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    雙組份轉(zhuǎn)運(yùn)系統(tǒng)BrnFE的過表達(dá)和表面活性劑的添加對谷氨酸棒桿菌發(fā)酵生產(chǎn)L-異亮氨酸的影響

    2016-09-15 08:22:49李忠財董會娜叢麗娜張大偉
    工業(yè)微生物 2016年4期
    關(guān)鍵詞:異亮氨酸谷氨酸菌體

    李忠財, 董會娜, 叢麗娜, 張大偉*

    1. 大連工業(yè)大學(xué)生物工程學(xué)院, 大連 116034;2. 中國科學(xué)院天津工業(yè)生物技術(shù)研究所, 天津 300308

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    雙組份轉(zhuǎn)運(yùn)系統(tǒng)BrnFE的過表達(dá)和表面活性劑的添加對谷氨酸棒桿菌發(fā)酵生產(chǎn)L-異亮氨酸的影響

    李忠財1,2,董會娜2,叢麗娜1*,張大偉2*

    1. 大連工業(yè)大學(xué)生物工程學(xué)院, 大連 116034;2. 中國科學(xué)院天津工業(yè)生物技術(shù)研究所, 天津 300308

    為了提高L-異亮氨酸生產(chǎn)菌株CorynebacteriumglutamicumLD320的產(chǎn)酸水平,通過改善其分泌系統(tǒng),在C.glutamicumLD320中分別過表達(dá)突變型和野生型的雙組份轉(zhuǎn)運(yùn)系統(tǒng)BrnFE操縱子,構(gòu)建了重組菌LD320/pXMJ19-brnFE和LD320/pXMJ19-brnFE1。通過對兩株重組菌的L-異亮氨酸生產(chǎn)分析比較,發(fā)現(xiàn)突變型比野生型能更有效地提高L-異亮氨酸產(chǎn)量。同時對LD320/pXMJ19-brnFE1進(jìn)行表面活性劑添加實(shí)驗(yàn),發(fā)現(xiàn)Tween-80為最佳選擇,其最佳添加量為0.5 g/L,最佳添加時間為對數(shù)期的16 h。最后通過7 L發(fā)酵罐放大實(shí)驗(yàn),LD320/pXMJ19-brnFE1的L-異亮氨酸產(chǎn)量由18.53 g/L提高到25.45 g/L,比對照組提高了37%。

    雙組份轉(zhuǎn)運(yùn)系統(tǒng)BrnFE; 表面活性劑; 谷氨酸棒桿菌; L-異亮氨酸

    L-異亮氨酸(L-isoleucine,ILE)又稱“異白氨酸”,是八種必需的氨基酸之一[1],是人體激素、蛋白質(zhì)合成和能量生成的原料[2, 3],被廣泛應(yīng)用在食品添加劑、藥物和動物飼料等方面[4]。目前,谷氨酸棒桿菌及棒桿菌屬中的相關(guān)微生物已廣泛應(yīng)用于包括L-異亮氨酸在內(nèi)的多種氨基酸生產(chǎn)中[5-7]。在谷氨酸棒桿菌代謝合成L-異亮氨酸過程中,當(dāng)胞內(nèi)L-異亮氨酸積累到一定量時,就會反饋抑制其合成途徑的一些關(guān)鍵酶,從而抑制L-異亮氨酸的合成[8]。因此,對于谷氨酸棒桿菌產(chǎn)L-異亮氨酸的發(fā)酵來說,如何提高細(xì)胞對L-異亮氨酸的外排,對進(jìn)一步提高L-異亮氨酸的產(chǎn)量具有重要的意義。

    BrnFE是谷氨酸棒桿菌(Corynebacteriumglutamicum)中負(fù)責(zé)支鏈氨基酸L-異亮氨酸、亮氨酸和纈氨酸轉(zhuǎn)運(yùn)運(yùn)輸?shù)碾p組份轉(zhuǎn)運(yùn)載體[9],由brnFE基因編碼。當(dāng)谷氨酸棒桿菌胞內(nèi)的支鏈氨基酸量積累到一定程度時,便會激活brnFE操縱子表達(dá)[10],使L-異亮氨酸等氨基酸外排到胞外。通過過表達(dá)brnFE基因,可以減少L-異亮氨酸在谷氨酸棒桿菌胞內(nèi)的積累,削弱L-異亮氨酸在胞內(nèi)對合成途徑中關(guān)鍵酶的反饋抑制作用,從而增加其產(chǎn)量[11]。

    同時利用表面活性劑也可以改善細(xì)胞膜通透性,在微生物發(fā)酵中經(jīng)常被用來提高目標(biāo)產(chǎn)物的產(chǎn)量[12]。它可加快物質(zhì)傳遞運(yùn)輸,增加胞內(nèi)胞外的物質(zhì)平衡,從而提高了細(xì)菌對底物、產(chǎn)物的耐受度,解決發(fā)酵產(chǎn)物、副產(chǎn)物對微生物細(xì)胞生長和酶活性的抑制[13-15]。

    本文通過在L-異亮氨酸生產(chǎn)菌株C.glutamciumLD320中過量表達(dá)突變型brnFE1基因,增強(qiáng)了胞內(nèi)L-異亮氨酸到胞外的外排,使其產(chǎn)量增加。同時選擇添加表面活性劑作進(jìn)一步細(xì)胞通透性的改善,并對其添加量和添加時間進(jìn)行了優(yōu)化,最后在7 L發(fā)酵罐上進(jìn)行了放大實(shí)驗(yàn)。

    1 材料與方法

    1.1材料

    1.1.1菌株和質(zhì)粒

    文中所用菌株與質(zhì)粒均列于表1中,所用引物均列于表2中。

    表1 菌株與質(zhì)粒

    表2 引物

    1.1.2酶和試劑

    試劑:限制性內(nèi)切酶BamHI和EcoRI購自Thermo Fisher Scientific公司,DNA聚合酶PrimerSTAR Mix購自Takara,2xTaq PCR MasterMix, DNA Marker (Marker III和1 kb Marker)和細(xì)菌基因組DNA提取試劑盒(DP302-02)購于北京天根生化科技有限公司,質(zhì)粒小提試劑盒(D6943-02)和柱式PCR產(chǎn)物純化試劑盒(D6492-02)購自O(shè)MEGA,L-異亮氨酸標(biāo)準(zhǔn)品為Sigma公司提供,其余試劑均為進(jìn)口或國產(chǎn)分析純級。

    儀器:HPX-9162MBE電熱恒溫培養(yǎng)箱,上海博訊實(shí)業(yè)有限公司醫(yī)療設(shè)備廠;Agilent Technologies 1 200高效液相色譜,Agilent Technologies;PTC-1148型PCR儀,美國BIO-RAD公司;V-1 600可見分光光度計,上海美譜達(dá)儀器有限公司;SBA-40E生物傳感儀,山東省科學(xué)院生物研究所。

    1.1.3培養(yǎng)基

    固體培養(yǎng)基(g/L):葡萄糖20,酵母粉5,蛋白胨10,NaCl 5,瓊脂粉20,pH 7.0。121 ℃滅菌20 min。

    種子培養(yǎng)基(g/L):葡萄糖40.0,(NH4)2SO42.0,KH2PO4·3H2O 1.0,MgSO4·7H2O 0.6,F(xiàn)eSO4·7H2O 0.02,MnSO4·H2O 0.01,初始pH 7.0。115 ℃滅菌30 min。

    發(fā)酵培養(yǎng)基(g/L):葡萄糖60.0,酵母粉3,(NH4)2SO410.0,F(xiàn)eSO4·7H2O 0.05,MgSO4·7H2O 0.6,MnSO4·H2O 0.015,KH2PO4·3H2O 1.0,VB10.004,VH 0.000 5, 初始pH 7.0。115 ℃滅菌30 min。

    可根據(jù)需要,在各培養(yǎng)基中分別添加相應(yīng)抗生素:氯霉素,20 μg/mL。

    1.2實(shí)驗(yàn)方法及測定

    1.2.1培養(yǎng)方法

    (1) 斜面活化培養(yǎng):從-80 ℃冰箱取出保藏菌種劃線于固體培養(yǎng)基,30 ℃培養(yǎng)12 h ~18 h。

    (2) 種子培養(yǎng):用接種環(huán)從新鮮活化斜面上挑取2環(huán)谷氨酸棒桿菌于種子基本培養(yǎng)基中(500 mL三角瓶,裝液量為25 mL,9層紗布封口),30 ℃,220 r/min振蕩培養(yǎng)12 h,OD600約為1.5~1.8。

    (3) 搖瓶分批發(fā)酵培養(yǎng):將種子培養(yǎng)液按10%的接種量接入發(fā)酵基本培養(yǎng)基中(500 mL三角瓶,裝液量為25 mL,9層紗布封口),30 ℃,220 r/min振蕩培養(yǎng)進(jìn)行L-異亮氨酸分批發(fā)酵,pH由CaCO3調(diào)節(jié)。

    1.2.2pXMJ19-brnFE和pXMJ19-brnFE1表達(dá)載體的構(gòu)建

    分別以C.glutamicumATCC13032和C.glutamicumLD320染色體DNA為模板,使用帶有BamHI酶切位點(diǎn)的brnFE-F和帶有EcoRI酶切位點(diǎn)的brnFE-R為引物PCR擴(kuò)增出L-異亮氨酸輸出蛋白基因brnFE和brnFE1。使用限制性內(nèi)切酶BamHI和EcoRI分別對PCR產(chǎn)物及質(zhì)粒pXMJ19進(jìn)行雙酶切,連接產(chǎn)物化學(xué)轉(zhuǎn)化法轉(zhuǎn)入DH5α,在終濃度為20 μg/mL氯霉素的LB平板上37 ℃培養(yǎng),用引物YZ-F和YZ-R鑒定長出的轉(zhuǎn)化子,挑選陽性克隆,測序。

    1.2.3感受態(tài)細(xì)胞的制備及轉(zhuǎn)化

    質(zhì)粒轉(zhuǎn)化谷氨酸棒桿菌采用電轉(zhuǎn)化法,C.glutamicumLD320 感受態(tài)的制備及轉(zhuǎn)化方法參照余秉琦等[16]和van der Rest ME等[17]的方法。

    1.2.4表面活性劑的添加對L-異亮氨酸發(fā)酵的影響

    精確稱取各種表面活性劑,分別配置80 g/L的母液,按照實(shí)驗(yàn)的不同要求,在無菌條件下,吸取相應(yīng)的表面活性劑母液,添加到發(fā)酵液中。繼續(xù)培養(yǎng)直至培養(yǎng)結(jié)束。探討其對L-異亮氨酸發(fā)酵產(chǎn)量的影響,并進(jìn)一步優(yōu)化其添加量和添加時間。

    1.2.5菌體生長測定

    發(fā)酵液用蒸餾水稀釋適當(dāng)倍數(shù),測定600 nm波長下的OD值,使其數(shù)值在0.2~0.8之間。菌體干重表示為OD×稀釋倍數(shù)×0.3 g (DCW)/L。

    1.2.6殘?zhí)菨舛葴y定

    采用SBA-40E生物傳感儀測定。取發(fā)酵液1 mL離心,取上清液10 μL,稀釋100倍后,取25 μL稀釋液進(jìn)樣直接讀數(shù)。

    1.2.7氨基酸含量的測定[18, 19]

    L-異亮氨酸含量采用高效液相分析系統(tǒng)測定,色譜分離條件:Agilent C18(15 mm×4.6 mm,3.5 μm),2,4-二硝基氟苯柱前衍生測定,乙腈與NaAc溶液進(jìn)行梯度洗脫,柱溫33 ℃,流動相流量1 mL/min,檢測波長360 nm。

    2 結(jié)果與討論

    2.1brnFE在C.glutamicumATCC13032和LD320中的序列比對

    在谷氨酸棒桿菌中,雙組份轉(zhuǎn)運(yùn)系統(tǒng)BrnFE由基因brnFE編碼,負(fù)責(zé)支鏈氨基酸L-異亮氨酸、亮氨酸和纈氨酸的轉(zhuǎn)運(yùn)運(yùn)輸,brnFE基因來源于野生型菌株C.glutamicumATCC13032,brnFE1基因來源于L-異亮氨酸生產(chǎn)菌株C.glutamicumLD320。通過序列比對發(fā)現(xiàn),在brnF1基因上有一個突變位點(diǎn)(C419T),導(dǎo)致了一個氨基酸(Thr140Ile)的改變,在brnE1基因上有一個突變位點(diǎn)(C110G),導(dǎo)致一個氨基酸(Gln32Arg)的改變。由于LD320是L-異亮氨酸生產(chǎn)菌株,因此brnFE1基因位點(diǎn)的突變可能會加大L-異亮氨酸的外排,進(jìn)而增加其產(chǎn)量。

    2.2LD320/pXMJ19-brnFE和LD320/pXMJ19-brnFE1重組菌株的構(gòu)建

    以L-異亮氨酸生產(chǎn)菌C.glutamicumLD320和C.glutamicumATCC13032基因組DNA為模板克隆brnFE和brnFE1基因片段,將純化后的PCR產(chǎn)物雙酶切后連接到表達(dá)載體pXMJ19上,構(gòu)建出重組質(zhì)粒pXMJ19-brnFE和pXMJ19-brnFE1,如圖1所示。

    圖1 重組質(zhì)粒pXMJ19-brnFE 和pXMJ19-brnFE1的構(gòu)建

    將測序驗(yàn)證正確的重組質(zhì)粒pXMJ19-brnFE、pXMJ19-brnFE1和對照質(zhì)粒pXMJ19分別電轉(zhuǎn)法轉(zhuǎn)化LD320感受態(tài)細(xì)胞,用含有氯霉素20 μg/mL的LB平板進(jìn)行篩選并用引物YZ-F和YZ-R鑒定陽性轉(zhuǎn)化子,所得陽性轉(zhuǎn)化子即為工程菌LD320/pXMJ19-brnFE和LD320/pXMJ19-brnFE1,保存菌株。

    2.3不同菌株發(fā)酵生產(chǎn)L-異亮氨酸的比較

    將構(gòu)建好的LD320/pXMJ19,LD320/pXMJ19-brnFE和LD320/pXMJ19-brnFE1菌株分別進(jìn)行搖瓶發(fā)酵,以LD320為對照。發(fā)酵65 h后,分別取樣比較發(fā)酵液中不同菌株發(fā)酵過程中L-異亮氨酸及副產(chǎn)物積累的差異情況,如圖2所示。

    1.LD320; 2. LD320/pXMJ19; 3. LD320/pXMJ19-brnFE; 4. LD320/pXMJ19-brnFE1;

    圖2不同菌株發(fā)酵生產(chǎn)氨基酸產(chǎn)量

    由圖可2知,出發(fā)菌株LD320可累積L-異亮氨酸3.66 g/L,亮氨酸0.35 g/L,纈氨酸0.56 g/L。

    LD320/pXMJ19中的氨基酸產(chǎn)量有所下降,L-異亮氨酸、亮氨酸和纈氨酸的產(chǎn)量分別為3.47 g/L、0.31 g/L和0.50 g/L,分別較出發(fā)菌株下降5.2%、11.4%和9.7%,表明空質(zhì)粒的轉(zhuǎn)入對于菌體合成氨基酸有一定的影響,這可能是由于菌體代謝負(fù)擔(dān)加重的原故。在LD320/pXMJ19-brnFE菌株中的氨基酸產(chǎn)量較出發(fā)菌株LD320都只有少許增加,這與Yin等[11]的研究結(jié)果相一致。而LD320/pXMJ19-brnFE1菌中L-異亮氨酸、亮氨酸和纈氨酸的產(chǎn)量分別為4.44 g/L、0.41 g/L和0.68 g/L,分別較出發(fā)菌株提高21%、17.1%和21.8%??梢钥闯觯c野生型brnFE基因相比,過量表達(dá)brnFE1基因可以有效增加L-異亮氨酸、亮氨酸和纈氨酸的外排量。說明在突變型brnFE1基因上發(fā)生的兩個位點(diǎn)(C419T)和(C110G)突變有利于L-異亮氨酸等支鏈氨基酸的外排,減少了其在胞內(nèi)的積累,從而削弱了代謝途徑中的反饋抑制,使其產(chǎn)量增加。

    2.4添加表面活性劑

    2.4.1不同表面活性劑對L-異亮氨酸發(fā)酵的影響

    為進(jìn)一步增加LD320/pXMJ19-brnFE1工程菌的細(xì)胞膜通透性,選擇添加陰離子表面活性劑SDS、陽離子表面活性劑NP-10、非離子表面活性劑Tween-20、Tween-40、Tween-80和Triton X-100進(jìn)行搖瓶發(fā)酵實(shí)驗(yàn),采用相同初始濃度0.1 g/L,分別在LD320/pXMJ19-brnFE1發(fā)酵0 h添加,發(fā)酵65 h后,分別取樣測定發(fā)酵液中菌體生物量及L-異亮氨酸產(chǎn)量,考察不同表面活性劑對生物量和L-異亮氨酸產(chǎn)量的影響。結(jié)果如圖3所示。

    圖3 幾種表面活性劑對(a)菌體OD600及(b)L-異亮氨酸產(chǎn)量的影響

    由圖可知,Tween-80效果最好,對菌體生物量影響不大,同時能夠提高L-異亮氨酸的產(chǎn)量,而Tween-20、Tween-40和Triton X-100的添加對L-異亮氨酸產(chǎn)量和生物量都有少許的抑制作用,SDS和NP-10對L-異亮氨酸的產(chǎn)量有明顯的抑制作用。因此添加的表面活性劑選定為Tween-80,并對其添加量和添加時間作進(jìn)一步優(yōu)化。

    2.4.2Tween-80最優(yōu)添加濃度的確定

    將表面活性劑Tween-80設(shè)置不同的濃度梯度,在LD320/pXMJ19-brnFE1發(fā)酵0 h添加進(jìn)行搖瓶發(fā)酵實(shí)驗(yàn),發(fā)酵65 h后,分別取樣測定發(fā)酵液中菌體生物量及L-異亮氨酸產(chǎn)量,考察其對菌體生物量和L-異亮氨酸產(chǎn)量的影響。結(jié)果如圖4所示。

    由圖4可知,在發(fā)酵初始階段(0 h),較低濃度表面活性劑Tween-80的添加,并不影響菌體生長,且有助于L-異亮氨酸產(chǎn)量的提高。當(dāng)其濃度達(dá)到0.5 g/L時L-異亮氨酸的產(chǎn)量達(dá)到最大值,繼續(xù)增加Tween-80的濃度則對菌體的生長及L-異亮氨酸的產(chǎn)量出現(xiàn)了明顯的抑制。當(dāng)發(fā)酵液中Tween-80濃度超過2.0 g/L時細(xì)胞干重下降近26%。因此選取0.5 g/L為最優(yōu)添加濃度。

    圖4 不同濃度的Tween-80對(a)菌體OD600及(b)L-異亮氨酸產(chǎn)量的影響

    2.4.3Tween-80最優(yōu)添加時間的確定

    因?yàn)楸砻婊钚詣┚哂懈淖兗?xì)胞膜通透性和殺菌作用,不同的加入時間會直接影響細(xì)菌的生長和代謝[20]。因此通過改變Tween-80不同的添加時間,尋找最優(yōu)的添加時間對LD320/pXMJ19-brnFE1發(fā)酵產(chǎn)L-異亮氨酸產(chǎn)量有重要意義。選擇分別在對數(shù)期后的12 h、14 h、16 h和18 h加入終濃度為0.5 g/L的Tween-80進(jìn)行搖瓶發(fā)酵,發(fā)酵65 h后分別取樣測定L-異亮氨酸產(chǎn)量和生物量,結(jié)果見圖5。

    圖5(a)所示為搖瓶中LD320/pXMJ19-brnFE1的生長曲線及Tween-80的添加時間。圖5(b)為不同時間點(diǎn)添加Tween-80后L-異亮氨酸產(chǎn)量、菌體生物量及單位細(xì)胞產(chǎn)酸量(ILE/DCW=異亮氨酸與菌體干重的比值)。從結(jié)果中可以發(fā)現(xiàn),在16 h添加Tween-80時,菌體量為10.31 g/L,L-異亮氨酸產(chǎn)量達(dá)到最高點(diǎn)4.71 g/L。LD320/pXMJ19-brnFE1單位細(xì)胞合成L-異亮氨酸的能力也達(dá)到最高0.46。與對照相比,添加Tween-80使得單位細(xì)胞合成L-異亮氨酸的能力得到提高。這可能由于在不影響細(xì)胞正常生長的條件下,添加Tween-80提高了細(xì)胞膜的通透性,加大了細(xì)胞分泌L-異亮氨酸的能力。

    2.5發(fā)酵罐評價

    根據(jù)搖瓶優(yōu)化的結(jié)果,在7 L發(fā)酵罐上進(jìn)行了一次性添加Tween-80對LD320/pXMJ19-brnFE1產(chǎn)L-異亮氨酸發(fā)酵影響的放大實(shí)驗(yàn)。選擇添加時間為發(fā)酵對數(shù)期(16 h),添加濃度為0.5 g/L,將未加表面活性劑Tween-80的LD320作為對照組。發(fā)酵結(jié)果如圖6。圖6(a)所示為LD320對照組的菌體生物量、L-異亮氨酸產(chǎn)量和葡萄糖消耗的曲線,圖6(b)為LD320/pXMJ19-brnFE1的菌體生物量、L-異亮氨酸產(chǎn)量和葡萄糖消耗的曲線。

    從圖中可以看出,在發(fā)酵周期內(nèi),葡萄糖消耗方面LD320/pXMJ19-brnFE1和對照組的情況幾乎一致。菌體生物量方面,由于LD320/pXMJ19-brnFE1菌內(nèi)攜帶的質(zhì)粒和表面活性劑Tween-80的添加使得其生物量始終低于對照組。L-異亮氨酸產(chǎn)量方面,LD320/pXMJ19-brnFE1的產(chǎn)量為25.45 g/L,與對照組的18.53 g/L相比,產(chǎn)量提高了37%左右。

    圖5 不同時間添加表面活性劑對L-異亮氨酸分批發(fā)酵的影響(a)搖瓶分批發(fā)酵生長曲線;(b)不同添加時間下的生物量、單細(xì)胞產(chǎn)酸、異亮氨酸產(chǎn)量

    (a) LD320; (b) LD320/pXMJ19-brnFE1

    3 結(jié)論

    本實(shí)驗(yàn)通過在L-異亮氨酸生產(chǎn)菌株C.glutamicumLD320中過表達(dá)突變型brnFE1基因和野生型brnFE基因的比較發(fā)現(xiàn),突變型的brnFE1基因能有效加強(qiáng)L-異亮氨酸的外排能力,其搖瓶產(chǎn)量可達(dá)到4.44 g/L,較出發(fā)菌株提高了21%,而野生型brnFE基因只少量的提高了L-異亮氨酸產(chǎn)量,這表明發(fā)生在brnFE1基因上的兩個突變位點(diǎn)(C419T)和(C110G) 有利于L-異亮氨酸的外排。

    為進(jìn)一步增加LD320/pXMJ19-brnFE1細(xì)胞膜的通透性,本實(shí)驗(yàn)通過比較Tween-20、Tween-40、Tween-80、Triton X-100、SDS和NP-10六種表面活性劑發(fā)現(xiàn),Tween-80能夠在不影響菌體生長的情況下增加細(xì)胞膜的通透性,促進(jìn)L-異亮氨酸分泌到胞外。對其添加量及添加時間優(yōu)化后發(fā)現(xiàn),在LD320/pXMJ19-brnFE1對數(shù)期16 h加入終濃度0.5 g/L的Tween-80能有效增加L-異亮氨酸的產(chǎn)量。

    最后結(jié)合brnFE1基因過表達(dá)和添加表面活性劑Tween-80優(yōu)化后的實(shí)驗(yàn)結(jié)果,在7 L發(fā)酵罐上進(jìn)行了放大實(shí)驗(yàn),在發(fā)酵65 h后,LD320/pXMJ19-brnFE1的L-異亮氨酸產(chǎn)量由18.53 g/L到25.45 g/L,相比對照組提高了37%。本研究對于進(jìn)一步提高谷氨酸棒桿菌的L-異亮氨酸生產(chǎn)能力具有一定指導(dǎo)意義。

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    Effects of overexpressing two-component export system BrnFE and adding surfactants on L-isoleucine production byCorynebacteriumglutamicum

    LI Zhong-cai1,2, DONG Hui-na2, CONG Li-na1, ZHANG Da-wei2

    1. School of Biological Engineering, Dalian Polytechnic University, Dalian 116034, China; 2. Tianjin Institute of Industrial Biotechnology, Chinese Academy of Sciences, Tianjin 300308, China

    In order to increase L-isoleucine productivity inCorynebacteriumglutamicumLD320, the L-isoleucine secretion system was improved. Both the mutatedbrnFEoperon and the wild typebrnFEoperon were cloned into the shutter expression vector pXMJ19 individually, and the resultant plasmids pXMJ19-brnFEand pXMJ19-brnFE1 were transformed into LD320. Then the L-isoleucine production by these two strains was compared and analyzed. More L-isoleucine was produced by LD320/pXMJ19-brnFEthan that by LD320/pXMJ19-brnFE1. In addition, the effects of several surfactants on growth and L-isoleucine production by LD320/pXMJ19-brnFE1 were investigated. The shaking flask results revealed that Tween-80 played a key role in cell growth and L-isoleucine production. The suitable concentration of Tween-80 was 0.5 g/L and the optimal adding time was 16 h. Furthermore, the effects of Tween-80 on cell growth and L-isoleucine production by LD320/pXMJ19-brnFE1 was also investigated in a 7 L fermentor. The concentration of L-isoleucine increased from 18.53 g/L to 25.45 g/L, which was 37% higher than that of the control strain.

    BrnFE; surfactants;Corynebacteriumglutamicum; L-isoleucine

    10.3969/j.issn.1001-6678.2016.04.001

    國家自然基金(31370089),天津市科技支撐計劃重點(diǎn)項(xiàng)目(14ZCZDSY00065),天津市自然科學(xué)基金(16JCYBJC23500,15JCQNJC09500)。

    李忠財(1989~),男,碩士研究生。E-mail:li_zhc@tib.cas.cn。

    叢麗娜(1962~),女,教授。E-mail:linacong@163.com;張大偉(1978~),男,研究員。E-mail:zhang_dw@tib.cas.cn。

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