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    含F(xiàn)MDV中和表位的重組病毒顆粒的構(gòu)建及鑒定

    2016-07-28 01:13:58苗巍男鄭兆鑫劉明秋
    關(guān)鍵詞:桿狀病毒

    苗巍男,李 瑞,鐘 江,鄭兆鑫,劉明秋

    (復(fù)旦大學(xué) 生命科學(xué)學(xué)院,上海 200438)

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    含F(xiàn)MDV中和表位的重組病毒顆粒的構(gòu)建及鑒定

    苗巍男,李瑞,鐘江,鄭兆鑫,劉明秋

    (復(fù)旦大學(xué) 生命科學(xué)學(xué)院,上海 200438)

    摘要:針對(duì)FMDV的疫苗研究一直是防控口蹄疫的重點(diǎn),而病毒樣顆粒(VLPs)形式的疫苗因其安全性和近似傳統(tǒng)滅活疫苗的良好免疫效果,近年來逐漸成為疫苗研究的一個(gè)新方向.本實(shí)驗(yàn)利用豬圓環(huán)病毒PCV2的衣殼蛋白(CAP)作為載體,分別插入FMDV MYA98毒株的抗原表位組合——VP1蛋白上B細(xì)胞表位141~160aa(B)與串聯(lián)的B細(xì)胞和T細(xì)胞表位141~160aa-21~40aa-141~160aa(BTB),構(gòu)建對(duì)應(yīng)重組桿狀病毒,分別命名為reBAC-CAP-B,reBAC-CAP-BTB.將上述病毒顆粒轉(zhuǎn)入Sf9細(xì)胞表達(dá),收獲重組桿狀病毒并再次感染Sf9細(xì)胞擴(kuò)大病毒滴度,獲得目的蛋白CAP-B,CAP-BTB,經(jīng)過SDS-PAGE,Western blot鑒定正確,透射電鏡觀察到20~30 nm大小的目的顆粒.

    關(guān)鍵詞:口蹄疫病毒; 豬圓環(huán)病毒; 病毒樣顆粒; 抗原表位; 桿狀病毒-昆蟲細(xì)胞表達(dá)系統(tǒng)

    口蹄疫(Foot-and-Mouth Disease, FMD)是由口蹄疫病毒(Foot-and-Mouth Disease Virus, FMDV)引起的一種偶蹄類動(dòng)物所患的急性、熱性、高度接觸性傳染病[1].FMDV屬于小RNA病毒科(Picornaviridae),口蹄疫病毒屬(Aphthovirus),是最小的動(dòng)物病毒之一.按血清學(xué)分類,口蹄疫病毒目前可以分為7種血清型: O、A、C型(歐洲型),SAT1、2、3型(非洲型),AsiaⅠ型(亞洲型);每種血清型內(nèi)又包含許多亞型[2].不同血清型間不能交叉保護(hù),同一種血清型中不同亞型也有變化,不一定能交叉保護(hù).由于該病傳播途徑多,傳染速度快,并且病毒易變異,已被國(guó)際獸醫(yī)局(OIE)列為A類傳染病之首[3];許多國(guó)家盡管投入了大量的人力、物力和財(cái)力進(jìn)行預(yù)防和控制,然而該病仍在流行;因此針對(duì)口蹄疫預(yù)防及治療的研究一直是一個(gè)熱點(diǎn).在我國(guó)主要流行的血清型之一是O型FMDV,其中近年來廣泛爆發(fā)的是MYA98亞型毒株[4].

    疫苗免疫是預(yù)防FMDV爆發(fā)的重要手段之一,可以在疾病暴發(fā)時(shí)快速誘導(dǎo)免疫動(dòng)物產(chǎn)生中和抗體,從而保護(hù)動(dòng)物免于病毒感染[5].傳統(tǒng)疫苗為滅活疫苗,具有免疫原性高,生產(chǎn)、儲(chǔ)存、運(yùn)輸方便等優(yōu)點(diǎn),但是滅活不徹底則容易造成散毒,制作過程需要很高的防護(hù)措施以防病毒泄露是滅活疫苗的重大缺點(diǎn)[6].近年來隨著基因工程和蛋白質(zhì)工程技術(shù)的不斷發(fā)展,逐漸衍生出基因工程亞單位疫苗、合成肽疫苗、活載體疫苗、核酸疫苗等新疫苗種類.

    其中病毒樣顆粒(Virus-Like Particles, VLPs)是一種新興的具有巨大潛力的疫苗形式.病毒樣顆粒即含有一種或多種病毒結(jié)構(gòu)蛋白的空心顆粒,它具有和野生病毒相似的顆粒結(jié)構(gòu)和抗原性,但不含相關(guān)病毒基因[7].VLPs具有安全性高(不含病毒核酸)、免疫原性高、結(jié)構(gòu)利于抗原呈遞、穩(wěn)定性好、能作為載體插入外源片段、可以用來區(qū)分免疫動(dòng)物和感染動(dòng)物等優(yōu)點(diǎn)[8].目前已有多種公司研發(fā)的VLPs形式的疫苗上市銷售.VLPs作為疫苗的潛力已被各項(xiàng)研究充分地證明,并且仍擁有著廣闊的發(fā)展前景和巨大的潛力,在基礎(chǔ)研究中也充滿著潛力,為科學(xué)研究開辟了新的探索領(lǐng)域[9-10].

    豬圓環(huán)病毒(Procine CircoVirus, PCV)屬于圓環(huán)病毒科圓環(huán)病毒屬成員,是迄今為止已知最小的動(dòng)物病毒[11],該病毒顆粒無囊膜,呈二十面體結(jié)構(gòu).其ORF2編碼的CAP蛋白是病毒最主要的結(jié)構(gòu)蛋白和免疫原[12],CAP蛋白C端含有較多的轉(zhuǎn)角結(jié)構(gòu),位于病毒顆粒表面,因此也是優(yōu)勢(shì)抗原表位所在[13].單獨(dú)CAP蛋白已被證明能組裝成病毒顆粒,且能插入外源片段表達(dá),并具有生物活性[14-15],插入的外源片段最大約為20aa左右.

    本實(shí)驗(yàn)采用PCV2的外殼蛋白CAP作為載體,在C端插入兩種不同的FMDV中和表位組合-MYA98亞型VP1蛋白上B細(xì)胞表位141~160aa(B)與串聯(lián)的B細(xì)胞和T細(xì)胞表位141~160aa-21~40aa-141~160aa(BTB),將構(gòu)建的重組桿狀病毒在草地夜蛾Sf9細(xì)胞系內(nèi)擴(kuò)增并驗(yàn)證了CAP蛋白C端所能容納的外源片段大小,期望為進(jìn)一步構(gòu)建含有FMDV表位的VLPs疫苗奠定基礎(chǔ).

    1材料和方法

    1.1材料

    1.1.1菌株、細(xì)胞與質(zhì)粒

    大腸桿菌菌株E.coliDH5α由本實(shí)驗(yàn)室保存;草地夜蛾(Spodopterafrugiperda)卵巢細(xì)胞Sf9,大腸桿菌E.coliDH10Bac,pFastBac-1載體由復(fù)旦大學(xué)鐘江教授提供.

    1.1.2主要試劑

    限制性內(nèi)切酶,T4 DNA連接酶體系購自New England Biolabs公司;pMD-18T試劑盒購自TaKaRa公司;PCR體系(pfu酶,taq酶,PCR buffer,dNTPs等)購自北京天根生化科技有限公司;質(zhì)粒小量抽提試劑盒和DNA凝膠回收試劑盒均購自Axygen公司;TNM-FH培養(yǎng)基購自Sigma公司;胎牛血清購自Thermo Fisher公司;Cellfectin Ⅱ轉(zhuǎn)染試劑,購自Invitrogen公司;豚鼠抗FMDV MYA亞型血清來自內(nèi)蒙古金宇保靈生物藥品有限公司;辣根過氧化物酶(Horseradish Peroxidase, HRP)偶聯(lián)羊抗豚鼠抗體購自proteintech公司;ECL化學(xué)發(fā)光顯色試劑盒購自GE公司.

    表1 實(shí)驗(yàn)中使用的引物序列

    注: 劃線部分為酶切位點(diǎn).

    1.1.3引物和序列

    FMDV O型毒株O/BY/CHA/2010(MYA98亞型)VP1上的21~40aa和141~160aa的核苷酸序列(GenBank: JN998085.1)由上海捷瑞生物工程有限公司經(jīng)由昆蟲細(xì)胞密碼子優(yōu)化后合成,命名為BTB;PCV2 CAP基因(GenBank: ACZ06084.1)由上海農(nóng)業(yè)科學(xué)院畜牧獸醫(yī)研究所易建中老師提供;實(shí)驗(yàn)過程所用引物由上海賽百盛基因技術(shù)有限公司合成,見表1.

    1.2方法

    1.2.1CAP-B和CAP-BTB基因的克隆

    分別從公司合成的含有BTB基因的載體和含有CAP基因的載體上擴(kuò)增出BTB和CAP基因(使用的引物分別為btb-F/btb-R和cap-F/cap-R),然后通過重疊PCR(合成的BTB基因N端含有CAP基因C端一部分序列)獲得CAP-BTB序列(使用的引物為cap-F/btb-R),測(cè)序確認(rèn).再利用cap-F/b-R引物從測(cè)序正確的CAP-BTB序列上擴(kuò)增出CAP-B序列,測(cè)序確認(rèn)后分別保存.

    1.2.2質(zhì)粒pFB-CAP-B和pFB-CAP-BTB的構(gòu)建

    將CAP-B基因和pFastBac1載體分別用BamHⅠ和XhoⅠ雙酶切,回收后進(jìn)行連接,將連接產(chǎn)物轉(zhuǎn)入感受態(tài)E.coliDH5α后,挑取陽性克隆測(cè)序確認(rèn),抽取質(zhì)粒并命名為pFB-CAP-B;同樣方法獲得pFB-CAP-BTB.

    1.2.3重組桿狀病毒質(zhì)粒reBAC-CAP-B和reBAC-CAP-BTB的獲得

    分別將質(zhì)粒pFB-CAP-B和pFB-CAP-BTB轉(zhuǎn)化入E.coliDH10 Bac感受態(tài)細(xì)胞內(nèi),借由質(zhì)粒上的Tn5轉(zhuǎn)座單位和細(xì)胞內(nèi)輔助質(zhì)粒的功能將目的基因轉(zhuǎn)座到桿狀病毒載體Bacmid上.經(jīng)由抗生素(卡那霉素,四環(huán)素,慶大霉素)和藍(lán)白斑篩選后,提取重組桿狀病毒質(zhì)粒,分別利用目的基因的特異性引物和載體上的M13通用引物進(jìn)行PCR鑒定,分別命名為reBAC-CAP-B和reBAC-CAP-BTB.

    1.2.4重組病毒樣顆粒的表達(dá)

    將2種重組桿狀病毒質(zhì)粒分別轉(zhuǎn)染至對(duì)數(shù)期Sf9昆蟲細(xì)胞,當(dāng)細(xì)胞出現(xiàn)明顯病變時(shí),收獲培養(yǎng)基上清,500g離心5~10min收取上清,即為P1代毒株;再用P1代毒株感染細(xì)胞獲得滴度較高的P2代毒株;P2代毒株再次感染細(xì)胞(MOI=1~5)即可表達(dá)重組病毒樣顆粒,分別命名為CAP-B和CAP-BTB.

    1.2.5SDS-PAGE及Western blot鑒定

    用P2代感染細(xì)胞,當(dāng)有明細(xì)病變時(shí),收獲細(xì)胞,PBS洗2次,500g離心5~10min收獲細(xì)胞沉淀,加入SDS-PAGE loading Buffer混勻后進(jìn)行SDS-PAGE驗(yàn)證.同時(shí)電轉(zhuǎn)硝酸纖維素膜進(jìn)行Western blot鑒定,用含5% 脫脂奶粉的PBST(含0.1% Tween-20的PBS)封閉液封閉2h,加入按效價(jià)稀釋的豚鼠抗FMDV MYA98亞型血清的一抗孵育1h,PBST洗3次,每次5min;加入HRP標(biāo)記的羊抗豚鼠IgG二抗孵育1h,PBST洗3次,每次5min;使用ECL化學(xué)發(fā)光試劑盒進(jìn)行顯色分析.

    1.2.6透射電鏡觀察VLPs形態(tài)

    將P2代感染后的細(xì)胞經(jīng)過超聲波破碎,離心后取沉淀樣品少許溶于PBS制成懸浮液,滴在載樣銅網(wǎng)上,使用2%的磷鎢酸負(fù)染3~5min,吸去多余液體,室溫干燥后使用透射電鏡(TEM)進(jìn)行觀察.

    2結(jié)果與分析

    2.1CAP,BTB及重組基因CAP-B,CAP-BTB擴(kuò)增產(chǎn)物的鑒定

    CAP和BTB基因全長(zhǎng)分別為705bp和243bp,分別用cap-F/cap-R和btb-F/btb-R引物進(jìn)行擴(kuò)增后,瓊脂糖凝膠電泳分析結(jié)果見圖1(a),條帶大小均正確.CAP和BTB基因在CAP基因C端重疊21bp,利用引物cap-F/btb-R通過重疊PCR獲得CAP-BTB基因,全長(zhǎng)為930bp,再用cap-F/b-R引物從CAP-BTB基因上擴(kuò)增出CAP-B序列,全長(zhǎng)為771bp,電泳分析結(jié)果均正確(圖1(b),(c)).所有結(jié)果均測(cè)序并比對(duì)標(biāo)準(zhǔn)序列確認(rèn).

    2.2重組桿狀病毒質(zhì)粒的構(gòu)建及鑒定

    挑選轉(zhuǎn)座后白斑抽取重組桿狀病毒質(zhì)粒,分別獲得reBAC-CAP-B和reBAC-CAP-BTB;分別利用M13引物(桿狀病毒質(zhì)粒上自帶引物,見圖2(a)(見第384頁))和序列對(duì)應(yīng)的特異性引物進(jìn)行PCR鑒定;M13引物PCR產(chǎn)物理論大小分別為3100bp和3200bp,特異性引物PCR產(chǎn)物結(jié)果分別為771bp和930bp,結(jié)果見圖2(b)、(c)(見第384頁),均在目的大小位置看到對(duì)應(yīng)條帶,說明重組桿狀病毒質(zhì)粒構(gòu)建成功.

    2.3重組桿狀病毒毒株的獲得

    用rBAC-CAP-B和rBAC-CAP-BTB分別轉(zhuǎn)染sf9細(xì)胞,3~4d后細(xì)胞停止生長(zhǎng),體積變大,內(nèi)部出現(xiàn)顆粒體(小泡),晚期細(xì)胞脫落或破碎,大量死亡;陰性對(duì)照組細(xì)胞正常生長(zhǎng),說明重組病毒轉(zhuǎn)染成功,見圖3(見第384頁)(結(jié)果未完全列出).待細(xì)胞大部分明顯病變后收獲病毒毒株,即P1代毒株,用于接下來的擴(kuò)增.

    2.4重組病毒樣顆粒的SDS-PAGE和Western blot結(jié)果

    使用P2代毒株感染細(xì)胞,收獲細(xì)胞進(jìn)行SDS-PAGE鑒定.根據(jù)軟件預(yù)測(cè), CAP-B蛋白約為30kD,CAP-BTB約為36kD.如圖4(a),各樣品在預(yù)計(jì)大小位置有明顯目的條帶,且陰性對(duì)照空細(xì)胞和空載體在相應(yīng)位置無明顯條帶,說明目的蛋白成功表達(dá).

    使用豚鼠抗FMDV MYA98亞型血清作為一抗進(jìn)行Western blot,在CAP-B和CAP-BTB實(shí)驗(yàn)組均可以觀察到特異性條帶(圖中向下箭頭指示位置),而陰性對(duì)照均無對(duì)應(yīng)條帶,見圖4(b).圖中除目的條帶位置處有其他條帶,是因?yàn)樗靡豢篂槎嗫乖斐傻姆翘禺愋噪s帶,沒有特異性條帶反應(yīng)強(qiáng)烈,不影響實(shí)驗(yàn)結(jié)論.結(jié)果說明表達(dá)的重組病毒樣顆粒均具有良好的免疫反應(yīng)性.

    2.5重組病毒樣顆粒的電鏡觀察

    表達(dá)的2種重組VLPs樣品經(jīng)過磷鎢酸負(fù)染后,在透射電鏡下觀察結(jié)構(gòu).PCV2病毒顆粒大小理論上直徑為17~20nm,預(yù)估插入了外源片段后,CAP-B的大小為20~25nm,CAP-BTB大小為20~30nm.圖5中可見,觀察到的顆粒與預(yù)測(cè)大小一致,證明了重組病毒形成了VLPs結(jié)構(gòu).圖中有些較大的顆??赡苁嵌鄠€(gè)蛋白聚在一起沒分開導(dǎo)致的,屬于正?,F(xiàn)象.

    3討論

    多種病毒,包括包膜病毒、無包膜病毒、人類病毒、植物病毒、動(dòng)物病毒等均已證明在各種表達(dá)系統(tǒng)中內(nèi)能正常表達(dá)并正確組裝成顆粒結(jié)構(gòu)[16-17].桿狀病毒-昆蟲細(xì)胞表達(dá)系統(tǒng)具有安全性好、可容納的外源片段大、表達(dá)效率較高、蛋白質(zhì)翻譯后修飾與哺乳動(dòng)物細(xì)胞類似等優(yōu)點(diǎn)[18-19].Invitrogen公司的bac-to-bac系統(tǒng)就是采用這一體系的轉(zhuǎn)座子介導(dǎo)的桿狀病毒-昆蟲細(xì)胞重組系統(tǒng).目前已有多種利用該系統(tǒng)表達(dá)的VLPs疫苗正式上市.因此本實(shí)驗(yàn)采用昆蟲細(xì)胞系統(tǒng)表達(dá)目的蛋白.

    PCV2的ORF2編碼的CAP蛋白是其最主要的結(jié)構(gòu)蛋白,已被證明在不同表達(dá)體系中均能正確折疊成天然顆粒結(jié)構(gòu),且有一定的容納外源片段(約20aa)的能力[14-15].理論上,在C端插入的序列是暴露或者部分暴露在VLPs顆粒的表面,所以對(duì)結(jié)構(gòu)的形成影響不大.目前關(guān)于FMDV的VLPs研究多使用P1-2A-3C形式構(gòu)建完整FMDV病毒顆粒,也有在其他病毒外殼蛋白插入結(jié)構(gòu)蛋白或表位的構(gòu)建方式[20-22].研究表明,F(xiàn)MDV復(fù)合多表位組合可誘導(dǎo)強(qiáng)烈的免疫反應(yīng),其中VP1蛋白上的21~40aa為常見的T細(xì)胞表位[23],141~160aa位于暴露在表面的G-H環(huán)區(qū)域,是常見的經(jīng)典B細(xì)胞表位之一[24].因此本實(shí)驗(yàn)采用在C端插入兩種不同表位組合(單表位和三表位串聯(lián))的不同方式構(gòu)建重組VLPs,成功獲得重組毒株并表達(dá)蛋白CAP-B,CAP-BTB,在預(yù)期蛋白質(zhì)大小位置分別可看到對(duì)應(yīng)的條帶,并且在使用口蹄疫病毒血清的Western blot實(shí)驗(yàn)中CAP-B,CAP-BTB都有免疫反應(yīng),證明了表達(dá)的蛋白具有免疫反應(yīng)性.在電鏡觀察結(jié)果中看到重組VLPs均形成了顆粒狀結(jié)構(gòu),近似天然病毒.說明重組病毒具備形成顆粒結(jié)構(gòu)的能力,PCV2 VLPs能容納長(zhǎng)達(dá)70aa的外源片段.

    理論上桿狀病毒-昆蟲細(xì)胞系統(tǒng)表達(dá)的外源性蛋白應(yīng)該可溶,大部分的實(shí)驗(yàn)也證明了這點(diǎn).但是本實(shí)驗(yàn)提取的重組病毒樣顆粒均不溶于緩沖溶液(PBS,TNE等溶液)中,即使在裂解細(xì)胞時(shí)采取了超聲破碎、反復(fù)凍融、細(xì)胞裂解液等辦法,但是蛋白仍然存在于裂解后離心下來的沉淀中.對(duì)重組病毒樣顆粒的等電點(diǎn)進(jìn)行分析,中和緩沖液pH有一定的差距;且重組病毒樣顆粒上無核定位和膜定位信號(hào),因此理論上不會(huì)形成膜融合蛋白或者核內(nèi)蛋白.蛋白質(zhì)的溶解情況可能與蛋白質(zhì)本身性質(zhì)、表達(dá)量、裂解條件有一定的關(guān)系.大部分的研究本身表達(dá)的蛋白均可溶,因此對(duì)不溶的情況研究較少,楊林等在2000年對(duì)昆蟲細(xì)胞表達(dá)的GST融合蛋白的可溶性進(jìn)行了一定研究,發(fā)現(xiàn)本身不溶的蛋白在提高裂解液非離子去垢劑(如Triton-X100)濃度以及加入十二烷基肌氨酸鈉(Sarkosyl)后有約20%~30%的蛋白質(zhì)變?yōu)榭扇躘25].Crisci等在2012年利用該系統(tǒng)表達(dá)VLPs時(shí),裂解細(xì)胞時(shí)分別加入了DNase Ⅰ和Sarkosyl處理[22],研究本身并未提及表達(dá)的VLPs是否存在不溶的情況,但是這些處理方式為以后的實(shí)驗(yàn)改進(jìn)提供了新的方向.此外也可以考慮更換細(xì)胞系,如高表達(dá)量的High Five、哺乳動(dòng)物細(xì)胞等,或者引入引導(dǎo)序列使得蛋白質(zhì)可以分泌表達(dá)等方法.

    本實(shí)驗(yàn)構(gòu)建了含有FMDV抗原表位的重組病毒顆粒載體,并表達(dá)了具有免疫反應(yīng)性及能夠形成顆粒結(jié)構(gòu)的重組VLPs,驗(yàn)證了PCV2 CAP蛋白在C端插入了70aa的外源片段后仍能形成VLPs,為進(jìn)一步利用該載體表達(dá)多表位抗原奠定了基礎(chǔ).雖然存在著蛋白質(zhì)不可溶的問題,但可以考慮直接加入佐劑進(jìn)行動(dòng)物實(shí)驗(yàn)檢測(cè)免疫效果,同時(shí)嘗試著更換條件以期望得到可溶的蛋白質(zhì).

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    文章編號(hào):0427-7104(2016)03-0381-07

    收稿日期:2015-07-28

    基金項(xiàng)目:教育部留學(xué)回國(guó)人員科研啟動(dòng)基金;上海市科學(xué)技術(shù)委員會(huì)項(xiàng)目(13DZ2252000)

    作者簡(jiǎn)介:苗巍男(1992—),男,碩士研究生;劉明秋,女,副教授,通訊聯(lián)系人,E-mail: liumq@fudan.edu.cn.

    中圖分類號(hào):Q 78

    文獻(xiàn)標(biāo)志碼:A

    Construction and Identification of Recombinant Virus-like Particles Fused with Neutralizing Epitopes of FMDV

    MIAO Weinan, LI Rui, ZHONG Jiang, ZHENG Zhaoxin, LIU Mingqiu

    (SchoolofLifeSciences,FudanUniversity,Shanghai200438,China)

    Abstract:The study on vaccine of FMDV is always a hot spot in world. Recent years, VLPs became a new direction of vaccine study, for its safety and good ability of protection against virus compared to traditional vaccines. Two kinds of neutralizing epitopes of type O FMDV MYA98, single B antigen epitope on VP1 141—160 aa(B) and the combination of B antigen epitope and T antigen epitope 141—160 aa-21—40 aa-141—160 aa(BTB) epitopes, were inserted into CAP vector protein from PCV2 to construct the recombined Bacmids reBAC-CAP-B, reBAC-CAP-BTB. These recombined Bacmids were transfected into Sf9 cells to express fusion proteins CAP-B,CAP-BTB respectively. After amplifying the viral stock, the high-titer stock was infected to cells for protein expression. The results of SDS-PAGE, Western blot and TEM showed that the proteins with the right molecule size had the specific immunogenicity and were assembled into VLPs successfully.

    Keywords:FMDV; PCV; VLPs; antigen epitope; baculovirus-insect cell expression system

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