gòu)建高密度煙草分子標(biāo)記遺傳圖譜奠定了基礎(chǔ)[25-28], 但因其遺傳基礎(chǔ)狹窄, 栽培品種間多態(tài)性低[29-33], QTL定位等基礎(chǔ)研究相對(duì)落后; 目前僅有的少數(shù)QTL定位[2-6,34]主要基于初級(jí)定位群體, 其結(jié)果無法直接應(yīng)用于育種研究。鑒于此, 本研究利用優(yōu)質(zhì)烤煙品種 K326和抗煙草黑脛病(0號(hào)和1號(hào)生理小種)、赤星病的雪茄煙種質(zhì)Beinhart 1000-1為供體親本, 優(yōu)良烤煙品種Y3為受體親本, 經(jīng)多代回交、自交, 并結(jié)合SSR標(biāo)記輔助選擇構(gòu)建一套煙草染色體片段代換系, 對(duì)K326和Beinhart 1000-1中優(yōu)良品質(zhì)和抗病的QTL (基因)定位和轉(zhuǎn)育、烤煙品種改良及促進(jìn)煙草分子育種具有重要意義。

1 材料與方法

1.1 供試材料

供試的三份煙草材料均由云南省煙草農(nóng)業(yè)科學(xué)研究院提供(表1)。受體親本Y3是從津巴布韋引進(jìn)的烤煙種質(zhì)資源, 該資源生育期適中、株型優(yōu)良、節(jié)距較大、葉數(shù)多且寬、鮮煙葉柔軟, 但葉片較薄、香氣質(zhì)中等、香氣量欠足且易感煙草黑脛病和葉斑病害(如赤星病等)。供體親本K326香氣質(zhì)好、香氣量足、燃燒性強(qiáng), 是目前世界上種植區(qū)域最廣、種植面積較大的烤煙品種; 供體親本 Beinhart 1000-1是葉片肥厚且抗煙草黑脛病0、1號(hào)生理小種和煙草赤星病的雪茄煙種質(zhì)。

表1 用于構(gòu)建染色體片段代換系的親本來源及類型Table1 Origin and type of parents used for development of CSSLs

1.2 染色體片段代換系的構(gòu)建

如圖1所示, 2013年在云南省煙草農(nóng)業(yè)科學(xué)研究院研和試驗(yàn)基地(云南省玉溪市)溫室, 以烤煙種質(zhì)Y3為受體親本, 與烤煙品種K326和雪茄煙種質(zhì)Beinhart 1000-1分別雜交獲得F1, 再以Y3為輪回親本回交, 獲得2個(gè)分別含 300個(gè)單株的回交一代群體。從2014年1月(BC2F1)開始對(duì)導(dǎo)入的供體片段篩選。即在前期已構(gòu)建的兩張煙草遺傳圖譜的24個(gè)連鎖群上每10~20 cM選取一個(gè)標(biāo)記, 共計(jì)100個(gè)SSR標(biāo)記(表2), 對(duì)2個(gè)群體中的各單株分別進(jìn)行代換片段的追蹤和檢測。僅含有 1個(gè)代換片段的單株直接自交純化建立單片段代換系, 而含有多個(gè)供體染色體片段( >5個(gè)片段)的單株繼續(xù)回交并結(jié)合MAS進(jìn)行前景和背景篩選。2014年6月, 將從BC2F1挑選出的240個(gè)株系(每個(gè)群體120個(gè)株系)播種組成1200 株BC3F1群體。2014年12月, 從1200個(gè)BC3F1株系中篩選出 240個(gè)株系并種植成 1200株 BC4F1群體。2015年3月, 利用已構(gòu)建的2張煙草圖譜中共有的416個(gè)SSR標(biāo)記對(duì)1200株BC4F1單株進(jìn)行代換片段的追蹤和檢測。至2015年12月, 篩選獲得256個(gè)含有1~5個(gè)供體片段的煙草染色體片段代換系并分別自交得到BC4F2群體。2016年2月, 再利用416個(gè)標(biāo)記對(duì)2560個(gè)BC4F2單株(每個(gè)株系隨機(jī)選10株)進(jìn)行供體片段的追蹤和檢測, 直至篩選獲得穩(wěn)定、純合的煙草染色體(單)片段代換系。

1.3 基因組DNA的提取及代換系基因型的分析

取煙草幼嫩葉片, 提取基因組 DNA參考Maguire等[35]的方法略作修改。參照Tong等[2-3,28]的SSR標(biāo)記分析及非變性聚丙烯酰胺凝膠電泳檢測方法。為了構(gòu)建煙草染色體片段代換系, 前期利用公共數(shù)據(jù)庫 NCBI上公開的普通煙草基因組序列數(shù)據(jù)[Nicotiana tabacum (K326), http://www.ncbi.nlm.nih.gov/Traces/wgs/?val=AWOJ01]開發(fā)了 13 645對(duì)煙草SSR標(biāo)記[27-28]; 并以K326、Beinhart 1000-1為供體親本與受體親本Y3組配的BC1F1為作圖群體,構(gòu)建了2張分別包含626個(gè)和562個(gè)標(biāo)記位點(diǎn)的SSR標(biāo)記遺傳圖譜(數(shù)據(jù)尚未公開), 2張圖譜中共有SSR標(biāo)記416個(gè), 且較均勻分布于24個(gè)連鎖群上(表2)。

圖1 煙草CSSLs群體構(gòu)建程序Fig.1 Procedure for developing CSSLs in tobacco

1.4 代換系的評(píng)價(jià)

根據(jù)已構(gòu)建的煙草遺傳圖譜上SSR標(biāo)記間的遺傳距離來估算染色體片段長度, 若標(biāo)記的相鄰基因型相同, 則忽略相鄰標(biāo)記區(qū)間的雙交換事件, 兩標(biāo)記間的區(qū)段為相同的標(biāo)記基因型; 若標(biāo)記的相鄰基因型不同, 則無多態(tài)性的標(biāo)記與有多態(tài)性標(biāo)記的中點(diǎn)為染色體代換片段的末端, 即認(rèn)為這 2個(gè)標(biāo)記基因型分別組成這個(gè)區(qū)間的1/2, 代換片段的長度按已構(gòu)建的遺傳圖譜中的遺傳距離來計(jì)算[36]。

利用MapChat 2.20軟件構(gòu)建全基因組的圖示基因型, 直觀顯示代換片段的位置和大小, 并分別累計(jì)來自供體親本Beinhart 1000-1和K326的染色體片段總長度, 計(jì)算其占受體基因組的比例。

2 結(jié)果與分析

2.1 SSR標(biāo)記的選擇

以已構(gòu)建的 2張遺傳圖譜為基礎(chǔ), 每隔 10~20 cM左右選擇1個(gè)SSR標(biāo)記, 共選擇了100個(gè)SSR標(biāo)記, 在 BC2F1和 BC3F1世代中進(jìn)行供體片段的追蹤和檢測。其中, 第5、第14、第17和第18連鎖群上標(biāo)記最少, 有3個(gè)標(biāo)記。第2、第13、第19和第22連鎖群上標(biāo)記最多, 有11個(gè)標(biāo)記。SSR標(biāo)記間最小距離為0.76 cM, 最大距離為41.03 cM, 平均距離為11.89 cM。從BC4F1開始, 利用兩張圖譜中共有的416個(gè)標(biāo)記進(jìn)行代換片段的檢測與篩選。其中, 第 5連鎖群上標(biāo)記最少, 有7個(gè)標(biāo)記; 第2連鎖群上標(biāo)記最多, 有35個(gè)標(biāo)記。SSR標(biāo)記間最小距離為0.05 cM, 最大距離為36.88 cM, 平均距離為7.75 cM。

2.2 代換片段的遺傳評(píng)價(jià)

通過3個(gè)世代(BC2F1、BC3F1和BC4F1)的分子標(biāo)記輔助選擇, 篩選出由 256個(gè)單株組成的一套分別含有烤煙K326和雪茄煙Beinhart 1000-1導(dǎo)入片段的烤煙染色體片段代換系(圖2)。其中, 含有 K326片段的代換系有 131個(gè)株系, 含有 Beinhart 1000-1片段的代換系有 125個(gè)株系。在篩選出的 256份BC4F1單株中, 單片段代換單株有31個(gè), 2~4片段代換單株有183個(gè), 5片段代換單株有42個(gè)。其中, 具有烤煙 K326片段的代換系中, 單片段代換單株有17個(gè), 2~4片段代換單株有95個(gè), 5片段代換單株有19個(gè); 具有雪茄煙Beinhart 1000-1片段的代換系中,單片段代換單株有14個(gè), 2~4片段代換單株有88個(gè), 5片段代換單株有23個(gè)。

從表3和圖2可看出, 煙草基因組導(dǎo)入的377個(gè)代換片段總長度為2922.57 cM, 長度范圍為0.05~ 36.88 cM, 平均長度為7.75 cM, 最長的代換片段位于第13連鎖群上, 最短的代換片段位于第20連鎖群上的中下部。其中, 第4連鎖群代換片段的總長最大, 為223.53 cM; 第16連鎖群代換片段的總長最小, 為50.38 cM。具有烤煙K326片段的代換系中導(dǎo)入的215個(gè)代換片段總長度為1578.91 cM, 長度范圍為0.05~25.69 cM, 平均長度為7.34 cM。具有雪茄煙Beinhart 1000-1片段的代換系中導(dǎo)入的162個(gè)代換片段總長度為1343.66 cM, 長度范圍為0.06~36.88 cM,平均長度為8.29 cM。

377個(gè)代換片段在煙草24條連鎖群上的分布不等, 各連鎖群平均導(dǎo)入15~16個(gè)片段。其中, 第2連鎖群的代換片段數(shù)最多, 為35個(gè), 其次是第1連鎖群的29個(gè)片段; 第16號(hào)連鎖群代換片段數(shù)目最少, 為5個(gè)。215個(gè)具有烤煙K326片段的代換系中, 第2連鎖群的代換片段數(shù)最多, 為21個(gè), 其次是第1連鎖群的16個(gè)片段; 第16連鎖群代換片段數(shù)目最少, 為 2個(gè)。162個(gè)具有雪茄煙 Beinhart 1000-1片段的代換系中, 同樣是第 2連鎖群的代換片段數(shù)最多, 為14個(gè), 其次是第1連鎖群的13個(gè)片段; 第16連鎖群代換片段數(shù)目最少, 僅有2個(gè)。

代換片段在煙草基因組 24條連鎖群上覆蓋了1114.32 cM 的距離, 覆蓋率為 99.45% (1114.32/ 1120.45)。各連鎖群覆蓋率雖有不同, 但均在87.5%以上。其中, 有21條連鎖群上的代換片段重疊后覆蓋率為100%, 而3個(gè)第8、第9和第19連鎖群上分別存在12.49% (4.60 cM)、1.77% (1.00 cM)和1.94% (0.53 cM)的區(qū)域未被覆蓋(表3)。具有烤煙K326片段的代換系中, 導(dǎo)入的供體片段覆蓋煙草基因組長度為1048.28 cM, 覆蓋率為93.56%。其中, 有11條連鎖群上的代換片段重疊后覆蓋率達(dá) 100.00%, 剩余的 13條連鎖群中的覆蓋率范圍為 64.65%~ 99.34%。具有雪茄煙Beinhart 1000-1片段的代換系中, 代換片段覆蓋煙草基因組長度為989.20 cM, 覆蓋率為 88.29%。其中, 代換片段重疊后覆蓋第 1、第21和第24連鎖群100%, 未能達(dá)到全覆蓋的21條連鎖群上代換片段覆蓋率范圍為 59.52%~98.48%(表3)。

表2 受體與供體親本間的煙草SSR標(biāo)記多態(tài)性Table2 Polymorphism between the recipient and donors detected by tobacco SSR markers

(圖2 )

圖2 256份代換系的代換片段在煙草基因組上的位置Fig.2 Genomic positions of the substituted segment in 256 CSSLs

3 討論

在染色體片段代換系構(gòu)建過程中, 親本選擇十分重要, 一般要選擇遺傳背景差異較大的[7]。已有的研究中的親本的選擇主要分為兩類, 一類是選擇供體親本與受體親本間親緣關(guān)系較遠(yuǎn)、遺傳背景差異較大且雙親(或其中之一)與生產(chǎn)應(yīng)用品種間存在較大的性狀差異, 此類染色體代換系群體較為適用于遺傳學(xué)研究, 但不易用于育種實(shí)踐[10-12,14-15,18]。另一類則是供體與受體親本間親緣關(guān)系較近且雙親均為當(dāng)前大面積推廣應(yīng)用的主栽品種, 此類代換系群體雖可較容易選擇出具有優(yōu)良代換系株系、并直接供育種實(shí)踐應(yīng)用, 但雙親間因親緣關(guān)系較近而不易篩選獲得足夠量的分子標(biāo)記, 從而影響代換系群體構(gòu)建的質(zhì)量[8-9,21-23]。本研究為獲得既有較高質(zhì)量又易于烤煙育種實(shí)踐應(yīng)用的煙草染色體片段代換系,在親本的選擇上兼顧了以下 3點(diǎn)。首先, 選擇的親本材料具較多優(yōu)點(diǎn), 沒有突出或致命的缺點(diǎn), 且在主要育種性狀上優(yōu)缺點(diǎn)能形成互補(bǔ)。受體親本(輪回親本) Y3是綜合性狀優(yōu)良但香氣量欠足、易感煙草黑脛病和葉斑病害的烤煙種質(zhì), 供體親本則分別具有優(yōu)良品質(zhì)、高抗煙草黑脛病和赤星病。其次, 親本(或親本之一)是能適應(yīng)當(dāng)?shù)厣鷳B(tài)條件且綜合性狀較好的推廣品種。本研究的 3個(gè)親本中, 受體親本Y3經(jīng)引種試驗(yàn), 證明其在我國的西南地區(qū)(尤其云南)具有較強(qiáng)的適應(yīng)性且綜合性狀優(yōu)良。供體親本K326是目前世界上種植區(qū)域最廣、面積較大且深受我國卷煙企業(yè)喜好的烤煙品種。供體親本 Beinhart 1000-1具有較高的煙草黑脛病(0號(hào)和1號(hào)生理小種)和赤星病抗性。最后, 親本間的遺傳差異較大。本研究所選用的 3份親本材料的生態(tài)類型差異較大,親緣關(guān)系相對(duì)較遠(yuǎn)。從地域上看, 親本 K326和Beinhart 1000-1來源于美國, 親本Y3來源于津巴布韋。從煙草類型上看, 親本Y3和K326屬于烤煙, 而親本Beinhart 1000-1屬于雪茄煙(表1)。因此, 親本間的多態(tài)率及共顯性多態(tài)標(biāo)記數(shù)目均較其他烤煙品種間高(表2)。

由于 CSSLs與其輪回親本(受體)間只存在代換片段的差異, 而遺傳背景與受體親本一致, 可將復(fù)雜性狀分解為單個(gè)孟德爾因子, 對(duì)代換區(qū)段中的QTL分析時(shí)遺傳背景干擾小, 因而受到研究者的重視[22,24]。Eshed和Zamir等[10]最早建立了以栽培番茄為遺傳背景、含有野生番茄單片段的代換系群體,該群體含有50個(gè)單片段代換系, 可以覆蓋野生番茄的全基因組。張桂權(quán)等[37]利用優(yōu)良水稻品種華粳秈74為受體, 以來源于世界各地的26個(gè)品種(包括14個(gè)秈稻和 12個(gè)粳稻)為供體, 通過回交和分子標(biāo)記輔助選擇方法建立了目前世界上規(guī)模最大、質(zhì)量最好的水稻單片段代換系文庫。該文庫共有1529個(gè)染色體單片段代換系(CSSSL), 代換片段的平均長度為18.8 cM, 代換片段總長度達(dá)28 700 cM, 相當(dāng)于約18.8倍的水稻基因組長度。通過對(duì)代換片段的基因鑒定和定位, 篩選獲得了包括植株形態(tài)、稻米品質(zhì)、產(chǎn)量、抗病性、生育期等重要性狀共2000多個(gè)優(yōu)良基因(QTL)。本研究已獲得了以烤煙Y3為遺傳背景的256個(gè)含有1~5個(gè)供體片段的煙草染色體片段代換系。其中, 含有K326片段的代換系有131個(gè)株系, 含有Beinhart 1000-1片段的代換系有125個(gè)株系。獲得的代換系中代換片段重疊后總長度為2922.57 cM, 相當(dāng)于烤煙全基因組總長的2.61倍(本研究中以Y3和K326為作圖親本構(gòu)建的烤煙SSR標(biāo)記遺傳圖譜全長為1120.45 cM), 代換片段覆蓋煙草基因組的長度為 1114.32 cM, 總覆蓋率高達(dá)99.45%。因此, 與其他作物相關(guān)研究比較, 本研究構(gòu)建的煙草CSSLs質(zhì)量總體上還不高, CSSL所包含株系的數(shù)量、受體攜帶代換片段的數(shù)目、代換片段的大小(長度)及代換片段在基因組的覆蓋率等方面均不能完全滿足煙草育種的要求。究其原因, 可能是: (1)煙草育種過程中, 過度依賴極少數(shù)的主體親本而使得許多非育種目標(biāo)的多樣化性狀丟失, 導(dǎo)致煙草(尤其是烤煙)品種間的親緣關(guān)系較近、遺傳基礎(chǔ)狹窄、遺傳多樣性降低。(2)煙草基礎(chǔ)研究相對(duì)薄弱。雖然近些年隨著煙草基因組計(jì)劃的開展, 基礎(chǔ)研究在分子水平有了質(zhì)的提升, 但起步較晚, 與其他作物仍有相當(dāng)大差距?；诖? 導(dǎo)致煙草CSSL在構(gòu)建過程中既受材料(親本)的限制又受手段(研究基礎(chǔ))的制約。目前, 本研究獲得的代換系盡管不是覆蓋煙草全基因組的單片段代換系, 但正在對(duì)BC4F1繼續(xù)進(jìn)行代換片段的追蹤和檢測, 直至獲得一整套覆蓋煙草全基因組的CSSSLs, 為復(fù)雜性狀QTL分析及有效轉(zhuǎn)育供體親本 K326和 Beinhart 1000-1中優(yōu)質(zhì)和抗病性狀的QTL/基因到其他烤煙品種提供理想材料。

4 結(jié)論

以綜合性狀優(yōu)良的烤煙種質(zhì) Y3為輪回親本,以抗黑脛病 0號(hào)、1號(hào)生理小種和抗赤星病的Beinhart 1000-1及優(yōu)質(zhì)品種K326為供體親本, 經(jīng)雜交、回交、自交, 結(jié)合分子標(biāo)記輔助選擇建立了國內(nèi)外首套煙草染色體片段代換系群體。該群體由256個(gè)不同代換系株系組成, 且每個(gè)代換系株系中僅含有 1~5個(gè)代換片段。通過對(duì) Y3遺傳背景中的Beinhart 1000-1和K326染色體導(dǎo)入片段的分析, 篩選染色體單片段代換系, 為復(fù)雜性狀QTL分析、分子標(biāo)記輔助選擇育種等研究提供材料。

[1] 王元英, 周健.中美主要煙草品種親源分析與煙草育種.中國煙草學(xué)報(bào), 1995, 13(5): 11–22

[2] Tong Z J, Jiao T L, Wang F Q, Li M Y, Len X D, Gao Y L, Li Y P, Xiao B G, Wu W R.Mapping of quantitative trait loci conferring resistance to brown spot in flue-cured tobacco (Nicotiana tabacum L.).Plant Breed, 2012, 131: 335–339

[3] Tong Z J, Jiao F C, Wu X F, Wang F Q, Chen X J, Li X Y, Gao Y L, Zhang Y H, Xiao B G, Wu W R.Mapping of quantitative trait loci underlying six agronomic traits in flue-cured tobacco (Nicotiana tabacum L.).Acta Agron Sin, 2012, 38: 1–9

[4] Nishi T, Tajima T, Noguchi S, Ajisaka H, Negishi H.Identification of DNA markers of tobacco linked to bacterial wilt resistance.Theor Appl Genet, 2003, 106: 765–770

[5] Julio E, Denoyes R B, Verrier J L, de Borne F D.Detection of QTLs linked to leaf and smoke properties in Nicotiana tabacum based on a study of 114 recombinant inbred lines.Mol Breed, 2006, 22: 144–166

[6] Vontimitta V, Lewis R S.Mapping of quantitative trait loci affecting resistance to Phytophthora nicotianae in tobacco (Nicotiana tabacum L.) line Beihart-1000.Mol Breed, 2010, 58: 294–300

[7] 廖長見, 王穎姮, 潘光堂.作物染色體導(dǎo)入系的構(gòu)建及其應(yīng)用.分子植物育種, 2007, 5(6): 139–144

Liao C J, Wang Y H, Pan G T.Construction and application of chromosome introgression lines in crops.Mol Plant Breed, 2007, 5(6): 139–144 (in Chinese with English abstract)

顱內(nèi)靜脈竇血栓屬于多種因素共同作用引發(fā)的罕見顱內(nèi)靜脈系統(tǒng)血管病，病死率可達(dá)15%[5-7]。顱內(nèi)靜脈竇血栓早期發(fā)病隱匿，少部分患者表現(xiàn)為偏癱等局灶性體征，臨床識(shí)別難度較高[8-10]。因此，尋找一種早期有效診斷顱內(nèi)靜脈竇血栓的手段至關(guān)重要。

[8] Jena K K, Khush G S, Kochert G.RFLP analysis of rice (Oryza sativa) introgression lines.Theor Appl Genet, 1992, 84: 608–616

[9] Eshed Y, Abied M, Saranga Y, Zamir D.Lycopersicon esculentumlines containing small overlapping introgressions from pennellii.Theor Appl Genet, 1992, 83: 1027–1034

[10] Eshed Y, Zam I R.An introgression line population of Lycopersicon pennellii in the cultivated tomato enables the identification and fine mapping of yield-associated QTL.Genetics, 1995, 14: 1147–1162

[11] Monforte A J, Tanksley S D.Development of a set of near isogenic and backcross recombinant inbred lines containing most of the Lycopersicon hirsutum genome in an L.esculentum genetic background: A tool for gene mapping and gene discovery.Genome, 2000, 43: 803–813

[12] Bernacehi D, Beck-Bunn T, Emmatty D, Eshed Y, Inai S, LoPez J, Petiard V, Sayama H, U’hlig J, Zamir D, Tanksley S.Advanced backcross QTL analysis of tomato: II.Evaluation of near-isogenic lines carrying single-donor introgressions for desirable wild QTL-alleles derived from Lycopersicon hirsutum and L.pimpinellifolium.Theor Appl Genet, 1998, 97: 170–180

[13] Ramsay L D, Jennings D E, Bohuon E J R, Arihur A E, Lydiate D J, Kearsey M J, Marshall D F.The construction of a substitution library of recombinant backcross lines in Brassica oleracea for the precision mapping of quantitative trait loci.Genome, 1996, 39: 558–567

[14] Jeuken M J W, Lindhout P.The development of lettuce backcross inbred lines (BILs) for exploitation of the Laetuca saligna (wild lettuce) germplasm.Thero Appl Genet, 2004, 109: 394–401

[15] Matus L, Corey A, Filiehkin T.Development and characterization of recombinant chromosome substitution lines (RCSLs) using Hordeum velgare subsp.spontaneum as a source of donor alleles in a Hordeum vulgar subsp.velgare background.Genome, 2003, 46: 10l0–1023

[16] Korff M V, Wang H, Leon J.Development of candidate introgression lines using an exotic barley accession (Hordeum vulgar subsp.spontaneous) as donor.Theor Appl Genet, 2004, 109: 1736–1745

[17] 馮長輝, 張勝昔, 王志偉, 王夏青, 李夕梅.棉花染色體單片段導(dǎo)入系的研究進(jìn)展.湖北農(nóng)業(yè)科學(xué), 2009, 48(12): 24–26

Feng C H, Zhang S X, Wang Z W, Wang X Q, Li X M.Research progress on construction and application of SSILs in cotton.Hubei Agric Sci, 2009, 48(12): 24–26 (in Chinese with English abstract)

[18] 孟佳麗, 婁群峰, 周曉慧, 史建磊, 陳勁楓.黃瓜-酸黃瓜染色體片段導(dǎo)入系群體的構(gòu)建及果實(shí)相關(guān)數(shù)量性狀基因的定位.中國農(nóng)業(yè)科學(xué), 2012, 45: 1558–1567

Meng J L, Lou Q F, Zhou X H, Shi J L, Chen J F.Construction of cucumber-sour cucumber chromosome introgression lines and location of fruit related QTLs.Sci Agric Sin, 2012, 45: 1558–1567 (in Chinese with English abstract)

[19] 林肖劍, 許學(xué)文, 錢紅梅, 齊曉花, 徐強(qiáng), 陳學(xué)好.黃瓜抗白粉病染色體片段導(dǎo)入系的 SSR鑒定.園藝學(xué)報(bào), 2012, 39: 485–492

Lin J X, Xu X W, Qian H M, Qi X H, Xu Q, Chen X H.Analysis of cucumber chromosome segment introgression line with powdery mildew resistance based on SSR markers.Acta Hort Sin, 2012, 39: 485–492 (in Chinese with English abstract)

[20] 史建磊, 婁群峰, 錢春桃, 萬紅建, 周曉慧, 陳勁楓.黃瓜染色體片段導(dǎo)入系的構(gòu)建與遺傳評(píng)價(jià).南京農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào), 2011, 34(1): 20–24

Shi J L, Lou Q F, Qian C T, Wan H J, Zhou X H, Chen J F.Construction and genetic evaluation of chromosome segment introgression lines in cucumber.J Nanjing Agric Univ, 2011, 34(1): 20–24 (in Chinese with English abstract)

[21] 劉冠明, 李文濤, 曾瑞珍, 張澤民, 張桂權(quán).水稻單片段代換系片段的QTL鑒定.遺傳學(xué)報(bào), 2004, 31: 1395–1400

Liu G M, Li W T, Zeng R Z, Zhang Z M, Zhang G Q.Identification of QTLs on substituted segments in single segment substitution lines of rice.Acta Genet Sin, 2004, 31: 1395–1400 (in Chinese with English abstract)

[22] 何風(fēng)華, 席章營, 曾瑞珍, Akshay T, 張桂權(quán).利用高代回交和分子標(biāo)記輔助選擇建立水稻單片段代換系.遺傳學(xué)報(bào), 2005, 32: 825–831

He F H, Xi Z Y, Zeng R Z, Akshay T, Zhang G Q.Developing single segment substitution lines (SSSls) in rice (Oryza sativa L.) using advanced backcrosses and MAS.Acta Genet Sin, 2004, 32: 825–831 (in Chinese with English abstract)

[23] Li Z K, Fu B Y, Gao Y N.Genome-wide introgression lines and their use in genetic and molecular dissection of complex phenotypes in rice (Oryza sativa L.).Plant Mol Biol, 2005, 59: 33–52

[24] 王玉民, 席章營, 尚愛蘭, 王幫太.作物單片段代換系的構(gòu)建及應(yīng)用.中國農(nóng)學(xué)通報(bào), 2008, 24(3): 67–71

Wang Y M, Xi Z Y, Shang A L, Wang B T.Construction and application of single segment substitution lines in crops.Chin Agric Sci Bull, 2008, 24(3): 67–71 (in Chinese with English abstract)

[25] Bindler, G, der Hoeven V R, Gunduz I, Plieske J, Ganal M, Rossi L, Gadani F, Donini P.A microsatellite marker based linkage map of tobacco.Theor Appl Genet, 2007, 114: 341–349

[26] Bindler, G, Plieske J, Bakaher N, Gunduz I, Ivanov N, der Hoeven R V, Ganal M, Donini P.A high density genetic map of tobacco (Nicotiana tabacum L.) obtained from large scale microsatellite marker development.Theor Appl Genet, 2011, 123: 219–230

[27] Sierro, N, Battey J N D, Ouadi S, Bakaher N, Bovet L, Willig A, Goepfert S, Peitsch M C, Ivanov N V.The tobacco genome sequence and its comparison with those of tomato and potato.Nat.Commun, 2014, 5:3833, doi: 10.1038/ncomms4833

[28] Tong Z J, Yang Z M, Chen X J, Jiao F C, Li X Y, Wu X F, Gao Y L, Xiao B G, Wu W R.Large-scale development of microsatellite markers in Nicotiana tabacum and construction of a genetic map of flue-cured tobacco.Plant Breed, 2012, 131: 674–680

[29] Arslan B, Okunus A.Genetic and geographic polymorphism of cultivated tobaccos (Nicotiana tabacum) in Turkey.Plant Genet, 2006, 42: 667–671

[30] Del Piano L, Abet M C, Sorrentino F, Acanfora E, Cozzolino E, DiMuro A.Genetic variability in Nicotiana tabacum and Nicotiana species as revealed by RAPD procedure.Intl Contribut Tob Res, 2000, 19: 1–15

[31] Moon H S, Nicholson J S, Lewis R S.Use of transferable Nicotiana tabacum L.microsatellite markers for investigating genetic diversity in the genus Nicotiana.Genome, 2008, 51: 547–559

[32] Moon H S, Nicholson J S, Heineman A, Lion K, der Hoeven R V, Hayes A J, Lewis R S.Changes in genetic diversity of U.S.flue-cured tobacco germplasm over seven decades of cultivar development.Crop Sci, 2009, 49: 498–506

[33] Moon H S, Nifong J M, Nicholson J S, Heineman A, Lion K, der Hoeven R V, Hayes A J, Lewis R S.Microsatellite-based analysis of tobacco (Nicotiana tabacum L.) genetic resources.Crop Sci, 2009, 49: 2149–2157

[34] Bai D, Reeleder R, Brandle J E.Identification of two RAPD markers tightly linked with the Nicotiana debneyi gene for resistance to black root rot of tobacco.Theor Appl Genet, 1995, 91: 1184–1189

[35] Maguire T, Collins G, Sedgley M.A modified CTAB DNA extraction procedure for plants belonging to the family Proteaceae.Plant Mol Biol Rep, 1994, 12: 106–109

[36] Yong N D, Tanlalesy S D.Restriction fragment polymorphism maps and the concept of graphical genotypes.Theor Appl Genet, 1989, 77: 95–101

[37] 張桂權(quán), 曾瑞珍, 丁效華, 張澤民, 李文濤.水稻單片段代換系文庫的構(gòu)建及其在分子育種上的應(yīng)用.見: 方宣鈞,黎志康主編.2005植物分子育種國際學(xué)術(shù)研討會(huì)論文集.北京: 科學(xué)出版社, 2005.pp 106–113

Zhang G Q, Zeng R Z, Ding X H, Zhang Z M, Li W T.Construction of a library of single segment substitution lines for rice breeding by design.In: Fang X J, Li Z K, eds.Proceedings of the 2005 International Conference on Plant Molecular Breeding.Beijing: Science Press, 2005.pp 106–113

Construction and Genetic Evaluation of Chromosome Segment Substitution Lines in Tobacco (Nicotiana tabacum L.)

TONG Zhi-Jun, JIAO Fang-Chan, FANG Dun-Huang, CHEN Xue-Jun, WU Xing-Fu, ZENG Jian-Min, XIE He, ZHANG Yi-Han, and XIAO Bing-Guang*
Yunnan Academy of Tobacco Agricultural Sciences / Key Laboratory of Tobacco Biotechnological Breeding / National Tobacco Genetic Engineering Research Center, Kunming 650021, China

A set of chromosome segment substitution lines (CSSLs) of tobacco (Nicotiana tabacum L.) were first developed by molecular marker assisted selection (MAS) and successive backcrossing with Y3, the flue-cured tobacco germplasm with comprehensive traits as the recipient parent, and two common tobacco cultivars Beinhart1000-1 and K326 as the donor parents.The cigar tobacco cultivar Beinhart 1000-1 carries a variety of resistance traits including black shank (race 0 and race 1) and brown spot resistance, while the flue-cured tobacco K326 is a commercial cultivar with high quality.In 256 CSSLs, a total of 377 substituted segments derived from donor Beinhart 1000-1 and K326 with genetic background of Y3 distributed on 24 linkage groups.Each CSSL contained only 1–5 substituted segments and the length of substituted segments ranged from 0.05 to 36.88 cM with an average of 7.75 cM.The total length of the overlapped substituted segments was 2922.57 cM, which was 2.61 times of the whole tobacco genome length.And the CSSLs covered length was 1114.32 cM, with a covered ratio of 99.45% in the recurrent tobacco genome.The CSSLs constructed in this study are excellent genetic materials for gene mapping, QTL analysis of complicated traits, and developing varieties by marker assisted selection in Nicotiana tabacum L.

Tobacco (Nicotiana tabacum L.); Chromosome segment substitution lines (CSSLs); SSR; Molecular marker assisted selection (MAS)

10.3724/SP.J.1006.2016.01609

本項(xiàng)目由中國煙草總公司項(xiàng)目[2014TBB01,110201301006(JY-06)]和中國煙草總公司云南省公司項(xiàng)目(2014YN18, 2013YN01)資助。

This study was supported by China National Tobacco Company [2014TBB01, 110201301006(JY-06)] and Yunnan Tobacco Company (2014YN18, 2013YN01).

*通訊作者(Corresponding author): 肖炳光, E-mail: xiaobg@263.net

聯(lián)系方式: E-mail: tzj861@163.com

稿日期): 2016-03-09; Accepted(接受日期): 2016-07-11; Published online(

日期): 2016-07-28.

URL: http://www.cnki.net/kcms/detail/11.1809.S.20160728.0816.010.html