張靖慧,方瑩瑩,李娜
重復經(jīng)顱磁刺激(repetitive transcranial magnetic stimulation,rTMS)是一種新型的無痛無創(chuàng)腦刺激技術(shù),臨床研究發(fā)現(xiàn)磁刺激可改善正常受試者及腦卒中患者學習記憶功能[1],提高恢復期腦卒中患者的運動學習技能,但其機制尚不明確。近年來大量研究表明白細胞介素1(interleukin-1,IL-1)在低濃度條件下具有一定腦保護作用,參與海馬依賴的學習記憶過程[2],長時程增強(long-term potentiation,LTP)刺激可促進海馬內(nèi)IL-1β表達[3]。本研究應用腦梗死大鼠模型,觀察rTMS對腦梗死后空間記憶功能以及海馬區(qū)IL-1β mRNA表達的影響。
1.1 材料 ①實驗動物:健康成年雄性SPF級SD大鼠45只,體質(zhì)量220.2g,購自南方醫(yī)科大學實驗動物中心。②試劑:Trizol:15596-018,Invitrogen;cDNA第一鏈合成試劑盒:#K1622,F(xiàn)ermentas;SYBR Green/Flourescein qPCR Master Mix(2X):#K0242,F(xiàn)ermentas;Ex TaqTM:DRR100A,TAKARA;DL2000 DNA Marker:D501A,TAKARA;DL15000 DNA Marker:D502A,TAKARA;引物合成:南京金斯瑞。③儀器:磁刺激治療采用YRDCCY-Ⅰ型磁刺激儀(武漢依瑞德醫(yī)療設(shè)備新技術(shù)有限公司生產(chǎn)) ;Morris水迷宮實驗采用水迷宮實驗系統(tǒng)(中國醫(yī)學科學院生產(chǎn));qRT-PCR使用illumina eco Real-Time PCR System測定。
1.2 方法 ①分組:將45只大鼠隨機分為假手術(shù)組、對照組和rTMS組,每組15只。②造模:將對照組和rTMS組大鼠參照改良的Longa線栓法制作右側(cè)大腦中動脈阻塞再灌注(transient middle cerebral artery occlusion,tMCAO)模型[4-5],腦缺血后90min將線栓拔出,完成造模。采用Bederson評分法觀察大鼠清醒后行為學改變[6]。將1、2、3分動物納入本實驗。共29只大鼠制模成功并納入本研究,實驗過程中有3只死亡,最終對照組有12只、rTMS組有14只大鼠完成實驗。假手術(shù)組線栓從頸總動脈分叉處進入頸內(nèi)動脈約5mm,無病理行為學改變。③rTMS治療:rTMS組大鼠從術(shù)后1d開始給予患側(cè)大腦磁刺激治療,采用YRDCCY-Ⅰ型磁刺激儀。將清醒狀態(tài)下的大鼠固定在自制透明固定器中。8字形線圈(8字中心最大磁場強度1.8T),隔著固定器(厚0.2mm)緊貼大鼠頭皮,線圈中心位于大鼠梗死側(cè)大腦上方[7],刺激強度為120% 靜息運動閾值(50%最大磁場強度),刺激頻率為10Hz,總刺激量為300脈沖,單序列30脈沖,共10個序列,中間間隔50s[8],每次治療8min。每天1次,連續(xù)5d。
1.3 評定標準 ①行為學檢測:采用Morris水迷宮試驗。模型制作的第3天開始,3組大鼠進行水迷宮實驗,共5次,4d內(nèi)完成,第1天訓練2次。圓形平臺固定放置于第三象限中心,放入適量水使平臺低于水平面3cm。前4次為訓練,每次分別從3個象限(除平臺所在象限)的中點將大鼠逐一面向池壁放入水中,設(shè)定大鼠在平臺上停留3s為找到平臺,記錄大鼠在水中尋找并爬上平臺的時間,即逃避潛伏期。如果大鼠在60s內(nèi)未找到平臺,則將其引導至平臺,停留20s以熟悉環(huán)境,此時逃避潛伏期記為60s。最后一次為檢測,撤去平臺,于第1象限入水點處將大鼠面向池壁放入水中,記錄大鼠60s內(nèi)第一次穿過平臺的搜索時間(逃避潛伏期)。將最后一次成績進行統(tǒng)計分析,以此來評價大鼠的空間學習記憶能力。②實時定量聚合酶鏈式反應(Quantitative Real-time polymerase chain reaction,qRT-PCR)檢測大鼠海馬IL-1β mRNA表達情況:術(shù)后6d使用ABI StepOne Plus測定。并觀察梗死灶(皮層、紋狀體)IL-1βmRNA表達情況。同時檢測炎癥相關(guān)因子:誘導型一氧化氮合酶(inducible nitric oxide synthase,iNOS)、腫瘤壞死因子α(tumor necrosis factor alpha,TNF-α)。qRT-PCR內(nèi)參為:肌動蛋白(β-Actin)。
2.1 Morris水迷宮測試 與假手術(shù)組相比,對照組及rTMS 組大鼠的逃避潛伏期均顯著延長(P<0.01),而rTMS組較對照組的逃避潛伏期則明顯縮短(P<0.05),見表1。
2.2 qRT-PCR結(jié)果 對照組、rTMS組IL-1β mRNA在患側(cè)海馬及皮層的表達量均較假手術(shù)組增高(P<0.01),rTMS組在患側(cè)海馬的IL-1β mRNA表達較對照組顯著增高(P<0.01),在患側(cè)皮層中rTMS組IL-1β mRNA表達較對照組無明顯變化。檢測患側(cè)海馬iNOS、TNFβ mRNA以明確炎癥反應水平,結(jié)果提示對照組、rTMS組iNOS、TNFβ mRNA表達量均較假手術(shù)組增高(P<0.01),rTMS組較對照組有所下降,但無顯著差異。見表2。
表1 rTMS對腦梗死大鼠空間學習記憶功能的影響 分,
與假手術(shù)組比較,aP<0.05;與對照組比較,bP<0.05
組別nIL?1βmRNA患側(cè)海馬患側(cè)皮層患側(cè)海馬區(qū)iNOSTNF?α假手術(shù)組151111對照組 121.82±0.48a3.34±0.51a3.15±0.27a1.59±0.18arTMS組146.14±1.05ab4.61±0.93a2.66±0.37a1.46±0.07a
與假手術(shù)組比較,aP<0.05;與對照組比較,bP<0.05
本研究通過Morris水迷宮實驗觀察rTMS對空間學習記憶功能的影響,結(jié)果發(fā)現(xiàn),對照組大鼠逃避潛伏期較假手術(shù)組明顯延長,rTMS組大鼠逃避潛伏期較對照組明顯縮短,說明rTMS一定程度上改善腦梗死大鼠空間學習記憶功能。
IL-1是一種經(jīng)典炎性細胞因子,存在α、β兩種異構(gòu)體,主要合成部位是海馬,生理情況下,IL-1及IL-1mRNA在腦內(nèi)含量很低,并且以IL-1β為主。正常生理狀態(tài)下,IL-1β對記憶固化起重要作用,參與海馬依賴的學習記憶過程。生理狀態(tài)下低濃度IL-1β可協(xié)同IL-6,促進神經(jīng)生長因子釋放、新血管形成、膠質(zhì)增生,從而增強神經(jīng)細胞抗缺血能力和促進修復作用[9]。條件性恐懼實驗或者LTP刺激后大鼠海馬區(qū)IL-1βmRNA表達增加[3,10],腹腔注射小劑量IL-1β可促進大鼠躲避記憶和條件性恐懼記憶能力[11]。急性腦梗死引起IL-1β濃度病理性增高,成為一種內(nèi)源性致熱源,在炎癥和急性期反應中發(fā)揮作用,參與神經(jīng)損傷,促進炎癥反應,擴大腦梗死面積。腦梗死后IL-1β表達具有一定時間依賴性,動物研究表明, IL-1β mRNA在腦梗死后6h開始增高,12h~3d達到高峰,隨后逐漸下降至正常水平[12],本研究中腦梗死后6d梗死灶與患側(cè)海馬區(qū)IL-1βmRNA表達水平仍高于假手術(shù)組,與文獻報道基本一致[12]。本研究于腦梗死急性期(MCAO術(shù)后1d)給予rTMS治療,結(jié)果顯示rTMS促進患側(cè)海馬區(qū)IL-1β mRNA表達增加,對梗死灶I(lǐng)L-1β mRNA表達無明顯改變,提示其具有部位特異性,而且rTMS不影響其它炎癥因子(iNOS、TNF-α)表達,提示rTMS對炎癥反應無增強作用。其具體機制尚不明確,但初步提示了海馬區(qū)IL-1β濃度改變在腦梗死后學習記憶功能恢復過程中可能起到重要作用。此外rTMS為脈沖樣刺激模式,一般認為其作用機制與突觸可塑性相關(guān)。rTMS對神經(jīng)的調(diào)控作用有明顯的頻率依賴性,高頻(>1Hz)rTMS對神經(jīng)興奮性的調(diào)控表現(xiàn)為類似LTP作用。LTP刺激可促進大鼠海馬區(qū)IL-1βmRNA表達增加[3,10],根據(jù)本研究結(jié)果推測rTMS可能通過影響海馬區(qū)IL-1β以改善腦梗死后空間記憶功能。
本研究使用的磁刺激線圈刺激面積較大,無法實現(xiàn)精確靶向刺激患側(cè)海馬區(qū)。研究表明空間學習記憶功能需要完整的神經(jīng)網(wǎng)路參與,在空間導航過程中,海馬是主要參與部位,而在回憶過程中,除了海馬,還需要海馬旁皮層的參與,海馬旁皮層包括內(nèi)外側(cè)前額葉、楔前葉、后扣帶回、壓后皮層以及內(nèi)外側(cè)顳葉區(qū)[13]。最新研究發(fā)現(xiàn)皮層下內(nèi)側(cè)隔/斜角帶核的GABA能神經(jīng)元的突觸與海馬神經(jīng)元形成鏈接[14],從細胞層面上證實了海馬與皮層間存在神經(jīng)網(wǎng)絡(luò)。本研究結(jié)果提示患側(cè)大腦在磁刺激后海馬區(qū)IL-1βmRNA表達增高,可能是海馬神經(jīng)元受到磁刺激直接作用的結(jié)果,亦可能是磁刺激促進整個學習記憶神經(jīng)網(wǎng)絡(luò)重建的結(jié)果,其具體機制需進一步研究證實。
綜上所述,本研究表明急性期腦梗死行rTMS治療可促進空間學習記憶功能恢復,其作用機制可能與rTMS增加患側(cè)海馬區(qū)IL-1βmRNA表達相關(guān),為進一步探索rTMS治療腦卒中最佳治療方案提供有力基礎(chǔ)依據(jù)。
[1] Di Pino G,Pellegrino G,Assenza G,et al. Modulation of brain plasticity in stroke: a novel model for neurorehabilitation[J]. Nat Rev Neurol,2014,10(10):597-608.
[2] Labrousse VF,Costes L,Aubert A,et al. Impaired interleukin-1beta and c-Fos expression in the hippocampus is associated with a spatial memory deficit in P2X(7) receptor-deficient mice[J]. PLoS One,2009,4(6):e6006-6006.
[3] Schneider H,Pitossi F,Balschun D,et al. A neuromodulatory role of interleukin-1beta in the hippocampus[J]. Proc Natl Acad Sci USA,1998,95(13):7778-7783.
[4] Longa EZ,Weinstein PR,Carlson S,et al. Reversible middle cerebral artery occlusion without craniectomy in rats[J]. Stroke,1989,20(1):84-91.
[5] Shen CC,Yang YC,Chiao MT,et al. Characterization of endogenous neural progenitor cells after experimental ischemic stroke[J]. Curr Neurovasc Res,2010 Feb;7(1):6-14.
[6] Bederson JB,Pitts LH,Tsuji M,et al. Rat middle cerebral artery occlusion: evaluation of the model and development of a neurologic examination[J]. Stroke,1986,17(3):472-6.
[7] 趙秀秀,韓肖華,郭風,等. 高頻重復經(jīng)顱磁刺激對腦缺血后海馬BDNF、VEGF和Nestin表達的影響[J]. 神經(jīng)損傷與功能重建, 2013,8(6):431-434.
[8] 張靖慧,韓肖華,趙秀秀,等. 重復經(jīng)顱磁刺激對腦缺血后神經(jīng)干細胞增殖以及miR-9表達的影響[J]. 中華物理醫(yī)學與康復雜志, 2012,34(10):725-728.
[9] Hewett SJ,Jackman NA,Claycomb RJ. Interleukin-1beta in Central Nervous System Injury and Repair[J]. Eur J Neurodegener Dis, 2012,1(2):195-211.
[10] Goshen I,Kreisel T,Ounallah-Saad H,et al. A dual role for interleukin-1 in hippocampal-dependent memory processes[J]. Psychoneuroendocrinology, 2007,32(8-10):1106-1115.
[11] Yirmiya R,Goshen I. Immune modulation of learning,memory,neural plasticity and neurogenesis[J]. Brain Behav Immun, 2011,25(2):181-213.
[12] Song C,Zhang Y,Dong Y. Acute and subacute IL-1beta administrations differentially modulate neuroimmune and neurotrophic systems: possible implications for neuroprotection and neurodegeneration[J]. J Neuroinflammation, 2013,10:59-59.
[13] Mullally SL,Maguire EA. Memory,Imagination,and Predicting the Future: A Common Brain Mechanism[J]? Neuroscientist, 2013,20(3):220-234.
[14] Unal G,Joshi A,Viney TJ,et al. Synaptic Targets of Medial Septal Projections in the Hippocampus and Extrahippocampal Cortices of the Mouse[J]. J Neurosci,2015,35(48):15812-15826.