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    豬“瘦肉精”、水分、微生物的檢測(cè)

    2016-11-01 21:02:21
    畜牧與飼料科學(xué) 2016年8期
    關(guān)鍵詞:倫特羅平皿萊克

    劉 燕

    (河南農(nóng)業(yè)職業(yè)學(xué)院牧業(yè)工程學(xué)院,河南 中牟 451450)

    豬“瘦肉精”、水分、微生物的檢測(cè)

    劉 燕

    (河南農(nóng)業(yè)職業(yè)學(xué)院牧業(yè)工程學(xué)院,河南 中牟 451450)

    為了解生豬屠宰安全水平的現(xiàn)狀,在某肉品加工企業(yè),采用酶聯(lián)免疫吸附測(cè)定法(ELISA)對(duì)鹽酸克倫特羅、萊克多巴胺殘留量進(jìn)行檢測(cè),采用直接干燥法對(duì)豬肉中的水分進(jìn)行檢測(cè),采用營(yíng)養(yǎng)瓊脂、月桂基硫酸鹽胰蛋白胨(LST)肉湯對(duì)大腸桿菌計(jì)數(shù)法菌群總數(shù)和大腸桿菌進(jìn)行檢測(cè)。檢測(cè)結(jié)果表明,該企業(yè)的“瘦肉精”超標(biāo)現(xiàn)象自2015年3月15日起有明顯下降,待宰豬的注水現(xiàn)象維持在一個(gè)穩(wěn)定的正常水平,包裝前豬肉微生物檢測(cè)無明顯污染現(xiàn)象。表明該企業(yè)“瘦肉精”的嚴(yán)重超標(biāo)現(xiàn)象已得到較為有力的控制,豬肉注水現(xiàn)象在收購(gòu)環(huán)節(jié)已得到有效扼制,對(duì)屠宰過程中的微生物污染問題也有了很好的處理。

    “瘦肉精”;酶聯(lián)免疫吸附測(cè)定法;水分;大腸桿菌;菌群總數(shù)

    “瘦肉精”是鹽酸克倫特羅(clenbuterol,CLB)的俗稱,是一種人工合成的腎上腺受體激動(dòng)劑。它可以選擇性作用于豬腎上腺受體,激活腺苷酸環(huán)化酶(cAMP),使環(huán)磷腺苷增加,加強(qiáng)脂肪分解,促進(jìn)蛋白質(zhì)合成,實(shí)現(xiàn)動(dòng)物營(yíng)養(yǎng)再分配,改善胴體品質(zhì),可使瘦肉率增加9%~16%,骨骼肌脂肪降低8%~15%。 萊克多巴胺(ractopamine,Rac)與鹽酸克倫特羅均屬興奮劑,用作飼料添加劑可提高豬的瘦肉率,是鹽酸克倫特羅的最佳替代品,能夠增強(qiáng)脂肪分解代謝,促進(jìn)蛋白質(zhì)合成,顯著增加胴體瘦肉率。“瘦肉精”之名由此而來?!笆萑饩钡母鞣N理化性質(zhì)和作用特點(diǎn),決定了其一旦飼用,就難以代謝排出,會(huì)大量蓄積在動(dòng)物機(jī)體內(nèi),從而維持較高的殘留量。而且一般的烹飪方法和過程都很難使其失活、溶解、熔化、損耗或清除,因此會(huì)帶來殘留危害。

    注水肉是違法者為牟取暴利,把大量的水壓注到畜禽全身以增加其重量的一類肉品。盡管目前注水肉沒有像“瘦肉精”那樣引起大批量的中毒事故,但注水肉已成為頑固的社會(huì)毒瘤。注水肉不僅會(huì)嚴(yán)重破壞肉的組織結(jié)構(gòu),大大降低其營(yíng)養(yǎng)價(jià)值,而且因注入水均為未消毒的水,因此還會(huì)人為地造成微生物的二次污染使食者發(fā)生食物中毒。

    肉品衛(wèi)生狀況關(guān)系到消費(fèi)者的身體健康,而肉品的微生物污染程度又是反映肉品衛(wèi)生質(zhì)量的重要指標(biāo)之一。我國(guó)衛(wèi)生部頒布的包括肉類在內(nèi)的食品微生物指標(biāo)有菌落總數(shù)、大腸菌群和致病菌3項(xiàng)。菌落總數(shù)的測(cè)定具有兩方面的衛(wèi)生學(xué)意義:一方面作為食品被污染,即清潔狀態(tài)的標(biāo)志;另一方面可以用來預(yù)測(cè)食品可能存放的期限。大腸菌群是來自人與溫血?jiǎng)游锛S便的一類細(xì)菌,用大腸菌群作為食品衛(wèi)生指標(biāo),既可以反映食品被糞便污染的程度,也是腸道致病菌,如沙門菌、志賀菌等污染食品的指示菌。因此,對(duì)微生物的檢驗(yàn)顯得尤為重要。筆者收集了2015年3月15日以來某肉品加工企業(yè)對(duì)“瘦肉精”、注水豬肉及微生物的檢測(cè)結(jié)果,并在該基礎(chǔ)上分析了生豬屠宰安全的現(xiàn)狀。

    1 材料與方法

    1.1 試驗(yàn)時(shí)間及地點(diǎn) 該試驗(yàn)于2015年3—5月在河南省某肉品加工企業(yè)進(jìn)行。

    1.2 試劑與設(shè)備 鹽酸克倫特羅酶聯(lián)免疫試劑盒、萊克多巴胺ELISA檢測(cè)試劑盒(北京勤邦生物技術(shù)有限公司),101型電熱鼓風(fēng)干燥箱(北京中興偉業(yè)儀器有限公司),營(yíng)養(yǎng)瓊脂、月桂基硫酸鹽胰蛋白胨(LST)肉湯(北京奧博星生物技術(shù)有限責(zé)任公司);恒溫水浴箱、高壓滅菌箱、放大鏡、超凈工作臺(tái)等。

    1.3 “瘦肉精”的檢測(cè) 該試驗(yàn)采用酶聯(lián)免疫吸附測(cè)定法(ELISA)[1]進(jìn)行“瘦肉精”的檢測(cè)。 這是由于鹽酸克倫特羅和萊克多巴胺內(nèi)服后在胃腸道和肝臟進(jìn)行代謝,并大量以原形從尿液排出,尿中濃度比血中濃度高40倍,可實(shí)現(xiàn)宰前檢測(cè),因此,尿液是檢測(cè)非法“瘦肉精”使用情況的較好樣品[1]。如無法采集到尿液,也可采集豬的肌肉(或組織)進(jìn)行分析。

    1.3.1 鹽酸克倫特羅的檢測(cè)

    ①前處理:尿液前處理(稀釋倍數(shù):1),可以直接進(jìn)行檢測(cè)分析。若樣品呈渾濁狀,可4000 r/min,離心5min或過濾后取上清液檢測(cè)。但樣品渾濁或保存時(shí)間過長(zhǎng)則會(huì)有測(cè)定值增高的傾向。肌肉(或組織)前處理(稀釋倍數(shù):5),稱取5 g均質(zhì)后的樣品于離心管中,加20mm濃度為0.01mol/L的鹽酸后振蕩10min,再離心10min(室溫4000 r/min)。 然后吸取1mm的清澈上清液到1.5mm的小離心管中,加1mol/L的氫氧化鈉溶液15 μL,使 pH值保持在 7~8,再離心 10min(室溫 4000 r/min)。取上清液進(jìn)行檢測(cè)。

    ②除空白孔外,其余各微孔均加入50 μL標(biāo)準(zhǔn)品或樣品到標(biāo)示,記錄對(duì)應(yīng)的每組的微孔底部的加入量。隨即加入酶標(biāo)二抗50 μL,再加入抗體50 μL,輕輕振蕩均勻,蓋上蓋板膜,置室溫(20~25℃)環(huán)境中反應(yīng)30min。

    ③取出微孔板,將微孔板內(nèi)的反應(yīng)液甩干凈,每孔加入300 μL洗滌液,如此操作重復(fù)3~5次,最后一次盡量甩干孔中洗滌液,將微孔架倒置在吸水紙上拍干。然后每孔加入混合底物液100 μL,混勻。將微孔板置室溫(20~25℃)環(huán)境中避光孵育15min。

    ④每孔加入50 μL終止液并混勻,以終止試驗(yàn)的繼續(xù)反應(yīng),最后在酶標(biāo)儀上選用測(cè)定波長(zhǎng)450 nm(參比波長(zhǎng)為620 nm),以測(cè)定每孔的OD值。

    1.3.2 萊克多巴胺的檢測(cè)

    ①前處理:尿液前處理(稀釋倍數(shù):1),取 20 μL清亮尿樣測(cè)定(如尿樣渾濁必須通過過濾或3000 g以上,室溫離心10min至清亮),暫不使用的樣本應(yīng)冷凍保存。肌肉(或組織)前處理(稀釋倍數(shù):5),稱取2.0 g均質(zhì)后的樣品至50mm聚苯乙烯離心管中,加入8mL提取工作液,用振蕩器充分振蕩10min,3000 g以上,室溫離心 10min。 取 20 μL 進(jìn)行分析。

    ②加標(biāo)準(zhǔn)品/樣本20 μL到對(duì)應(yīng)的微孔中,隨即加入酶標(biāo)二抗50 μL/每孔,再加入抗體工作液80 μL/每孔,輕輕振蕩均勻,用蓋板膜蓋板后置25℃避光環(huán)境中反應(yīng)45min。

    ③小心揭開蓋板膜,將孔內(nèi)液體甩干,用洗滌工作液250 μL/每孔,充分洗滌4~5次,每次間隔10 s,用吸水紙拍干(拍干后未被清除的氣泡可用未使用過的一次性塑料槍頭戳破)。加入底物液A液50 μL/每孔,再加入底物液 B 液 50 μL/每孔,輕輕振蕩均勻,用蓋板膜蓋板后置25℃避光環(huán)境中反應(yīng)15min。

    ④加入終止液50 μL/每孔,輕輕振蕩均勻,設(shè)定酶標(biāo)儀于450 nm處,以測(cè)定每孔的OD值。

    1.4 注水豬肉的檢測(cè)

    ①取潔凈鋁制或玻璃制的扁形稱量平皿,置于(100±5)℃干燥箱中,加熱 0.5~1.0 h。

    ②取出上述平皿,蓋好,置干燥器內(nèi)冷卻0.5 h,稱量,并重復(fù)干燥至恒量。

    ③稱取4.00~6.00 g切碎或磨細(xì)的樣品,放入該稱量平皿中,樣品厚度約5mm。加蓋,精密稱量后,置(100±5)℃干燥箱中,敞口。

    ④干燥4 h后,蓋好取出,待冷卻后稱量。

    1.5 微生物的檢測(cè)

    1.5.1 菌群總數(shù)的檢測(cè)

    ①以無菌操作,將檢樣2.5 g剪碎放于含有225mL滅菌生理鹽水的玻璃瓶?jī)?nèi),經(jīng)充分振搖后做成1∶10的均勻稀釋液。

    ②用1mL滅菌吸管,沿管壁徐徐注入含有9mL滅菌生理鹽水的試管內(nèi),振搖試管,混合均勻,做成1∶100 的稀釋液。

    ③另取1支1mL滅菌吸管,做10倍遞增稀釋液,如此每遞增1次,即換用1支滅菌吸管。

    ④選擇 1∶1000、1∶10000 兩個(gè)稀釋度,分別再做10倍遞增稀釋的同時(shí),即以吸取該稀釋度的吸管移1mL稀釋液于滅菌平皿內(nèi),每個(gè)稀釋度做2個(gè)平皿,稀釋液移入平皿后應(yīng)及時(shí)將涼至46℃的營(yíng)養(yǎng)瓊脂培養(yǎng)基注入平皿約15mL,并轉(zhuǎn)動(dòng)平皿使混合均勻。

    ⑤將營(yíng)養(yǎng)瓊脂培養(yǎng)基傾入加有1mL稀釋液的滅菌平皿內(nèi)作空白對(duì)照,待瓊脂凝固后翻轉(zhuǎn)平板,置 36 ℃溫箱內(nèi)培養(yǎng)(48±2)h,后計(jì)數(shù)(必要時(shí)可用放大鏡觀察,以免遺漏)。

    1.5.2 大腸桿菌的檢測(cè)

    ①以無菌操作,將檢樣2.5 g剪碎放于含有225mL滅菌生理鹽水的玻璃瓶?jī)?nèi),經(jīng)充分振搖后做成1∶10的均勻稀釋液。

    ②用1mL滅菌吸管,沿管壁徐徐注入含有9mL滅菌生理鹽水的試管內(nèi),振搖試管,混合均勻,做成1∶100 的稀釋液。

    ③另取1mL滅菌吸管,做1∶1000的稀釋液。

    ④分別將3個(gè)稀釋度接種3管月桂基硫酸鹽胰蛋白胨(LST)肉湯,每管接種 1mL,(36±1)℃培養(yǎng)(48±2)h后觀察試管內(nèi)是否有氣泡產(chǎn)生。

    ⑤試管內(nèi)有氣泡者為大腸桿菌陽性管,查MPN檢索表,報(bào)告每100mL大腸桿菌的MPN值。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 “瘦肉精”的檢測(cè) 按照國(guó)家標(biāo)準(zhǔn)規(guī)定對(duì)“瘦肉精”的進(jìn)行檢測(cè),其結(jié)果見表1、圖1和圖2。

    表1反映了從2015年3月15日—5月4日每日的屠宰總量、鹽酸克倫特羅的超標(biāo)量、萊克多巴胺的超標(biāo)量、總不合格數(shù)及不合格數(shù)占屠宰總量的百分比。萊克多巴胺從2015年3月16日開始檢驗(yàn)。

    表1 “瘦肉精”的檢測(cè)結(jié)果

    圖1 鹽酸克倫特羅與萊克多巴胺不合格率的比較

    圖1反映了從2015年3月15日—5月4日鹽酸克倫特羅和萊克多巴胺超標(biāo)數(shù)的整體趨勢(shì)。由圖1可知,即使受屠宰總量增加及其他因素的影響,鹽酸克倫特羅中間雖有反彈情況,但總體仍呈下降趨勢(shì),尤其4月26日之后數(shù)次出現(xiàn)無超標(biāo)狀態(tài)。而萊克多巴胺自3月16日開始全檢,第1周超標(biāo)率居高不下,但隨著打擊力度的加大,超標(biāo)率迅速下降。

    圖2反映了從2015年3月15日—5月4日總不合格數(shù)占屠宰總量百分比的趨勢(shì)。鹽酸克倫特羅和萊克多巴胺中至少有1個(gè)超標(biāo)即為不合格。由于萊克多巴胺前期超標(biāo)較多,第1周總不合格率較高,但整體呈下降趨勢(shì)。

    2.2 注水豬肉的檢測(cè) 圖3反映了從2015年3月15日—5月4日豬肉水分檢測(cè)超標(biāo)率的趨勢(shì),對(duì)水分的檢測(cè)是按照每家每50頭豬抽檢1頭(不足50頭的按50頭計(jì)算)的指標(biāo)進(jìn)行控制的。水分檢測(cè)超標(biāo)率整體穩(wěn)定在一個(gè)正常范圍內(nèi)的較低水平。

    表2 不同月份菌群總數(shù)檢測(cè)結(jié)果

    表3 不同月份大腸桿菌菌落檢測(cè)結(jié)果

    2.3 微生物的檢測(cè) 表2和表3反映了3月、4月、5月菌群總數(shù)和大腸桿菌的檢測(cè)結(jié)果。所檢測(cè)的168份豬肉樣品主要取自預(yù)冷庫(kù)和分割車間,其中菌落總數(shù)在102~104cfu/g之間的有42份 (占抽樣總數(shù)的25%),大腸桿菌菌群最可能數(shù)(MPN)小于30的有30份(占抽樣總數(shù)的17.9%),菌落總數(shù)在104~106cfu/g之間的有126份 (占抽樣總數(shù)的75%),大腸桿菌菌群最可能數(shù)在30~100之間的有138份(占抽樣總數(shù)的82.1%),均在國(guó)標(biāo)規(guī)定合格范圍內(nèi)。

    圖2 總不合格率變化曲線

    圖3 水分檢測(cè)超標(biāo)率(3月15日—5月4日)

    3 討論與小結(jié)

    3.1 “瘦肉精”的檢測(cè) 該企業(yè)每日以2%的比例進(jìn)行抽檢,3月15日后進(jìn)一步加大了打擊力度,實(shí)行全檢,鹽酸克倫特羅和萊克多巴胺的超標(biāo)率迅速下降。全檢工作展開后,隨著打擊力度的加大,在經(jīng)過1周左右后2項(xiàng)的超標(biāo)率也明顯下降。

    3.2 注水豬肉的檢測(cè) 圖3清晰地反映出豬肉的水分超標(biāo)率穩(wěn)定地維持在一個(gè)較低的水平,與各種文獻(xiàn)及報(bào)道中反映的差別較大[2]。推測(cè)原因主要與該企業(yè)對(duì)所收購(gòu)生豬采用的靜養(yǎng)模式有關(guān)。該企業(yè)對(duì)收購(gòu)的生豬采用靜養(yǎng)12 h后進(jìn)行第1次復(fù)磅,與入場(chǎng)過磅相比頭損小于2.5 kg為合格,合格豬再靜養(yǎng)12 h后屠宰,不合格豬則再靜養(yǎng)24 h后屠宰,有效地降低了水分超標(biāo)率。此外,該企業(yè)有固定的收購(gòu)來源,對(duì)水分不合格的供應(yīng)商處以企業(yè)內(nèi)部的罰款制度,也在一定程度上起到了制約作用。另外,文獻(xiàn)及報(bào)道中檢測(cè)的多為市場(chǎng)上架豬肉,與屠宰生豬有一定的差異,由此可見,水分的超標(biāo)部分可能主要來自屠宰后。

    3.3 微生物的檢測(cè) 對(duì)菌群總數(shù)和大腸桿菌的檢測(cè)方法及標(biāo)準(zhǔn)完全按照中華人民共和國(guó)國(guó)家標(biāo)準(zhǔn)GB 4789.3—2010執(zhí)行。宋超等[3]對(duì)市售鮮豬肉微生物調(diào)查分析為菌群總數(shù)超標(biāo)率平均為28.3%,大腸桿菌超標(biāo)率平均為34.1%,與檢測(cè)結(jié)果相比有明顯差異。推測(cè)原因可能是由于該試驗(yàn)所有樣品均在預(yù)冷庫(kù)和分割車間取得,而宋超等[3]取得的樣品則是來自超市和農(nóng)貿(mào)市場(chǎng),取樣場(chǎng)所的不同是導(dǎo)致檢測(cè)結(jié)果差異較大的重要因素。在預(yù)冷庫(kù)和分割車間取得的樣品沒有超標(biāo)現(xiàn)象,初步可以反映包裝和市場(chǎng)流通等渠道是肉品微生物污染的重要環(huán)節(jié)。

    通過對(duì)以上檢測(cè)結(jié)果的比較分析可以看出,該企業(yè)“瘦肉精”的嚴(yán)重超標(biāo)現(xiàn)象已經(jīng)得到較為有力的控制,豬肉注水現(xiàn)象在收購(gòu)環(huán)節(jié)已得到有效扼制,對(duì)屠宰過程中的微生物污染問題也有了很好的處理。

    [1]賀顯書.酶聯(lián)免疫檢測(cè)技術(shù)在豬肉安全檢測(cè)中的應(yīng)用[J].農(nóng)業(yè)與技術(shù),2008,28(1):15-17.

    [2]陳瓊,連玉華,戴亞東,等.某肉聯(lián)廠屠宰豬“瘦肉精”殘留的檢測(cè)[J].畜牧與獸醫(yī),2000,32(4):31-32.

    [3]宋超,于宏偉,賈英民.市售鮮豬肉微生物調(diào)查分析[J].食品科技,2009,34(8):86-88.

    S858.281.43

    A文章順序編號(hào):1672-5190(2016)08-0068-05

    2016-06-19

    劉燕(1982—),女,講師,碩士,主要研究方向?yàn)閯?dòng)物生產(chǎn)系統(tǒng)與工程。

    (責(zé)任編輯:慕宗杰)

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