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    兔出血癥病毒SYBR Green Ⅰ實(shí)時(shí)熒光定量PCR檢測(cè)方法的建立及初步應(yīng)用

    2016-10-31 09:20:55李桂黎姚學(xué)萍楊澤曉
    關(guān)鍵詞:血癥定量質(zhì)粒

    王 波,李桂黎,王 印,姚學(xué)萍,楊澤曉

    (四川農(nóng)業(yè)大學(xué) 動(dòng)物醫(yī)學(xué)院,四川 成都 611130)

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    兔出血癥病毒SYBR Green Ⅰ實(shí)時(shí)熒光定量PCR檢測(cè)方法的建立及初步應(yīng)用

    王波,李桂黎,王印,姚學(xué)萍,楊澤曉*

    (四川農(nóng)業(yè)大學(xué)動(dòng)物醫(yī)學(xué)院,四川 成都611130)

    兔病毒性出血癥(rabbit hemorrhagic disease,RHD)是一種具有高度傳染性的疾病,嚴(yán)重威脅養(yǎng)兔業(yè)的健康發(fā)展。為了建立一種能夠快速、高效、敏感的檢測(cè)RHDV的方法,試驗(yàn)設(shè)計(jì)了一對(duì)特異性引物進(jìn)行PCR擴(kuò)增,得到RHDV VP60基因中979 bp的保守序列,并將其克隆到pMD19-T載體中作為標(biāo)準(zhǔn)品建立標(biāo)準(zhǔn)曲線;在擴(kuò)增區(qū)域內(nèi)設(shè)計(jì)一對(duì)簡(jiǎn)并引物,建立SYBR Green Ⅰ熒光定量PCR檢測(cè)方法,優(yōu)化反應(yīng)條件,并驗(yàn)證該方法的敏感性、特異性、重復(fù)性。結(jié)果表明:該方法可檢測(cè)到的模板的最低拷貝數(shù)為8.18×101copies,只能特異性擴(kuò)增RHDV,pGM19-T-EBHSV、兔巴氏桿菌、兔沙門氏菌、兔大腸埃希菌和健康兔組織RNA的擴(kuò)增均為陰性,具有良好的特異性和重復(fù)性;同時(shí)用此方法對(duì)人工感染家兔的內(nèi)臟分別進(jìn)行檢測(cè),結(jié)果表明SYBR Green Ⅰ熒光定量PCR能快速檢測(cè)到不同臟器中的兔病毒性出血癥病毒RNA含量,可用于臨床兔瘟病毒的檢測(cè)。

    兔病毒性出血癥病毒(RHD);VP60;SYBR Green Ⅰ;實(shí)時(shí)熒光定量PCR

    兔病毒性出血癥(rabbit hemorrhagic disease,RHD)是一種急性的、具有高度傳染性、高致死性的疾病[1],又稱兔瘟。它由兔出血癥病毒(rabbit hemorrhagic disease virus,RHDV)引起,在自然條件下主要侵害青年兔和成年兔,2月齡以下的仔兔自然感染時(shí)一般不會(huì)發(fā)病死亡。兔瘟病毒感染兔群時(shí)發(fā)病率和死亡率高達(dá)90%~100%,已成為嚴(yán)重危害養(yǎng)兔業(yè)健康發(fā)展的一種疾病。1984年該病首先在我國(guó)江蘇省暴發(fā)[2],隨后歐、亞、美、澳四大洲的一些國(guó)家均報(bào)道有本病流行[3],隨著世界各地關(guān)于兔瘟報(bào)道的增多,說明兔瘟現(xiàn)在已呈現(xiàn)出全球流行性[4-5]。世界動(dòng)物衛(wèi)生組織在1989年將兔瘟列為B類傳染病,我國(guó)也將其列為二類傳染病。

    RHDV屬于杯狀病毒科(Caliciviridae)兔病毒屬(Lagovirus)[6],是沒有囊膜的、單股正鏈RNA病毒[7]。目前被廣泛用來檢測(cè)的方法主要有:血凝試驗(yàn)、Western blot、酶聯(lián)免疫吸附試驗(yàn)、免疫瓊擴(kuò)試驗(yàn)、RT-PCR等。這些方法的前期準(zhǔn)備比較煩瑣、耗時(shí)費(fèi)力,而且試驗(yàn)敏感性低,SYBR Green Ⅰ熒光定量PCR作為熒光定量PCR方法中的一種,當(dāng)熒光染料嵌合于DNA雙鏈結(jié)構(gòu)的小溝部位后,會(huì)發(fā)射熒光信號(hào),隨著PCR反應(yīng)的進(jìn)行,SYBR Green Ⅰ不斷與新合成的dsDNA結(jié)合,熒光強(qiáng)度隨著聚合反應(yīng)的進(jìn)行逐漸增加,便可被熒光探測(cè)系統(tǒng)檢測(cè)到[8],熒光強(qiáng)度又與初始模板濃度量相關(guān),既可定性檢測(cè)也可定量檢測(cè)。考慮到RHDV的變異,本研究根據(jù)GenBank中已公布RHDV VP60基因序列設(shè)計(jì)1對(duì)簡(jiǎn)并引物,對(duì)兔瘟病毒的SYBR Green Ⅰ實(shí)時(shí)熒光定量檢測(cè)方法進(jìn)行了初步研究。

    1 材料與方法

    1.1主要試劑

    熒光定量SYBR Green Ⅰ染料購買自生工生物工程(上海)股份有限公司;病毒基因組RNA提取試劑盒、DNA膠回收純化試劑盒、質(zhì)粒提取試劑盒購買自天根生化科技(北京)有限公司;反轉(zhuǎn)錄試劑盒購買自寶生物工程(大連)有限公司;大腸桿菌DH5α感受態(tài)細(xì)胞由四川農(nóng)業(yè)大學(xué)動(dòng)物檢疫實(shí)驗(yàn)室制備并保存。

    1.2毒株

    感染兔出血癥病毒(RHDV)的病料、兔巴氏桿菌病菌種、兔沙門氏菌病菌種、兔大腸埃希菌菌種、健康兔組織由四川農(nóng)業(yè)大學(xué)動(dòng)物醫(yī)學(xué)院實(shí)驗(yàn)室保存;歐洲野兔綜合征病毒(EBHSV)重組陽性質(zhì)粒由四川農(nóng)業(yè)大學(xué)動(dòng)物醫(yī)學(xué)院實(shí)驗(yàn)室王印[9]老師構(gòu)建并保存。

    1.3引物的設(shè)計(jì)與合成

    在NCBI上下載已公布的RHDV VP60基因序列若干條,用DNAStar進(jìn)行比對(duì)分析,利用Beacon Designer 8軟件在其保守區(qū)設(shè)計(jì)一對(duì)特異性引物F1,F(xiàn)2,可擴(kuò)增VP60基因的片段長(zhǎng)度為979 bp,上游引物F1:5′-TCACTGGTGTTGGCAATG-3′,下游引物F2:5′-CAGACATAAGAAAAGCC-3′;在F1,F(xiàn)2引物的擴(kuò)增區(qū)域內(nèi),設(shè)計(jì)1對(duì)SYBR Green Ⅰ熒光定量PCR引物P1(5′-TGGAGATYGGTTTRAGTG-3′),P2(5′-AATGAGTTCAGTCARGTCAA-3′),可擴(kuò)增的片段為165 bp。引物由北京擎科新業(yè)生物技術(shù)有限公司合成。

    1.4病毒RNA的提取及反轉(zhuǎn)錄

    根據(jù)病毒基因組RNA提取試劑盒說明書提取組織中病毒RNA,作為模板進(jìn)行反轉(zhuǎn)錄,反轉(zhuǎn)錄體系為10.0 μL,其中5×PrimeScript Buffer 2.0 μL,RNase Free dH2O 2.0 μL,Ramdom 6 mers 2.0 μL,Oligo dT Primer 0.5 μL,PrimeScript RT Enzyme Mix I 0.5 μL,RNA 3.0 μL。反轉(zhuǎn)錄程序?yàn)椋?7℃ 15 min,87℃ 5 s。得到cDNA,-20℃保存。

    1.5VP60基因的PCR擴(kuò)增和質(zhì)粒的構(gòu)建

    用反轉(zhuǎn)錄得到的cDNA作模板進(jìn)行PCR擴(kuò)增,擴(kuò)增的反應(yīng)總體系為20.0 μL:其中2×Taq Master Mix 10.0 μL,cDNA 2.0 μL,F(xiàn)1、F2各1.0 μL(10 μmol·L-1),加超純水至20.0 μL。反應(yīng)程序?yàn)椋?5℃ 5 min;94℃ 30 s,57℃ 45 s,72℃ 1 min,35個(gè)循環(huán);72℃延伸10 min。擴(kuò)增后用1%瓊脂糖凝膠電泳進(jìn)行檢測(cè)。

    將目的片段純化回收,把回收的DNA連接到pMD19-T載體,再轉(zhuǎn)化到大腸桿菌DH5α感受態(tài)細(xì)胞中,構(gòu)建重組質(zhì)粒pMD-19T-VP60,經(jīng)PCR鑒定后,將陽性質(zhì)粒送北京擎科新業(yè)生物技術(shù)有限公司測(cè)序鑒定。將構(gòu)建的質(zhì)粒pMD-19T-VP60利用核酸蛋白儀測(cè)定其在260和280 nm處的吸光度,計(jì)算出DNA的濃度和純度,之后將其進(jìn)行10倍梯度稀釋,作為陽性定量的標(biāo)準(zhǔn)模板,進(jìn)行熒光定量PCR的擴(kuò)增和建立標(biāo)準(zhǔn)曲線。

    1.6實(shí)時(shí)熒光定量PCR的擴(kuò)增及標(biāo)準(zhǔn)曲線的建立

    將簡(jiǎn)并引物P1和P2進(jìn)行PCR擴(kuò)增,反應(yīng)條件和反應(yīng)程序同上,擴(kuò)增后用1%瓊脂糖凝膠電泳進(jìn)行檢測(cè),驗(yàn)證引物是否合理。

    用陽性質(zhì)粒做模板進(jìn)行SYBR Green Ⅰ熒光定量PCR擴(kuò)增,將其反應(yīng)條件和反應(yīng)程序進(jìn)行優(yōu)化,確定其最佳反應(yīng)條件和反應(yīng)程序;將重組質(zhì)粒進(jìn)行10倍梯度稀釋,作為熒光定量PCR擴(kuò)增的模板,建立SYBR Green Ⅰ熒光定量PCR擴(kuò)增的標(biāo)準(zhǔn)曲線。

    1.7特異性試驗(yàn)

    將實(shí)驗(yàn)室保存的歐洲野兔綜合征病毒重組質(zhì)粒、兔巴氏桿菌病菌種、兔沙門氏菌病菌種和兔大腸埃希菌菌種復(fù)蘇,用菌液當(dāng)模板,進(jìn)行SYBR Green Ⅰ熒光定量PCR擴(kuò)增。

    1.8敏感性試驗(yàn)

    將制備的陽性質(zhì)粒標(biāo)準(zhǔn)品按10倍梯度稀釋后,進(jìn)行熒光定量PCR擴(kuò)增,以此來測(cè)定熒光定量PCR所能檢測(cè)出來的模板的最低拷貝數(shù)。

    1.9重復(fù)性試驗(yàn)

    用同一次提取的不同濃度的陽性質(zhì)粒作為模板,在同一次試驗(yàn)中做3個(gè)重復(fù),進(jìn)行熒光定量PCR 擴(kuò)增,測(cè)定標(biāo)準(zhǔn)品的穩(wěn)定性,同時(shí)做陰性對(duì)照。

    1.10初步應(yīng)用

    將含RHDV的病料組織研磨液經(jīng)過過濾后,取1 mL對(duì)健康成年家兔(3只)進(jìn)行腹腔注射,3 d后家兔死亡。分別取心臟、肝臟、脾臟、肺臟、腎臟提取RNA,反轉(zhuǎn)錄為cDNA,用建立的SYBR Green Ⅰ熒光定量PCR方法進(jìn)行檢測(cè),同時(shí)與普通RT-PCR[10]的檢測(cè)結(jié)果進(jìn)行比較。

    2 結(jié)果與分析

    2.1VP60基因的PCR擴(kuò)增

    從實(shí)驗(yàn)室保存的病料中提取RNA,將其反轉(zhuǎn)錄成cDNA后用F1,F(xiàn)2和P1,P2分別進(jìn)行PCR擴(kuò)增,經(jīng)瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)后分別得到979 bp的目的片段(圖1-A)和165 bp的目的片段(圖1-B),均無雜帶,與預(yù)期的結(jié)果相符。

    M: DL2000 Marker;1: 病料擴(kuò)增產(chǎn)物;2: 靶基因擴(kuò)增產(chǎn)物圖1 RHDV VP60和靶基因PCR擴(kuò)增Fig.1 PCR results of RHDV VP60 and target gene

    2.2質(zhì)粒的構(gòu)建

    將PCR擴(kuò)增產(chǎn)物用0.8%瓊脂糖凝膠純化回收,連接到pMD19-T載體,轉(zhuǎn)化到大腸埃希菌DH5α感受態(tài)細(xì)胞,構(gòu)建重組質(zhì)粒pMD-19T-VP60,將其測(cè)序結(jié)果直接在NCBI上BLAST,得到的結(jié)果與RHDV VP60基因的同源性為96%。用核酸蛋白儀測(cè)定其濃度為32.9 mg·L-1,pMD-19T長(zhǎng)度為2 692 bp,引物擴(kuò)增長(zhǎng)度為979 bp,DNA length=載體長(zhǎng)度+引物擴(kuò)增片段,即DNA length=(2692+979)bp=3671 bp,根據(jù)拷貝數(shù)計(jì)算公式:(6.02×1023)×質(zhì)粒濃度(g·mL-1)/DNA length×660=copies·mL-1,得到重組質(zhì)粒DNA拷貝數(shù):(6.02×1023×32.9×10-6)μg·mL-1/(3671×660)=8.18×1012copies·μL-1。

    2.3熒光定量PCR標(biāo)準(zhǔn)曲線的建立

    將陽性質(zhì)粒經(jīng)10倍梯度稀釋后選取8.18×107~8.18×1012拷貝數(shù)的樣品作為模板進(jìn)行熒光定量PCR擴(kuò)增,通過對(duì)引物濃度的優(yōu)化、退火溫度的優(yōu)化和各程序反應(yīng)時(shí)間的優(yōu)化,最終確定的最佳反應(yīng)條件和反應(yīng)程序?yàn)椋涸?0.0 μL的反應(yīng)體系中,2×SG Fast qPCR Master Mix 10.0 μL,P1和P2各加0.5 μL,DNF Buffer 2.0 μL,模板2.0 μL,滅菌超純水5.0 μL;反應(yīng)程序?yàn)椋?5℃ 3 min;95℃ 5 s,57℃ 10 s,72℃ 30 s,共40個(gè)循壞;生成動(dòng)力學(xué)曲線(圖2)和標(biāo)準(zhǔn)曲線(圖3)。由圖可見,NTC無特異性擴(kuò)增,在所測(cè)定的范圍內(nèi)標(biāo)準(zhǔn)品與Ct值之間存在線性關(guān)系,線性回歸方程Ct=-3.383×lgcopies+34.946(R2=0.997)。

    2.4特異性試驗(yàn)

    用建立的SYBR Green Ⅰ熒光定量PCR反應(yīng)體系對(duì)RHDV陽性質(zhì)粒、EBHSV陽性質(zhì)粒、兔巴氏桿菌、兔沙門氏菌、兔大腸埃希菌和兔健康組織RNA進(jìn)行熒光定量PCR檢測(cè),結(jié)果表明所設(shè)計(jì)的引物只能特異性的擴(kuò)增RHDV,對(duì)EBHSV陽性質(zhì)粒、兔巴氏桿菌、兔沙門氏菌等的檢測(cè)結(jié)果均為陰性(圖4),說明所建立SYBR Green Ⅰ熒光定量PCR方法具有很好的特異性。

    1,8.18×1012 copies·mL-1;2,8.18×1011 copies·mL-1;3,8.18×1010 copies·mL-1;4,8.18×109 copies·mL-1;5,8.18×108 copies·mL-1;6,8.18×107 copies·mL-1;7,NTC(ddH2O)。圖2 SYBR Green Ⅰ熒光定量PCR動(dòng)力學(xué)曲線Fig.2 The amplification of SYBR Green Ⅰ real-time PCR

    圖3 標(biāo)準(zhǔn)曲線Fig.3 The standard curve of SYBR Green Ⅰ real-time PCR

    1:RHDV;2:pGM-T-EBHSV;3:兔巴氏桿菌;4: 兔沙門氏菌;5: 兔大腸埃希菌;6: 健康兔組織RNA;7:NTC(ddH2O)。圖4 SYBR Green Ⅰ熒光定量PCR的特異性試驗(yàn)Fig.4 The specificity assay of SYBR Green Ⅰ real-time PCR

    2.5敏感性試驗(yàn)

    將制備的陽性質(zhì)粒10倍梯度稀釋后,作為模板進(jìn)行熒光定量PCR擴(kuò)增,得到的擴(kuò)增曲線(圖5)顯示,在8.18×100copies時(shí)與陰性對(duì)照結(jié)果基本重合,說明其靈敏度為8.18×101copies。

    2.6重復(fù)性試驗(yàn)

    選取質(zhì)粒濃度為8.18×1012~8.18×107copies·mL-1的樣品模板按制備標(biāo)準(zhǔn)曲線的反應(yīng)程序和反應(yīng)條件進(jìn)行熒光定量PCR擴(kuò)增,所得到的樣品Ct值在組內(nèi)的變異系數(shù)分別為1.12%,0.34%,0.36%,0.23%,0.51%,0.29%(表1),而Tm值一直維持相同的數(shù)值(81℃),同時(shí),從PCR擴(kuò)增曲線(圖6)可以看出每個(gè)樣本的3條S曲線之間的誤差都不到1個(gè)循環(huán),說明此方法具有良好的重復(fù)性和準(zhǔn)確性。

    1,8.18×106 copies;2,8.18×105 copies;3,8.18×104 copies;4,8.18×103 copies;5,8.18×102 copies;6,8.18×101 copies;7,8.18×100 copies;8,NTC(ddH2O)。圖5 SYBR Green Ⅰ熒光定量PCR的靈敏度試驗(yàn)Fig.5 The sensitivity assay of SYBR Green Ⅰ real-time PCR

    表1SYBR Green Ⅰ熒光定量PCR重復(fù)性試驗(yàn)

    Table 1The reproducibility assay of SYBR Green Ⅰ real-time PCR

    質(zhì)粒濃度/(8.18×10n)Ct值(n=3)平均值標(biāo)準(zhǔn)差變異系數(shù)CV/%1012313.430.1511.121011317.620.0600.341010320.890.0770.36109324.440.0570.23108327.050.1480.51107330.910.0920.29

    1,8.18×1012 copies·mL-1;2,8.18×1011 copies·mL-1;3,8.18×1010 copies·mL-1;4,8.18×109 copies·mL-1;5,8.18×108 copies·mL-1;6,8.18×107 copies·mL-1;7,NTC(ddH2O)。圖6 SYBR Green Ⅰ熒光定量PCR的重復(fù)性試驗(yàn)Fig.6 The reproducibility assay of SYBR Green Ⅰ real-time PCR

    2.7初步應(yīng)用

    用建立的SYBR Green Ⅰ熒光定量PCR法和普通RT-PCR法同時(shí)對(duì)實(shí)驗(yàn)室人工感染家兔的內(nèi)臟分別進(jìn)行檢測(cè),擴(kuò)增完成后系統(tǒng)自動(dòng)分析得到各臟器的Ct值(表2),根據(jù)Ct值的大小與各臟器的含毒量相關(guān)性可知臟器中含毒量最多的是脾臟。普通RT-PCR方法的檢測(cè)結(jié)果(圖7)顯示脾臟的條帶最清晰,病毒含量最高,而心臟、肺臟的條帶不明顯,病毒含量相對(duì)較低,與SYBR Green Ⅰ熒光定量PCR檢測(cè)結(jié)果相符合,表明熒光定量PCR方法在RHDV的檢測(cè)中不僅可以定量檢測(cè),而且具有更高的敏感性。

    表2人工感染家兔內(nèi)臟的Ct值

    Table 2The Ct value of artificial infection rabbits

    人工感染兔心臟肝臟脾臟肺臟腎臟A(Ct)28.0525.4018.6922.2235.45B(Ct)33.6121.2819.3531.2229.55C(Ct)23.8023.9021.8223.6126.40

    M:DL2000 Marker;1: 心臟;2: 肝臟;3: 脾臟;4: 肺臟;5: 腎臟。圖7 家兔內(nèi)臟RHDV RT-PCR檢測(cè)部分結(jié)果Fig.7 RT-PCR detection of rabbit organs

    3 討論

    實(shí)時(shí)熒光定量PCR方法是20世紀(jì)90年代發(fā)展起來的一種新型核酸定量技術(shù)。目前,在臨床醫(yī)學(xué)和生命科學(xué)領(lǐng)域都得到了廣泛的應(yīng)用,已成為病毒含毒量檢測(cè)的常用方法[11],它解決了傳統(tǒng)PCR方法在DNA序列擴(kuò)增和之后的產(chǎn)物分析中量化困難的問題。SYBR Green Ⅰ染料法與熒光探針法相比,染料法不需設(shè)計(jì)、標(biāo)記熒光探針,成本更低;另外,DNA在擴(kuò)增和分析的過程都在同樣的封閉系統(tǒng)完成,避免了樣品和產(chǎn)物的污染,而且不需要進(jìn)行PCR后續(xù)的實(shí)驗(yàn)處理或電泳檢測(cè),更加省時(shí),操作更簡(jiǎn)便,可直接進(jìn)行定性分析和定量分析,具有很好的實(shí)用性。

    兔瘟自暴發(fā)以來,已給養(yǎng)兔業(yè)造成了嚴(yán)重的經(jīng)濟(jì)損失,亞洲、歐洲、澳洲對(duì)于兔瘟的報(bào)道也越來越多[12-13],近年來雖有所控制,但仍有散發(fā)的報(bào)道。所以,建立一種快速、準(zhǔn)確、省時(shí)的檢測(cè)方法很有必要??紤]到RHDV存在基因突變,本試驗(yàn)通過在RHDV VP60序列的保守區(qū)設(shè)計(jì)簡(jiǎn)并引物,并優(yōu)化引物濃度、退火溫度及反應(yīng)程序,成功建立了一種SYBR Green Ⅰ熒光定量PCR檢測(cè)方法。簡(jiǎn)并引物具有相對(duì)較寬的檢測(cè)范圍,解決了因基因變異引起的難以擴(kuò)增的問題,國(guó)內(nèi)尚無使用簡(jiǎn)并引物檢測(cè)RHDV的熒光RT-PCR研究的公開報(bào)道。2015年,Liu等[14]報(bào)道設(shè)計(jì)1對(duì)普通特異性引物建立了一種RHDV SYBR Green Ⅰ 熒光RT-PCR方法,并對(duì)臨床樣品和人工感染樣品進(jìn)行了檢測(cè),結(jié)果顯示,受檢樣品中脾臟含毒量最多,這與本研究的檢測(cè)結(jié)果一致。然而2007年張秀娥等[15]報(bào)道用建立的RHDV TaqMan MGB熒光RT-PCR檢測(cè)方法,并對(duì)人工感染家兔內(nèi)臟的病毒含量進(jìn)行檢測(cè),結(jié)果顯示,病毒在肝臟含量高于脾臟、血液、心臟、肺臟、腎臟和體液,這可能與病毒感染劑量或者感染途徑有關(guān)。本研究采用一對(duì)帶有簡(jiǎn)并堿基的引物通過反應(yīng)條件優(yōu)化、特異性試驗(yàn)、敏感性試驗(yàn)、標(biāo)準(zhǔn)曲線建立和人工感染樣品的檢測(cè)應(yīng)用建立了RHDV的SYBR Green Ⅰ熒光定量PCR方法,該方法能檢測(cè)到的陽性質(zhì)粒標(biāo)準(zhǔn)品的最低拷貝數(shù)為8.18×101copies,樣品的組內(nèi)變異系數(shù)為0.23%~1.12%,重復(fù)性和準(zhǔn)確性高,與平行檢測(cè)RT-PCR方法檢測(cè)結(jié)果一致,且具有比普通RT-PCR更高的敏感性。因此,本試驗(yàn)建立的SYBR Green Ⅰ熒光定量PCR方法在定性、定量方面均具有良好的實(shí)用性,不僅可用于不同地方不同RHDV毒株的實(shí)驗(yàn)室快速檢測(cè)診斷,也可用于RHDV不同組織中定量檢測(cè)和致病機(jī)制的相關(guān)研究中。

    [1]ESTEVES P J,ABRANTES J,CARNEIRO M,et al.Detection of positive selection in the major capsid protein VP60 of the rabbit haemorrhagic disease virus (RHDV) [J].Virus Research,2008,137(2):253-256.

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    (責(zé)任編輯盧福莊)

    Establishment and application of SYBR Green Ⅰ real-time PCR for detection of rabbit hemorrhagic disease virus

    WANG Bo,LI Gui-li,WANG Yin,YAO Xue-ping,YANG Ze-xiao*

    (College of Veterinary Medicine,Sichuan Agricultural University,Chengdu 611130,China )

    Rabbit hemorrhagic disease is a highly contagious disease which causes serious damage to the healthy development of rabbit keeping.In order to establish a quick,efficient and sensitive detection method,a pair of specific primers were designed for PCR amplification to obtain 979 bp sequence of rabbit hemorrhagic disease virus(RHDV) VP60 gene.Then cloned it into pMD19-T vector to construct recombinant plasmid named pMD-19T-VP60,which was served as template to establish the standard curve.Meanwhile,a pair of degenerate primer was designed in the amplification region to establish the SYBR Green Ⅰ real-time PCR detection method,and the reaction condition was optimized,and the sensitivity,specificity and reproducibility were tested.The results showed that the SYBR Green Ⅰ real-time PCR could specifically detect RHDV that the limited detection content was 8.18×101copies and no amplification of pGM19-T-EBHSV,Pasteurella multocida,Salmonella,Escherichina coli and healthy organs from rabbits.At the same time,this method was used to detect the internal organs of artificial infection rabbits.The results showed that the SYBR Green Ⅰ fluorescence quantitative PCR could quickly detect the content of the virus RNA in different organs.So this assay could be applied in clinical diagnosis of RHDV.

    rabbit hemorrhagic disease virus(RHDV);VP60;SYBR Green Ⅰ;real-time quantitative PCR

    浙江農(nóng)業(yè)學(xué)報(bào)Acta Agriculturae Zhejiangensis,2016,28(3):400-405http://www.zjnyxb.cn

    王波,李桂黎,王印,等.兔出血癥病毒SYBR Green Ⅰ實(shí)時(shí)熒光定量PCR檢測(cè)方法的建立及初步應(yīng)用[J].浙江農(nóng)業(yè)學(xué)報(bào),2016,28(3):400-405.

    10.3969/j.issn.1004-1524.2016.03.07

    2015-11-04

    國(guó)家自然科學(xué)基金資助項(xiàng)目(3140222);四川省教育廳青年基金資助項(xiàng)目(11ZB064)

    王波(1990—),女,四川邛崍人,碩士研究生,研究方向?yàn)轭A(yù)防獸醫(yī)學(xué)。E-mail:18728156822@163.com

    ,楊澤曉,E-mail:yzxyang2003@126.com

    S852.65+9.6

    A

    1004-1524(2016)03-0400-06

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