136000 吉林省四平市中心人民醫(yī)院消化內(nèi)科(朱立寧,姚志新);212001 鎮(zhèn)江,江蘇大學(xué)附屬江濱醫(yī)院消化內(nèi)科(徐岷,張尤歷)
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·臨床研究·
不同基因型幽門螺桿菌對人胃黏膜上皮細(xì)胞引起免疫損傷的作用
朱立寧徐岷張尤歷姚志新
136000吉林省四平市中心人民醫(yī)院消化內(nèi)科(朱立寧,姚志新);212001鎮(zhèn)江,江蘇大學(xué)附屬江濱醫(yī)院消化內(nèi)科(徐岷,張尤歷)
幽門螺桿菌(Hp)是一種革蘭氏陰性微需氧螺旋狀細(xì)菌,其與慢性胃炎、胃潰瘍、十二指腸潰瘍和胃癌等疾病密切相關(guān)。國際癌癥機(jī)構(gòu)已將Hp列為Ⅰ級致癌因子。Hp感染在全世界非常普遍,然而只有少部分最終在其他誘因的共同作用下導(dǎo)致胃癌的發(fā)生,提示不同基因型的Hp在胃癌的發(fā)生發(fā)展中起了重要的作用[1]。Hp含有的CagA基因及VacA基因分別編碼細(xì)胞毒素相關(guān)蛋白及空泡毒素,根據(jù)兩種基因表達(dá)情況將Hp菌株分為:Ⅰ型含有CagA及VacA基因,并表達(dá)兩種蛋白(即CagA+VacA+);Ⅱ型不含CagA基因,不表達(dá)兩種蛋白(即CagA-VacA-);以及一些中間表達(dá)型,即表達(dá)一種毒力因子(即CagA+VacA-和CagA-VacA+)。本研究以不同基因型的Hp與胃黏膜上皮細(xì)胞共孵育,檢測炎性因子白細(xì)胞介素-8(IL-8)、腫瘤壞死因子-α(TNF-α)、IL-10的水平變化,以揭示不同基因型Hp的毒力變化及其對免疫微環(huán)境的影響,探討不同基因型的Hp對胃黏膜炎性反應(yīng)的影響和致瘤性。
1材料和方法
1.1材料
人胃黏膜上皮細(xì)胞株(GES-1)來自江蘇大學(xué)生命科學(xué)院細(xì)胞庫;國際標(biāo)準(zhǔn)菌株NCTC11637(CagA+VacA+)由英國胃腸病學(xué)會主席英國諾丁漢大學(xué)王后醫(yī)學(xué)中心教授Atherton饋贈;菌株S32(CagA+VacA-)、Z47(CagA-VacA+)、S71(CagA-VacA-)來自江蘇大學(xué)生命科學(xué)院菌株庫。主要試劑及儀器:哥倫比亞培養(yǎng)基,DMEM培養(yǎng)基,人HpVacA ELISA試劑盒,人IL-8、IL-10、TNF-α ELISA試劑盒,分光光度計(jì),PCR儀。
1.2方法1.2.1Hp培養(yǎng)及基因鑒定菌株接種于哥倫比亞培養(yǎng)基(哥倫比亞培養(yǎng)瓊脂加10%脫纖維羊血及選擇性抗生素),37℃微需氧條件下培養(yǎng)72~96 h。將菌株提取基因組后采用PCR方法鑒定CagA+及CagA-的菌株,利用Primer Premier 5.0軟件設(shè)計(jì)CagA基因引物:上游5′-GCCACTACCACCACCGACAT-3′,下游5′-TGCCTAGCTCCAGGACCAC-3′(上海生工技術(shù)有限公司),PCR產(chǎn)物長266 bp。經(jīng)人HpVacA ELISA試劑盒鑒定VacA+及VacA-的菌株。
1.2.2GES-1培養(yǎng)將人胃黏膜上皮細(xì)胞株GES-1采用DMEM加10%小牛血清常規(guī)培養(yǎng),待細(xì)胞生長良好時(shí)用于下一步實(shí)驗(yàn)。
1.2.3Hp感染細(xì)胞模型的建立將處于指數(shù)生長期的細(xì)胞消化計(jì)數(shù),調(diào)整濃度為1×105/mL,吸取懸液于24孔培養(yǎng)板中(每孔1 mL)貼壁培養(yǎng)過夜。用分光光度計(jì)調(diào)整Hp濃度為1.0×109CFU/mL(A660=1×108CFU/mL),分別取4種不同菌株的菌液100 μL加入培養(yǎng)板中,取100 μL布氏肉湯加入培養(yǎng)板中作為對照,每組重復(fù)24孔,培養(yǎng)箱共孵育,取8 h培養(yǎng)上清置于-70℃保存(共孵育超過10 h則有細(xì)胞不同程度脫壁、變形及死亡),用于行ELISA檢測。
1.2.4實(shí)驗(yàn)分組將布氏肉湯處理細(xì)胞的上清液作為對照組,將4種不同基因型Hp菌株(CagA-VacA-型、CagA-VacA+型、CagA+VacA-型、CagA+VacA+型)處理細(xì)胞的上清液,分別定為CagA-VacA-組、CagA-VacA+組、CagA+VacA-組及CagA+VacA+組。
1.2.5ELISA檢測IL-8、IL-10、TNF-α含量嚴(yán)格按照試劑盒說明書進(jìn)行操作,450 nm波長讀取吸光度值,繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線,根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)曲線取得上述待測品濃度值。
2結(jié)果
2.1不同基因型Hp菌株的篩選
提取HpDNA,以CagA基因引物進(jìn)行PCR鑒定,樣本瓊脂糖凝膠電泳,在266 bp處可見陽性擴(kuò)增條帶,篩選出CagA+及CagA-的菌株,結(jié)果見圖1;Hp培養(yǎng)后,PBS洗滌、離心,留取上清,經(jīng)HpVacA ELISA試劑盒篩選出VacA+及VacA-的菌株,結(jié)果見表1。經(jīng)上述兩種方法從菌株庫中分離出4種不同基因型的Hp,分別為:NCTC11637(CagA+VacA+)、S32(CagA+VacA-)、Z47(CagA-VacA+)和S71(CagA-VacA-)。
注:M為DL 2000 Marker;泳道1為Z47菌株;2為S71菌株;3為NCTC11637菌株;4為S32菌株。3、4可見266 bp CagA基因PCR擴(kuò)增片段,1、2未見CagA基因PCR擴(kuò)增片段
圖1 CagA基因型PCR擴(kuò)增產(chǎn)物電泳圖
2.2不同基因型Hp菌株對胃上皮細(xì)胞分泌IL-8水平的影響
CagA+VacA+組及CagA+VacA-組IL-8濃度為(58.11±4.15)pg/mL、(56.38±4.40)pg/mL,高于CagA-VacA+組、CagA-VacA-組及對照組,差異具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.01);后者IL-8濃度分別為(52.32±3.18)pg/mL、(50.84±3.52)pg/mL和(51.30±3.16)pg/mL。見表2。
表2 不同組別上清中細(xì)胞因子水平比較±s,pg/mL)
注:與對照組、CagA-VacA-組及CagA-VacA+組相比,aP<0.01
2.3不同基因型Hp菌株對于胃上皮細(xì)胞分泌TNF-α水平的影響
CagA+VacA+組及CagA+VacA-組TNF-α濃度為(5.17±0.77)pg/mL、(5.03±0.86)pg/mL,高于CagA-VacA+組、CagA-VacA-組及對照組,差異具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.01);后者TNF-α濃度分別為(4.20±1.29)pg/mL、(3.88±1.17)pg/mL和(4.17±1.20)pg/mL。見表2。
2.4不同基因型Hp菌株對胃上皮細(xì)胞分泌IL-10水平的影響
CagA+VacA+組及CagA+VacA-組IL-10濃度分別為(7.99±1.48)pg/mL、(8.27±1.60)pg/mL,低于CagA-VacA+組、CagA-VacA-組及對照組,差異具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.01);后者IL-10濃度分別為(10.35±1.47)pg/mL、(10.06±1.78)pg/mL和(10.52±1.65)pg/mL。見表2。
3討論
Hp定植于胃黏膜上皮細(xì)胞后,因受到Hp菌體成分及外泌毒素的刺激而合成多種促炎因子,趨化多種免疫相關(guān)細(xì)胞聚集到胃黏膜固有層,活化的免疫細(xì)胞繼續(xù)釋放細(xì)胞因子,募集更多免疫細(xì)胞,形成瀑布式循環(huán)反應(yīng)?;颊叱霈F(xiàn)明顯臨床癥狀時(shí),各種細(xì)胞因子在胃黏膜內(nèi)高表達(dá)或低表達(dá),并伴有明顯的炎性細(xì)胞浸潤,這些表現(xiàn)是從Hp定植于胃黏膜上皮細(xì)胞開始的[2-3]。本研究關(guān)注了不同基因型Hp與胃上皮細(xì)胞作用時(shí),胃上皮細(xì)胞來源的IL-8、TNF-α、IL-10的表達(dá)水平,而且這些細(xì)胞因子與Hp導(dǎo)致的后續(xù)的炎性細(xì)胞浸潤等病理生理過程密切相關(guān)。
IL-8和TNF-α在炎性反應(yīng)的發(fā)生發(fā)展中起著重要的作用,而且與腫瘤發(fā)生密切相關(guān)。IL-8在Hp陽性的胃竇黏膜中表達(dá)較Hp陰性者明顯增加,且與炎性程度呈正相關(guān)[4]。在慢性胃炎、消化性潰瘍患者中,Hp陽性患者胃竇黏膜上皮細(xì)胞TNF-α mRNA表達(dá)高于Hp陰性患者,且與Hp密度、炎性細(xì)胞浸潤程度呈正相關(guān)[5]。TNF-α除了抗瘤細(xì)胞活性外,還可以通過影響靶細(xì)胞膜的磷脂代謝引起細(xì)胞凋亡和組織損傷[6],Hp感染后,TNF-α分泌增加,造成胃黏膜上皮細(xì)胞凋亡與增殖平衡失調(diào),這可能是引起消化性潰瘍、萎縮性胃炎、胃癌的重要機(jī)制[7-8]。IL-10有很強(qiáng)的抗炎作用,可以抑制IL-8、TNF-α等多種炎性因子的合成,其在Hp致病中可能有類似的效應(yīng)。在胃部疾病中,各種損傷因子可改變胃黏膜的微環(huán)境,導(dǎo)致促炎與抗炎細(xì)胞因子之間的失衡,如IL-8、TNF-α等的上調(diào),從而促進(jìn)炎性反應(yīng),IL-10則通過調(diào)節(jié)免疫、抑制促炎因子的分泌和活性,起著保護(hù)黏膜、減少組織損傷的作用[9]。機(jī)體受到病原體刺激后,會產(chǎn)生炎性反應(yīng),促炎因子和抑炎因子相互制約,共同起著清除病原體、恢復(fù)機(jī)體免疫穩(wěn)定狀態(tài)的作用。Hp感染后,可誘導(dǎo)胃黏膜產(chǎn)生TH1優(yōu)勢的免疫反應(yīng),分泌大量的促炎細(xì)胞因子(如IL-8、TNF-α),造成黏膜的免疫損傷,與此同時(shí)TH2細(xì)胞受到抑制,分泌IL-10減少,導(dǎo)致B細(xì)胞分泌的IgA減少,不能有效清除Hp,使Hp持續(xù)存在,炎性反應(yīng)持續(xù)存在[10]。
本研究提示,Hp感染人胃黏膜后,IL-8、TNF-α、IL-10分泌水平受CagA+基因型Hp影響,而與VacA+基因型Hp無關(guān)。因此,CagA+基因型Hp菌株定植于胃黏膜,可打破IL-8、TNF-α、IL-10分泌水平的平衡,易引起細(xì)胞微環(huán)境免疫失衡,導(dǎo)致胃上皮細(xì)胞損傷,從而引起胃黏膜上皮細(xì)胞過度凋亡,造成胃黏膜上皮細(xì)胞凋亡與增殖平衡失調(diào)。從免疫原理分析,CagA+基因型Hp菌株具有較強(qiáng)的毒力。
通過不同基因型的Hp對胃黏膜上皮細(xì)胞誘導(dǎo)IL-8、TNF-α、IL-10分泌能力差異的分析,揭示了CagA+基因型Hp菌株具有較強(qiáng)的毒力,對胃黏膜上皮細(xì)胞免疫微環(huán)境的影響明顯,說明CagA+基因型Hp菌株介導(dǎo)的炎性反應(yīng)可增加胃黏膜損傷,易導(dǎo)致胃黏膜萎縮,并進(jìn)展為慢性萎縮性胃炎,甚至胃癌。因此,Hp基因分型對于指導(dǎo)臨床治療及判斷預(yù)后具有重要意義。
參考文獻(xiàn)
1 Amieva MR, El-Omar EM. Host-bacterial interactions in Helicobacter pylori infection[J]. Gastroenterology, 2008, 134: 306-323.
2 Moon RT, Kohn AD, De Ferrari GV, et al. WNT and beta-eatenin signalling: diseases and therapies[J]. Nat Rev Genet, 2004, 5: 691-701.
3 Naito M, Yamazaki T, Tsutsumi R, et al. Influence of EPIYA-repeat polymorphism on the phosphorylation-dependent biological activity of Helieobaeter Pylori CagA[J]. Gastroenterology, 2006, 130: 1181-1190.
4 Kumar S, Kumari N, Mittal RD, et al. Association between pro-(IL-8) and anti-inflammatory (IL-10) cytokine variants and their serum levels andH.pylori-related gastric carcinogenesis in northern India[J]. Meta Gene, 2015, 6: 9-16.
5 Triantafillidis JK, Gikas A, Merikas E. Treatment of inflammatory bowel disease patients with anti-TNF-α factors and immunosuppressives does not influence the prevalence of Helicobacter pylori infection[J]. Indian J Gastroenterol, 2014, 33: 383-384.
6 Fiorucci S, Santucci L, Migliorati G. Isolated guinea pig gastric chief cells express tumor necrosis factor receptors coupled with the sphingomyelin pathway[J]. Gut, 1996, 38: 182-189.
7 Neu B, Puschmann AJ, Mayerhofer A, et al. TNF-α induces apoptosis of parietal cells[J]. Biochem Pharmacol, 2003, 65: 1755-1760.
8 Koyama S. Flow cytometric measurement of tumor necrosis factor-related apoptosis-inducing ligand and its receptors in gastric epithelium and infiltrating mucosal lymphocytes in Helicobacter pylori-associated gastritis[J]. J Gastroenterol Hepatol, 2003, 18: 763-770.
9 Rizzuti D, Ang M, Sokollik C, et al. Helicobacter pylori inhibits dendritic cell maturation via interleukin-10-mediated activation of the signal transducer and activator of transcription 3 pathway[J]. J Innate Immun, 2015, 7: 199-211.
10 Abbas Z, Yakoob J, Usman MW, et al. Effect of Helicobacter pylori and its virulence factors on portal hypertensive gastropathy and interleukin (IL)-8, IL-10, and tumor necrosis factor-alpha levels[J]. Saudi J Gastroenterol, 2014, 20: 120-127.
(本文編輯:周駿)
(收稿日期:2015-05-20)
基金項(xiàng)目:江蘇省衛(wèi)生廳科技項(xiàng)目(H201047)
DOI:10.3969/j.issn.1673-534X.2016.01.016